JoVE Journal > Biochemistry
概要
Abstract
Introduction
Protocol
結果
Discussion
開示
Acknowledgements
Materials
参考文献
Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.
生化学

Определение высокого сродства антитело-антиген-связывающий Kinetics с использованием четырех биосенсор платформы

Published: April 17, 2017
doi:
10.3791/55659
, , ,
1Department of Biotherapeutics Discovery, Immune Modulation and Biotherapeutics Discovery,Boehringer Ingelheim Pharmaceuticals, Inc., 2The Fu Foundation School of Engineering and Applied Science,Columbia University

概要

Мы опишем здесь протоколы для измерения антиген-антитело аффинность связывания и кинетики с использованием четырех обычно используемых платформ биосенсора.

Abstract

Этикетка свободной оптические биосенсоры являются мощными инструментами в разработке лекарств для характеристики молекулярно-биологических взаимодействий. В этом исследовании мы описали использование четырех обычно используемых платформ биосенсора в нашей лаборатории, чтобы оценить сродство связывания и кинетику десять с высоким сродством моноклональных антител (мАт) против человеческого пропротеина конвертазы субтилизина Kexin типа 9 (PCSK9). В то время как Biacore T100 и Proteon XPR36 получены из хорошо установлено поверхностного плазмонного резонанса технологии (ППР), бывший имеет четыре ячейки потока, соединенные конфигурации последовательного потока, тогда как последние подарки 36 реакционные пятна параллельно через импровизированного 6 х 6 крест-накрест микрожидкостных конфигурации канала. ИБИС MX96 также работает на основе SPR сенсорной технологии, с дополнительной функцией формирования изображения, которая обеспечивает обнаружение в пространственной ориентации. Этот метод обнаружения в сочетании с непрерывным потоком Microspotter (CFM) расширяет пропускную способность значительно по электронной почтеnabling мультиплексной печать массива и обнаружение 96 реакционных видов спорта одновременно. В противоположности этому, Октет RED384 основан на бислой интерферометрия (Л) оптический принцип, с волоконно-оптических датчиками, действующими в качестве биосенсора для обнаружения интерференционной картины изменений при связывании взаимодействий на поверхности наконечника. В отличии от SPR, основанных на платформы, система BLI не зависит от непрерывных потоков струйных; вместо этого, кончики датчиков собирают показания в то время как они погружены в растворы аналита микропланшет-384 скважины в процессе орбитального перемешивания.

Каждая из этих биосенсоров платформ имеет свои преимущества и недостатки. Для того, чтобы обеспечить непосредственное сравнение способности данных инструментов для обеспечения качества кинетических данных, описанные протоколы иллюстрируют эксперименты, которые используют один и тот же формат анализ и те же высококачественные реагенты характеризовать антитело-антиген кинетики, которые соответствуют простой модели 1: 1 взаимодействия молекул ,

Introduction

The acquisition of reliable kinetic parameters for characterizing antibody-antigen interactions is an essential component of the drug discovery and development process1. Optical Surface Plasmon Resonance (SPR) biosensors, the “gold standard” for real-time detection of these interactions, have been used for approximately two decades to enable early selection of criteria-meeting therapeutic antibody candidates2,3. In addition to providing an affinity ranking of antibody candidates by the rapid binding screening of crude supernatants4, and rigorous kinetic constant determinations of purified preparations5, biosensors can further differentiate the functional activity of lead candidates via epitope binning studies6,7.

To meet the growing demand of antibody-based products for various therapeutic indications8, a wide variety of innovative biosensor instruments have been developed in recent years that increase the efficiency of candidate identification and characterization9,10. These instruments differ in microfluidic channel configuration design and/or in the optical principles involved in detecting biomolecular interactions. Specifically, the Octet RED38411, ProteOn XPR3612, and IBIS MX967 have expanded the number of interactions measured in a single binding cycle to 16, 36, and 96 respectively, representing significant throughput improvements over the traditional Biacore platform. Although these various biosensor platforms all provide essential kinetic data for characterizing antibody-antigen interactions, they differ in experimental setup and operational procedures due to variations in instrumental configurations. For example, in the IBIS MX96’s SPR imaging array platform, the multiplex ligand immobilization step is performed in an off-line mode in an external printing device separate from the detector7,13; in contrast, the other three biosensor platforms utilize an “all-in-one” setup, where the addition of component onto the sensor surface, whether it is the activation reagent, ligand, or analyte, is recorded in real time and through pre-programmed commands in sequential order. In the Octet RED384, a unique feature of this BioLayer Interferometry (BLI)-based platform is the availability of pre-coated optical fiber biosensors for immediate “dip-and-read” use14, eliminating the need for ligand surface preparation and initiation/conditioning steps, which are often required for the sensor chips in SPR-based platforms. This instrument’s fluidic-free design also simplifies the mechanics and avoids clogging and contamination concerns when dealing with crude samples. With the novel 6 x 6 crisscrossing fluidic design in the ProteOn XPR36, a “one-shot” kinetics approach can be implemented by switching the flow channels between horizontal and vertical directions to create 36 interaction spots15. Instead of assessing binding kinetics one ligand or analyte concentration at a time, as is done in the traditional serial flow Biacore T100 platform, this approach offers the ability to monitor up to 36 different interactions simultaneously in a single binding cycle.

Despite their differences, these four biosensor platforms are all widely used by many laboratories worldwide. For new users with little hands-on biosensor experience, deciding which instrument to use can be a challenging task given the differences in instrumental design. To determine the most appropriate instrument for their research purposes, factors such as data quality, performance consistency, throughput, ease of operation, and material consumption need to be considered collectively. While several benchmark studies have explored the variability of kinetic rate constants obtained from multiple laboratories and biosensors5,16, a recently published head-to-head comparison study further addresses the systematic factors that influence data reliability from the instrumental performance point of view17,18. The protocols supplied in this video focus on the experimental setup and procedures in detail, and are accompanied by the research article entitled, “Comparison of biosensor platforms in the evaluation of high affinity antibody-antigen binding kinetics”17. These protocols are intended not only to help new biosensor users implement these instruments for their research purposes, but also to provide additional insights for current biosensor users regarding technical challenges and considerations in experimental designs for evaluating high-affinity antibody-antigen interactions.

Protocol

1. Белки и антитела Продукты и очистить человеческий пропротеина конвертазы субтилизина Kexin тип 9 (PCSK9) и десять мышей , полученных анти-PCSK9 мАт , как описано ранее 17. Оценка чистоты очищенных продуктов путем последовательных инъекций 10 мкг каждого образца в колонку аналитического эксклюзионный (SEC) с использованием системы UPLC 19. 2. Кинетические измерения в Т100 Biacore Инструмент и Подготовка реагентов Равновесие сенсорного чипа CM5 при комнатной температуре в течение 15 мин. Оттепель два 200 мкл аликвоты 200 мМ 1-этил-3- (3-диметиламинопропил) карбодиимида гидрохлорида (EDC) и двух 200 мкл аликвоты 50 мМ N-гидроксисукцинимида (NHS) при комнатной температуре. Подготовьте 1-L бутылку 1x HBS-EP (10 мМ HEPES рН 7,4 [], 150 мМ NaCl, 3 мМ ЭДТА и 0,005% об / об полисорбат Р20) работает буфер дификсирующий с 10-кратным HBS-EP + маточным раствором в воде. Подготовить 1 мл белка А / G при 30 мкг / мл в 10 мМ ацетата натрия (рН 4,5) и 500 мкл каждый образец монАТа при 0,063 мкг / мл в рабочем буфере HBS-EP. Оттепель замороженный флакон человеческого PCSK9 на льду. В программе управления, откройте меню «Сервис | Eject Chip», поместите фишку датчика в ножны и близко. Нажмите "Инструменты | Set Temperature", введите "25" ° C, так как температура анализа и "10" ° C, так как температура отсека. Поверхность иммобилизации В программе управления, нажмите кнопку «Файл | Открыть / Новый мастер шаблона» и выберите «иммобилизация» из списка в левой панели. Нажмите кнопку «Создать», чтобы войти в окно настройки иммобилизации. Выберите «CM5» в качестве типа чипа и выберите «1» ячейку потока за цикл. Установите флажок рядом с каждой «ячейки иммобилизации потока 1/2/3/4» на ACTIVAт.е варианты. Выберите «Цель для иммобилизованного уровня» и «Амина» в качестве способа для всех проточных ячеек. Введите «30 мкг / Мл Проа / G» в качестве лиганда, убедитесь, что целевой уровень установлен на «10000» единицы ответа (RU) для всех ячеек потока. Проверьте «Prime до запуска» и нажмите кнопку «Далее». Выберите «Реагент Rack 2», определить место для реагентов и пипетки в отдельные пробирки образца соответственно. Вставьте стойку обратно в прибор, затем нажмите кнопку «Пуск» и введите название эксперимента, чтобы спастись, чтобы начать бег. Аналит Связывание и циклов регенерации Нажмите кнопку «Файл | Открыть / Новый метод», выберите «20140812 Hu анти-PCSK9 IgGs связывания с х PCSK9» и открыть метод. Обзор параметров в методе. В «Assay шаги», обеспечить наличие 10 циклов, в которых «Ху PCSK9» это имя с «Образец» выбрано «PurpОСЭ». Число Репликация устанавливается в„1“. В «Типах цикла», установить время контакта с «220» с для захвата 1 над путем потока «2», «110» S для захвата 2 над путем потока «3», и «55» S для захвата 3 над путем потока "4". Скорость потока «10» мкл / мин в течение всех циклов захвата. Выберите «Пример 1», проверьте «Пример решения» в качестве переменной. Установка времени контакта до «600» с и времени диссоциации на «2700» с более пути потока «1, 2, 3, 4». Скорость потока устанавливается на «30» мкл / мин. Выберите «Регенерация 1», ввести «глицин-HCl рН 1,5» в поле раствора и установить время контакта с «20» с более пути потока «1, 2, 3, 4». В «Variable Settings», введите в 2 раза титрованием концентрации 100 нМ «- 6,25 нМ» для цикла 1-3, «50 нМ – 3.12 нМ» для цикла 4-8, и «5 нМ – 0,323 нМ» Fили цикл 9-10. В «Настройка Run», выбрать путь потока обнаружения «2-1, 3-1, 4-1», нажмите кнопку «Далее», установите флажок «Prime до запуска» и нажмите кнопку «Далее». Выберите «Образец и реагент Rack 1», определить место для реагентов и пипеткой в ​​отдельные пробирки образца соответственно. Вставьте стойку в прибор, затем нажмите кнопку «Пуск» и введите название эксперимента, чтобы спастись, чтобы начать бег. Анализ данных с помощью BIAevaluation Нажмите «Кинетика / Affinity | поверхности связаны», выберите Fc «2-1», «3-1», или «4-1» по отдельности и проверить все отображенные кривой от различных концентраций аналитов, а также «ноль» концентрация заготовки. Нажмите кнопку «Далее», чтобы получить в буферном Blank вычитаемых кривых. Затем нажмите кнопку «Кинетика» выбрать: модель «1 1 Binding» и нажмите кнопку «Установить», чтобы получить оборудованный кинетической парамеОслабляет. Для глобального фитинга нескольких моноклональных антител , поверхностей, нажмите кнопку «Multiple R макса» в нижней части и добавьте кривые связывания с другими FCS для той же МКИ к списку. Нажмите кнопку «Далее», чтобы получить все буфера пустыми вычитаются связывания кривых. Затем нажмите кнопку «Кинетика» выберите «1: 1 Переплет» модель, и выбрать «подходят местные» для каждого R макс в параметрах для получения глобально , установленных кинетических параметров. 3. Кинетические измерения в XPR36 Proteon Инструмент и Подготовка реагентов Равновесие сенсорного чипа GLM и 2-L бутылки PBS-T-EDTA (PBS [рН 7,4], 0,005% твин-20, и 3 мМ ЭДТА), работающий буфер при комнатной температуре в течение 15 мин. В программе управления, нажмите кнопку «Извлечь», а затем вставьте чип GLM. Установите температуру чипа до «25» ° С и температурой автосамплера до «10» ° C.Нажмите кнопку «Глицерин Initialization» и следуйте инструкциям, побудившие для инициализации микросхемы. Нажмите кнопку «Файл | Открыть» протокол предобусловливания из списка, подготовить решения в 96-луночного планшета. Затем нажмите кнопку «Выполнить», выберите протокол и нажмите кнопку «Пуск». Оттепель один 1 мл аликвоты 400 мМ EDC и один 1 мл аликвоты 100 мМ N-hydroxysulfosuccinimide (сульфо-NHS) при комнатной температуре. Подготовьте 2 мл белка А / G при 60 мкг / мл в 10 мМ ацетата натрия (рН 4,5) и 500 мкл каждого образца монАТ на уровне 0,25 мкг / мл, 0,125 мкг / мл, и 0,063 мкг / мл в PBS-T -EDTA рабочего буфера. Оттепель замороженный флакон человеческого PCSK9 на льду. Иммобилизация, Аналит Связывание и регенерация Нажмите «Файл | Новый | Новый протокол». В разделе «Конфигурация», введите название эксперимента, выберите «GLM» чип, выберите «микропланшетов» и введите «2.2» мл объема. Выбрать"Протоколы | Образцы", определить "EDC / сульфо-NHS", как "Активатор" в скважинах H1-H6, "Белок A / G", как "лиганд" в G1-G6 "этаноламина" как "Deactivator" в F1-F6 , "Глицин" как "Регенератор" в E1-E6, PBS-T-EDTA "как "пустой" в D1-D6, "моноклональное антитело Х образец", как "лиганд" в C1-C6, и "человеческого PCSK9", как" аналит в скважинах H1-H6 в второй 96-луночного планшета. Выберите «Шаги», дважды нажмите кнопку «иммобилизация» в «Редактор протоколов», этапы включают в себя три последующие горизонтальные инъекции ВДГ / сульфо-NHS, белок A / G, и 1 М этаноламина каждый со скоростью потока «30» мкл / мин и время контакта «300» с. Нажмите «Регенерация», ввести три «18» -s импульсы глицина (рН 1,5) при «100» мкл / мин в горизонтальном и вертикальном направлениях, а затем два «60» -s импульсы PBS-T-EDTA в «25» мкл / минКроме того, в обоих направлениях. Нажмите кнопку «Лиганд», впрыснуть мАт 1 мАт 2 в вертикальном направлении с использованием скорости потока «25» мкл / мин и времени контакта «160» с. Нажмите кнопку «аналит», ввести пять концентраций человеческого PCSK9 (100 нМ до 6,25 нМ в 2-кратных серийных разведений) и пустой буфер более 6 горизонтальных каналов одновременно, на «40» мкл / мин в течение «600» S времени ассоциации с последующим на «2700» с времени диссоциации. Нажмите «Регенерация», ввести два «18» -s импульсы глицина (рН 1,5) при «100» мкл / мин в горизонтальном и вертикальном направлениях. Повторите описанные выше шаги после каждого цикла связывания для остального мАта. Примечание: В дополнение к 100 нМ – 6,25 нМ серии концентрация PCSK9 человек, 25 нМ – 1,56 нМ и 5 нМ – 0,313 серии концентраций нМ используются. Подготовка образцов и реагентов в двух 96-луночных планшетов в соответствии с положениями реагентовопределенный в шаге 3.2.2, а затем перейдите на вкладку «Выполнить», выберите протокол / эксперимент и нажмите кнопку «Пуск». Анализ данных с помощью диспетчера Proteon Нажмите кнопку «Тип панели» и выберите «аналит». Затем нажмите кнопку «Протокол» Шаг и выбрать все кривые связывания в списке. Нажмите кнопку "Auto Process" и нажмите кнопку "Process | Channel Reference | Interspot". Затем нажмите кнопку "Process | Double Reference | Строка | A6". Нажмите кнопку «Создать Dataset» для сохранения отдельных наборов данных для каждой МКИ на все трех поверхности для кинетического анализа. Нажмите кнопку «Анализ Dataset», выделите каждый МАБ набор данных и нажмите кнопку «Анализ | Kinetic». Выберите модель «Ленгмюра» и «Одновременный ка / K» и нажмите кнопку «Далее». Выделите как ассоциации и диссоциации подходят диапазон, выберите «Local» R макс, и нажмите кнопку «Далее» , чтобы выполнить подгонку , чтобы получитьподогнанные кинетические параметры. Повторите предыдущий шаг , но выбрать «Сгруппированные» R макс для фитинга , чтобы получить экспериментальные значения Р макс для вычисления лиганда поверхностной активностью. 4. Кинетические измерения в октете RED384 Реагент и подготовка образцов плиты Подготовьте 50 мл 1x KB (кинетический буфер, содержащий PBS рН [7,4], 0,02% твина-20, 0,1% альбумина и 0,05% азида натрия) путем разбавления 10x маточного раствора в PBS. Распределяют 1x KB в 96-луночный планшет при 200 мкл на лунку. 48 Гидрат против человеческого захвата (АКА) биосенсора советы в этих отдельных скважинах в течение по крайней мере 10 мин. Подготовьте каждый образец Mab при 20 мкг / мл, 10 мкг / мл и 5 мкг / мл в 1x КБ, а также человеческий PCSK9 в 7 титруемых концентрациях от 100 нМа до 1,56 нМ в 2-кратном серийные разведения. Загрузка образцов Mab в 384-луночный наклоненным дном микропланшет (REFErred в качестве реагента плиты) и PCSK9 решений человека в другом 384-луночный микропланшет (именуемого в качестве образца плиты) при 90 мкл на лунку. Нагрузка серия 1x KB и глицин (рН 1,5) растворы в скважинах внутри образца плиты. Примечание: Эти 1x KB скважины используются для чипа предобусловливания, базовой стабилизации и аналит диссоциации. Раствор глицина используется для регенерации. Экспериментальный метод установки В программе сбора данных, нажмите кнопку «Эксперимент | Новый Мастер Эксперимент | Новая Кинетика Эксперимент | Основные Kinetics». В «Тарелка Определение», выполните действия, описанные ниже, чтобы определить типы выборок и позиций. Выбор каналов «16» и «формат 384-а». Определение местоположения реагента и образца на дисплее пластины, удерживая клавишу Shift, то время как левой кнопкой мыши на лунку, чтобы выделить 16 скважин одновременно. Щелкните правой кнопкой мыши налунки, содержащие образцы монАТа и выберите «Загрузить», чтобы обозначить стадию, на которой будет загружен мАт (или захваченный) на датчики AHC. Введите имена МАБ и концентрации в таблице справа. Правой кнопкой мыши на скважинах, содержащих человеческий PCSK9 и выберите «образец», чтобы указать шаг, при котором моноклональное антитело-захваченные датчики смоченным и связывающие взаимодействия измеряются. Введите соответствующие молярные концентрации в таблице на правой стороне. Определить лунки, содержащие 1x KB как «буфер» или «нейтрализация», и лунки, содержащие глицин в качестве «регенерации». В «Пробирной Определение», выполните действия, описанные ниже, чтобы определить экспериментальную установку: Нажмите кнопку «Добавить» и выберите «Базовый уровень», «Регенерация», «уравновешивания», «Загрузка», «Ассоциация» и «диссоциация» шагов в список с временами «30» с «30" , "18", с "200" с, "500" с, и "1800" с, соответственно. Скорость встряхивания "1000" показывает оборотов в минуту. Чтобы добавить шаги «Список Assay Steps», первый щелчок на шаг, а затем нажмите на скважинах, расположенных в любом образце или пластины реагента. Эти меры заключаются в следующем: Уравновешивание-Регенерация: предпосылкой датчики AHC по трем циклам «15» -s провалов в глицина (рН 1,5), чередующихся с «15» -s провалов в 1x КБ. Загрузка: захват образцов МАБ на датчики AHC для «200» с. Исходные данные: установить сигнал BLI для «60» с до стадии объединения. Ассоциация: погружение датчиков в лунки, содержащих различные концентрации человеческого PCSK9 для -s периода объединения «500». Разобщение: окунуть PCSK9 переплет датчиков в новые лунки 1x КБ для «1800» -s периода диссоциации. Регенерация: окунуть MAB-PCSK9 Bouй датчики в лунки глицина (рН 1,5) с двумя «18» -s импульсов между каждым циклом связывания. В «Experiments Review», скользит по шагам и внести необходимые изменения, возвращаясь к предыдущим закладкам. В «Выполнить эксперименты», введите время «60» S задержки и встряхнуть образец пластину во время ожидания. Установите температуру пластины на «25» ° C и нажмите «GO». Анализ данных с помощью программного обеспечения для анализа данных ForteBio в Нажмите «Выбор данных | Загруженные данные | Кинетика | PCSK9 антитела связывания с PCSK9 7.23.14» В «Обработка», обрабатывать данные следующим образом: На шаге 1: нажмите кнопку «Sensor Selection», чтобы выделить датчики в H1-H6, щелкните правой кнопкой мыши на них и нажмите кнопку «Изменить тип датчика | Reference Sensor.» На шаге 2 установите флажок «Вычитание» и выберите «Среднее Эталонные датчики»; вычитать каждый активный датчик образца от среднего значения из 6 пустых датчиков буфера. На шаге 3, нажмите на кнопку «Align Оси Y» и выбрать «базовый», чтобы выровнять все кривые связывания к базовой стадии перед ассоциацией. На шаге 5, проверьте «Савицкого-Голея фильтрации», чтобы сгладить кривые связывания путем увеличения отношения сигнал-шум, и нажмите кнопку «Process Data!». На шаге 6, нажмите кнопку «Обработанные результаты», чтобы просмотреть обработанные кривые связывания. На шаге 7, рассмотреть четыре панели на правом отображаются обязательные кривые после каждого этапа обработки, и нажмите «Сохранить Обработанные данные». В «Анализ», «проверить ассоциации и диссоциация» и выбрать: модель «1 1». Выделите обязательные кривые «Global (полный)» подходит и группировать их по «цвету». Используйте «R макс связанный» , чтобы выполнить установку на группу датчиков , покрытых тем же мКонцентрация Ab , чтобы получить экспериментальные значения Р макс для расчета поверхностной активности лиганда и «R макс UNLINKED датчиком» , чтобы выполнить глобальную установку на датчики , покрытые с несколькими концентрациями моноклональных антител , . Нажмите кнопку «Fit Curves» для получения искомых параметров кинетики. Сохранение результатов в конце каждого фитинга анализа. 5. Кинетические Измерения в IBIS MX96 Инструмент и Подготовка реагентов Равновесие чип СООН-G при комнатной температуре в течение 15 мин. Подготовьте 1-L бутылку работающей системы буфера (PBS, [рН 7,4], 0,01% твин-20) и буфер иммобилизации (10 мМ ацетат натрия [рН 5,0], 0,01% твин-20). Подготовьте каждый мАт с 20 мкг / мл до 0,16 мкг / мл с помощью 2-кратных серийных разведений как в системном буфере работает и ацетат натрия (рН 5,0) буфер иммобилизации. Разлить образцы Mab на два снаarate 96-луночные планшеты, в которых каждый мАт занимает 8 вертикальных скважин в концентрациях титрования при 200 мкл на лунку. Оттаивания аликвоты 400 мМ EDC и 100 мМ сульфо-NHS ​​при комнатной температуре. Подготовьте 300 мкл протеина А / G при 50 мкг / мл в ацетата натрия (рН 5,0) буфера иммобилизации и пипеткой его в пробирку. Подготовьте 200 мкл человеческого PCSK9 от 100 нМ до 0,39 нМ на 2-кратных серийных разведений в системе, работающей буфер. Пипетировать их в отдельные флаконы. Кинетика несколько циклов с массивами антител аминных связью Смешайте EDC / сульфо-NHS ​​(400 мМ / 100 мМ) аликвоты и дозировать смесь в верхние 48 лунок нового 96-луночный планшет в количестве 200 мкл на лунку. Поместите исходный пластину (MAB разводили в ацетат натрия [рН 5,0]) в положении 2 и реагента пластины ВДГ / сульфо-NHS ​​в положении 1 внутри принтера. Установите сенсорный чип в CFM. Откройте «CFM 2,0» Softwarе, а затем нажмите кнопку «Загрузить настройки | 96 Амин Пара». Массив 10 х 8 антитела создается следующим образом: Доставьте EDC / сульфо-NHS ​​в верхней половине пластины реагента к датчику с использованием 48 микроканалов, и цикл их по поверхности датчика для «5» мин. Доставка образцов Mab в верхней половине пластины источника к датчику и циклу их через активированные поверхности для мин «10». Deliver буфер иммобилизации из конической трубки 50 мл на поверхности антитела для «5» мин. Повторите вышеуказанные процедуры для остальных образцов моноклональных антител, в нижней половине исходной пластины. Закрепление печатной микросхемы датчика в прибор. В программе управления, нажмите кнопку «Файл | Connect | Открыть измерения | Существующие измерения» и выберите «2014-08-15». В «Общие» выберите «G – System Prime» в разделе «Полный сценарий системы». Затем выберите «G – QuEncч», чтобы дезактивировать поверхности Mab путем инъекции 150 мкл 1 М этаноламина. Нажмите кнопку «Камера» для визуализации массивов МАБ и при необходимости отрегулировать контрастность. Поместите красные квадратики, чтобы окружить пятна МАБА и перемещать зеленые квадратики в interspots, расположенного между активными моноклональными антителами, местами для ссылок. В "Анализ цикла", выберите "A – AP Standard Run" в разделе "IBIS Scripts". Установить 1,0 мин для базовой линии, 10,0 мин для ассоциации, и 90 шагов для диссоциации со скоростью 8 мкл / с. Внутри «Циклы», вводят человеческий PCSK9 одну концентрацию в момент времени после пяти буферных инъекций. Регенерация поверхности Mab с глицином рН 2,0 между каждым циклом связывания. Кинетика однотактной с Fc-захвачены массивами антител Установить новый сенсорный чип в CFM. Повторите шаги 5.2.3 на 5.2.5 выше, путем замены образцов Mab с белком A / G. УдалитьДатчик стружки от MX96 и вставить его обратно в принтер CFM. Доставить мАт в верхней половине пластины с белком A / G поверхности датчика с использованием 48 микроканалов, и цикл их по всей поверхности с использованием двунаправленного потока в течение 10 мин. Повторите описанную выше операцию для остальных образцов моноклональных антител, в нижней половине пластины. Закрепление напечатанного обломка датчика в прибор MX96. В программном обеспечении сбора данных, нажмите кнопку «Файл | Connect | Open измерения | Существующие измерения | Далее» и выберите «Protein A + G связывания kinetic7.30.14». Нажмите кнопку «камеры», чтобы визуализировать массивы МАБ и при необходимости отрегулировать контрастность. Поместите красные квадратики, чтобы окружить пятна МАБА и перемещать зеленые квадратики в interspots, расположенного между активными моноклональными антителами, местами для ссылок. В "Анализ цикла", выберите "A – AP Standard Run" в разделе "IBIS Scripts". Набор «1,0 мин» для базовой линии, «10.0мин»для объединения, и„“шаги для диссоциации на„10“/ сек скорость 8 мкл. Внутри «Циклы», вводят человеческий PCSK9 одну концентрацию в момент времени после пяти буферных инъекций. Регенерация не выполняется между каждой инъекцией аналита. Анализ данных с помощью Спринт и Поломоечные В Sofware SprintX, нажмите «Файл | Открыть Triangle Файл», выберите все образцы уколы в списке, и «перед нажатием кнопки» Анализировать флажок «Сохранить SprintX файл», «Калибровка», и «определение RLL». Примечание: Значения RLL относятся к иммобилизованным / захваченным уровням моноклональных антител, на поверхности сенсора. Проверьте «Реферирование» и выберите «Локальный», чтобы использовать соседние опорные точки. Также проверьте «Align» на первой инъекции, а затем нажмите кнопку «Пуск автоматизации.» На вкладке Последовательная выберите «Показать линейки на панели инструментов,» настроить ихчтобы выбрать небольшую область базовой линии непосредственно перед первой инъекцией образца, и выберите «Ноль». Сформировать файл .IBMX для анализа в скруббер, выбрав «Экспорт в файл IBMX», а затем нажмите кнопку «Пуск автоматизации.» Запустите Поломоечные и загрузите файл .IBMX. Введите «100N», как «Фондовая конц» и «2», как «фактор разведения». Данные Crop, удалить все базовые до начала впрыска и выровнять кривые связывания в начале объединения. Примечание: Для эксперимента кинетики одного цикла, не совпадают кривые. Перейдите на вкладку «Kinetics», установите линейку для конечного времени впрыска, выберите «K D» и нужный, то «исправить K D.» Выберите «K A K D» и установить его снова. Поплавок столбца K D и установить снова для дальнейшего уточнения подгонки. Примечание: Для подгонки одного цикла связывания кривых, Нажмите кнопку «Opts» и снимите флажок «Вычитание», затем выберите «Separate» и плывет колонку «Begin INJ», чтобы соответствовать профилям ассоциации обратно к теоретическому базового происхождения. Обзор искомых параметров кинетики на вкладке Результаты.

Representative Results

На рисунке 1 показано изображение массива антитела из CFM и пятнистых уровней моноклональных антител , с помощью двух методов иммобилизации, а на рисунок 2 показаны соответствующие обязательные сенсограммы , генерируемые в MX96 от мульти-цикла кинетических и кинетических измерения Однотактных на этих моноклональные антителах , массивы , Связывание и кинетический подогнанные кривые из нескольких поверхностей покрытых антител , генерируемых в четыре биосенсоре платформ в режиме реальное время показано на рисунках 3 – 6. На фиг.7 показано сравнение конечных кинетических скоростей и равновесных констант связывания , полученных из глобального анализа этих кривых связывания. Отдельные ассоциации (к а), диссоциации (K d), и равновесие (KD) константы связывания представлены в таблице 1. Для того, чтобы продемонстрировать изменчивость наборов данных, генерируемых в рамках одного инструмента, <stRong> На рисунке 8 представлены графики K A, K D и K D при различных плотностях мАта поверхности, и фиг.9 дополнительно сравнивает вычисленную связывающую деятельность поверхностей моноклональных антител , биосенсор платформ. Рисунок 1. Мультиплекс Лиганд Массивы аминной связи (А) и Fc-захвачены (B) антитела поверхностей от CFM печати в IBIS MX96. Изображения печатных массивов показаны в левой панели, где серые зоны , окруженные красными квадратами указывают на наличие антител. Более темные interspots, расположенные между активными пятнами антител используются для эталонного вычитания. Каждый столбец содержит антитело, напечатанное в концентрациях, указанных ниже титрования и слева от изображения. Количества печатных антител количественно путем расчета диfference в объемных сдвигах между активными и опорными точками приведены в правых панелях. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры. Рисунок 2. Сравнение реального времени Binding сенсограмм из нескольких циклов (А) и один цикл (B) Кинетические эксперименты в IBIS MX96. Последовательные инъекции человеческого PCSK9 при увеличении концентраций через решетку 10 х 8 антител отмечены выше каждый соответствующий сегмент сенсограммы. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры. <stRong> Рисунок 3. Связывание сенсограмм захваченных антител человека Взаимодействие с PCSK9 и 1: 1 кинетической моделью Fit наложений в Biacore T100. Взаимодействие оценивается более высоко- (верхние панели), средне- (средние панели), а также с низкими (нижними панелями) поверхности плотности. Налагаемое гладкие черные линии представляют собой кинетическую подгонку связывания ответных сигналов при различных концентрациях человека PCSK9 (цветные линии) к 1: 1 модели взаимодействия. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры. Рисунок 4. Связывание сенсограмм захваченных антител человека Взаимодействие с PCSK9 и 1: 1 кинетической моделью Fit наложений в Proteon XPR36. Взаимодействие оценивается более высокие (верхние панели), MediUM – (средние панели), а также с низкими (нижние панели) поверхность плотности. Налагаемое гладкие черные линии представляют собой кинетическую подгонку связывания ответных сигналов при различных концентрациях человека PCSK9 (цветные линии) к 1: 1 модели взаимодействия. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры. Рисунок 5. Связывание сенсограмм захваченных антител человека Взаимодействие с PCSK9 и 1: 1 кинетической моделью Fit наложений в октете RED384. Взаимодействие оценивается более высоко- (верхние панели), средне- (средние панели), а также с низкими (нижними панелями) поверхности плотности. Налагаемое красные линии представляют собой кинетическую подгонку связывания ответных сигналов при различных концентрациях человека PCSK9 (цветные линии) до 1: 1 модель взаимодействия. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры. Рисунок 6. Связывание сенсограмм из аминных в сочетании (А) и Fc-захваченных (B) антител человека Взаимодействия с PCSK9 и 1: 1 кинетической моделью Fit наложений в IBIS MX96. Связывающие профили организованы в виде 10 х 8 панелей , которые следуют карте массива пластины на рисунке 1. Черные линии представляют собой записанные обязательные ответные сигналы при различных концентрациях PCSK9 человека, и наложенные красные линии представляют собой встроенные кривые. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры. фигура 7" SRC = "/ файлы / ftp_upload / 55659 / 55659fig7.jpg" /> Рисунок 7. Сравнение Ассоциации K A (A), диссоциация к D (B), и равновесный К Д (С) константами связывания , порожденных платформами Четыре биосенсора. Кинетические параметры получены из глобального анализа связывания кривых на рисунках 3 – 6. Приборы представлены следующим образом: Biacore T100 (синий), Proteon XPR36 (зеленый), октет RED384 (красный), ИБИС MX96, амин связи (фиолетовый), и ИБИС MX96, Fc-захвачены (оранжевый). Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры. Рисунок 8. Сравнение Консистенции кинетических Констант За множество антител поверхностных плотностей в BIAC руда Т100 (А), Proteon XPR36 (В), октет RED384 (С), ИБИС MX96, амин связью (D) и ИБИС MX96, Fc-захвачена (Е). Кинетические параметры K A (верхний субпанели), K (D среднего суб-панели), а К D (нижние субпанели) получают из группового анализа на индивидуальной поверхностной плотности антитела. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры. Рисунок 9. Связывание Деятельности антител поверхностей и их стандартные отклонения (погрешности) в платформах Четыре БИОСЕНСОРА. Значения вычисляются с использованием уравнений , описанных в научных статьях 17.large.jpg»целевых =„_blank“> Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры. к а к д K D (М -1 с -1) (с -1) (нМ) мАт 1 11,7 (7,8) × 10 5 4,89 (4,18) х 10 -5 0,052 (0,05) мАт 2 1,53 (0,28) × 10 5 1,30 (1,54) х 10 -5 0,092 (0,12) мАт 3 11,4 (8,3) × 10 5 27,6 (11,0) × 10 -5 0,333 (0,20) мАт 4 3,61 (1,6) × 10 5 20,1 (12,3) х 10 -5 0,659 (0,54) мАт 5 0,59 (0,21) × 10 5 3,46 (2,50) х 10 -5 0,663 (0,46) мАт 6 1,19 (0,78) × 10 5 7,21 (3,83) х 10 -5 0,894 (0,64) мАт 7 1,29 (0,53) × 10 5 16,4 (5,63) х 10 -5 1,57 (1,02) мАт 8 4,02 (2,23) × 10 5 22,8 (10,7) х 10 -5 0,768 (0,68) мАт 9 4.20 (2.13) × 10 5 6,67 (4,3) × 10 -5 0,197 (0,16) МКА 10 1.20 (0.49) X 10 5 12,5 (7,64) х 10 -5 1,27 (0,80) Таблица 1: Кинетические Цены и Равновесие константы связывание 10 моноклональных ПОЛУЧЕННОГО Глобальной фитинге кривых связывания с четыре БИОСЕНСОРОМ инструментов в 1: Модель взаимодействия 1.

Discussion

Наше исследование сравнения головы к голове показывает, что каждая биосенсора платформа имеет свои сильные и слабые стороны. Несмотря на то, связывающие профили антител подобны путем визуального сравнения (Рисунки 3 – 6), и ранг порядок полученных констант кинетических скоростей весьма последовательно через инструментов (рисунок 7), полученные нами результаты показывают , что ППР на основе приборов с непрерывная струйная потока) лучше при разрешении высокой аффинности взаимодействий с низкой скоростью диссоциации. Восходящий дрейф во время фазы диссоциации наблюдается в наборах данных (например, МАт 2, мАт 5, и мАт 9; Рисунок 5) , порожденный BLI гидросистемы свободного инструментом. Этот вывод может быть связан в значительной степени испарения образца с течением времени в микропланшете, который является основным ограничением системы. С помощью этого присущего ограничения, экспериментальное время также ограничено до менее чем 12 ч; Поэтому эксперименты были запрограммированы с шorter раз (500 сек ассоциации и диссоциации 30 мин) по сравнению с теми из других платформ (10 мин ассоциации и диссоциации 45 мин). Тем не менее, сокращение экспериментального времени не появлялось , чтобы смягчить влияние испарения на качестве данных / консистенции, так как константы скорости , генерируемые Л на основе прибора , показывают меньшую линейность в результате флуктуаций в некоторых из отходящих ставок (фиг.8С ). В дополнении к испарению образца, различие в используемых реагентах, используемых захвата может также способствовало различиям в полученных результатах. В то время как белок A / G использовали во все три гидросистеме на основе SPR платформы, датчики AHC были использованы в не-гидросистеме BLI платформе. Так как белок A / G, вероятно, имеют более слабое сродство к мАт, чем делает ПВК, антитело на основе биосенсора поверхность, отходящие темпы мАт-антиген комплекса от белка A / G поверхностей может искусственно появляться быстрее, чем те, получено от поверхности AHC. Эта возможность поддерживается бу экспериментальные данные , показывающие , что значения вне скорости , генерируемые платформой BLI были последовательно ниже , чем полученные от других инструментов (рисунок 7, красная линия). Тем не менее, BLI платформа имеет различные преимущества по сравнению с другими платформами. Например, она обладает высокой гибкостью в отношении выбора датчика и конфигурацию анализа из-за различные предварительно покрытые датчиками для немедленного использования. В наших экспериментах, использование датчиков AHC устраняет необходимость шагов лиганда иммобилизации, сокращая время приготовления. Кроме того, платформа ЛА требует гораздо меньшее техническое обслуживания по сравнению с другими струйной SPR платформ, которые отличают сложную насосно-компрессорную и переключатель значения конфигурации. Эта функция является преимуществом для экспериментов с сырой образцы, которые могут вызвать проблемы засорения и загрязнения.

Поскольку спрос на эффективное, быстрое и точное выявление терапевтических кандидатов возрастает, потребность в биosensor пропускная способность также растет. Среди четыре биосенсора платформ, пропускная способность от биосенсора, способного 96-лиганда печати массива является самым высоким, с последующим биосенсором, соединенным с пересекающим 36-лигандом формата и Л на основе биосенсора с 16-канальным синхронным считыванием, которая в конечном счете увеличить число взаимодействий, измеренных в одном цикле связывания до 96, 36 и 16, соответственно. Эти возможности пропускная способность значительно выше, чем у традиционной SPR платформы, которая ограничена наличием только четыре ячейки потока, соединенные один последовательный поток. Поскольку наши эксперименты включали относительно небольшой набор образцов из 10 моноклональных антител оценивали в нескольких поверхностных плотностей с большим временем диссоциации, инструментальные пропускные способности играет умеренную роль в определении эффективности экспериментов. Там не было никаких существенных различий в экспериментальных времен трех высокопроизводительных платформ, а также во всех случаях опыты были проведены в один день, С другой стороны, традиционные эксперименты SPR последовательного потока требуется 3 дня, чтобы закончить, несмотря на блуждания одноразовая автоматизации сбора данных после установки в. В других исследованиях, включающие большое количество образцов (например , в сотнях или тысячах), для ранжирования от скорости / Кинетическая скрининга или эпитоп биннинговых целей, пропускная способность становится критическим фактором.

Хотя пропускная способность в IBIS MX96 на несколько порядков выше, чем у других биосенсоров и поэтому является оптимальным выбором для этих целей, он имеет несколько недостатков. В частности, печать массива с помощью CFM показывает большие поверхностные несоответствия (рисунок 1) и снижение воспроизводимости данных (рис 8D и 8E). Для получения точных кинетических измерений, количество лиганда на поверхности биосенсора является критическим параметром, который необходимо контролировать, чтобы гарантировать, что связывание ответы не нарушается вторичными факторами, такие какмассоперенос или пространственное затруднение. Для Biacore T100 и Proteon XPR36, уровни оптимальной R L были определены на основе стандартного расчета значений макс множество R , как описано в статье 17 исследований. С другой стороны, для платформ Октета RED384 и ИБИС MX96, уровни захвата монАТа были достигнуты эмпирический с использованием ряда 2-кратно серийно разведенными антител при постоянном время. Отсутствие знаний или контроля стадии захвата привело к поверхности с высокой плотностью и высокими сигналами связывания отклика (рисунок 2) , что , возможно, скомпрометированных точностью констант кинетических скоростей. Кроме того, разделение принтера от детектора SPR также представляет собой проблему при проведении нескольких измерений связывания цикла с участием перерождения. Единственный способ выполнить настройку кинетики мульти-цикла путем прямое аминное сочетание из мАта, в отличие от захвата через монАТ Fc с иммобилизованным белком A / Gповерхность в трех других платформах биосенсора. В результате дополнительный эксперимент регенерации разведки требовалось, чтобы определить оптимальные условия регенерации. Исход этой установки был связан с ~ 90% меньше наблюдаемой поверхностной активностью по сравнению с методом захвата Fc (рисунок 9), в дополнении к уже времени эксперимента. Для того, чтобы выполнить метод захвата Fc, был принят кинетический подход Альтернативы однотактного. Этот подход включает в себя последовательное введение анализируемого вещества при увеличении концентраций без регенерации между каждой инъекции (рисунок 2). Это очень удобно, но менее часто применяется подход не только сократил время эксперимента и снижение расхода реагента, но и получает константы кинетической скорости весьма сходные с теми из других биосенсоров (рисунок 7). Поэтому, применяя эту кинетику однотактного подход преодолевает присущее конфигурации ограничение прибора и представляет собойвозможность для получения констант с высокой разрешающей способностью кинетических скоростей в высокой пропускной образом.

Несмотря на пропускной способности является основным ограничением в Biacore T100, наши результаты в совокупности показывают, что она породила наиболее последовательные данные с высоким качеством. Это сопровождалось Proteon XPR36, который имеет ~ 10 раз выше пропускной способности. Их способность генерировать высококачественные данные становится преимуществом при характеристике высоким сродством антитело-антиген взаимодействий, которые могут быть технически сложной задачей при достижении пределов обнаружения инструментов. В то время как систематические ограничения в измерительных приборах октет RED384 препятствуют точному измерению констант диссоциации скорости (т.е. далеко от чувствительности разрешить достаточное затухание сигнала для медленного офф-ставка), как Biacore T100 и Proteon XPR36 может обеспечить чувствительным и надежным обнаружения для дифференцировки.

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы благодарят Ной Дитто и Адам Мили за техническую помощь на IBIS MX96.

Materials

Biacore T100 System GE Healthcare 28975001 The T100 system has been upgraded to T200
CM5 Sensor Chip  GE Healthcare BR100012
BIAevaluation  GE Healthcare Version 4.1
Biacore T100 Control Software GE Healthcare The T100 control software has been upgraded to T200
Amine Coupling Kit GE Healthcare BR100050  It contains: 750 mg 1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl)carbodiimide hydrochloride (EDC), 115 mg N-hydroxysuccinimide (NHS), 10.5 ml 1.0 M ethanolamine-HCl pH 8.5 
HBS-EP+ Buffer 10× GE Healthcare BR100669 Concentrated stock solution 
Plastic Vials, o.d. 7 mm GE Healthcare BR100212 
Rubber Caps, type 3 GE Healthcare BR100502
Plastic Vials and Caps, o.d. 11 mm GE Healthcare BR100214 
ProteOn XPR36 Protein Interaction Array System Bio-Rad 1760100
ProteOn Manager Software  Bio-Rad 1760200 Version 3.1.0.6
GLM Sensor Chip Bio-Rad 1765012
Amine Coupling Kit Bio-Rad 1762410 It includes EDAC (EDC), sulfo-NHS, ethanolamine HCl 
Regeneration and Conditioning Kit and Buffers Bio-Rad 1762210 It includes 1 each glycine buffer (pH 1.5, 2.0, 2.5, 3.0), and NaOH, SDS, HCl, phosphoric acid, NaCl; 50 ml each solution 
2 L PBS/Tween/EDTA buffer Bio-Rad 1762730 It includes hosphate buffered saline (PBS), pH 7.4, 0.005% Tween 20, 3 mM EDTA 
Octet RED384 System FortéBio
Data Analysis Software FortéBio Version 9.0.0.4
Dip and Read Anti-hIgG Fc Capture (AHC) Biosensors FortéBio 18-5060 One tray of 96 biosensors 
384-Well Tilted-Bottom Plate  FortéBio 18-5080
Biosensor Dispenser FortéBio 18-5016
Kinetics Buffer 10X FortéBio 18-1092 10X concentration. Contains ProClin 300. 
IBIS MX96 SPRi System Wasatch Microfluidics
Microfluidics Continuous Flow Microspotter (CFM) Printer Wasatch Microfluidics Version 2.0
SensEye COOH-G chip Wasatch Microfluidics 1-09-04-004
Data Analysis Software Wasatch Microfluidics Version 6.19.3.17
SPRint Data Analysis Software Wasatch Microfluidics Version 6.15.2.1
Scrubber 2 BioLogic Software Version 2
Pierce Recombinant Protein A/G ThermoFisher Scientific 21186
DOWNLOAD MATERIALS LIST

参考文献

  1. Cooper, M. A. Optical biosensors in drug discovery. Nat Rev Drug Discov. 1 (7), 515-528 (2002).
  2. Van Regenmortel, M. H., et al. Measurement of antigen-antibody interactions with biosensors. J Mol Rec. 11 (1-6), 163-167 (1998).
  3. Canziani, G. A., Klakamp, S., Myszka, D. G. Kinetic screening of antibodies from crude hybridoma samples using Biacore. Anal Biochem. 325 (2), 301-307 (2004).
  4. Katsamba, P. S., et al. Kinetic analysis of a high-affinity antibody/antigen interaction performed by multiple Biacore users. Anal Biochem. 352 (2), 208-221 (2006).
  5. Abdiche, Y. N., Malashock, D. S., Pinkerton, A., Pons, J. Exploring blocking assays using Octet, ProteOn, and Biacore biosensors. Anal Biochem. 386 (2), 172-180 (2009).
  6. Abdiche, Y. N., et al. High-Throughput Epitope Binning Assays on Label-Free Array-Based Biosensors Can Yield Exquisite Epitope Discrimination That Facilitates the Selection of Monoclonal Antibodies with Functional Activity. PLoS ONE. 9 (3), e92451 (2014).
  7. Ecker, D. M., Jones, S. D., Levine, H. L. The therapeutic monoclonal antibody market. mAbs. 7 (1), 9-14 (2014).
  8. Rich, R. L., Myszka, D. G. Higher-throughput, label-free, real-time molecular interaction analysis. Anal Biochem. 361 (1), 1-6 (2007).
  9. Keighley, W. The need for high throughput kinetics early in the drug discovery process. Drug Disc World. 12 (3), 39-45 (2011).
  10. Lad, L., et al. High-throughput kinetic screening of hybridomas to identify high-affinity antibodies using bio-layer interferometry. J Biomol Screen. 20 (4), 498-507 (2015).
  11. Bravman, T., Bronner, V., Nahshol, O., Schreiber, G. The ProteOn XPR36TM Array System-High Throughput Kinetic Binding Analysis of Biomolecular Interactions. Cell Mol Bioeng. 1 (4), 216-228 (2008).
  12. Eddings, M. A., et al. Improved continuous-flow print head for micro-array deposition. Anal Biochem. 382 (1), 55-59 (2008).
  13. Abdiche, Y., Malashock, D., Pinkerton, A., Pons, J. Determining kinetics and affinities of protein interactions using a parallel real-time label-free biosensor the Octet. Anal Biochem. 377 (2), 209-217 (2008).
  14. Abdiche, Y. N., Lindquist, K. C., Pinkerton, A., Pons, J., Rajpal, A. Expanding the ProteOn XPR36 biosensor into a 36-ligand array expedites protein interaction analysis. Anal Biochem. 411 (1), 139-151 (2011).
  15. Rich, R. L., et al. A global benchmark study using affinity-based biosensors. Anal Biochem. 386 (2), 194-216 (2009).
  16. Yang, D., Singh, A., Wu, H., Kroe-Barrett, R. Comparison of biosensor platforms in the evaluation of high affinity antibody-antigen binding kinetics. Anal Biochem. 508, 78-96 (2016).
  17. Yang, D., Singh, A., Wu, H., Kroe-Barrett, R. Dataset of the binding kinetic rate constants of anti-PCSK9 antibodies obtained using the Biacore T100 ProteOn XPR36, Octet RED384, and IBIS MX96 biosensor platforms. Data in Brief. 8, 1173-1183 (2016).
  18. Bouvier, E. S. P., Koza, S. M. Advances in size-exclusion separations of proteins and polymers by UHPLC. Trends Anal Chem. 63, 85-94 (2014).

タグ

Antibody-antigen BindingBiosensor PlatformsKinetic DataDrug DiscoveryBiacore T100ProteOn XPR36Experimental DesignKinetic MeasurementsHigh-affinity InteractionsData ConsistencyOperational Efficiency

Play Video
PDF
DOI
DOWNLOAD MATERIALS LIST
記事を引用
Yang, D., Singh, A., Wu, H., Kroe-Barrett, R. Determination of High-affinity Antibody-antigen Binding Kinetics Using Four Biosensor Platforms. J. Vis. Exp. (122), e55659, doi:10.3791/55659 (2017).
引用ダウンロード
転載と許可

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below

CAPTCHA Image
Play CAPTCHA Audio
Refresh Image