概要

Differenziazione dei atriale cardiomiociti dalle cellule staminali pluripotenti utilizzando la BMP Antagonista Grem2

Published: March 10, 2016
doi:

概要

Generating cardiomyocytes from pluripotent stem cells in vitro allows access to large amounts of cardiac tissue in vitro for basic science and clinical applications. This protocol uses the atrializing factor Grem2 to both increase the numbers of cardiomyocytes obtained and to generate cardiomyocytes with an atrial phenotype.

Abstract

Protocolli per la generazione di popolazioni di cardiomiociti dalle cellule staminali pluripotenti sono state sviluppate, ma questi in genere produrre cellule di fenotipi misti. I ricercatori interessati a perseguire studi condotti su specifici sottotipi miociti richiedono un approccio più diretto differenziazione. Trattando staminali embrionali (ES) cellule di topo con Grem2, un antagonista BMP secreta che è necessario per la formazione camera atriale in vivo, un gran numero di cellule cardiache con un fenotipo atriale può essere generato. L'utilizzo della linea di cellule staminali pluripotenti Myh6-DsRed-Nuc ingegnerizzato permette l'identificazione, la selezione e la purificazione dei cardiomiociti. In questo protocollo corpi embrionali sono generati dalle cellule Myh6-DsRed-Nuc utilizzando il metodo goccia e mantenute in sospensione fino differenziazione giorno 4 (D4). A cellule d4 sono trattati con Grem2 e placcato su piastre rivestite di gelatina. Tra D8-D10 grandi aree contraenti si osservano nelle culture e continuano ad espandersi e mtura attraverso d14. Molecolare, analisi istologiche e electrophysiogical indicano le cellule in cellule Grem2-trattati acquisiscono caratteristiche atriale-like che forniscono un modello in vitro per studiare la biologia dei cardiomiociti atriali e la loro risposta a vari agenti farmacologici.

Introduction

Le cellule staminali pluripotenti sono un potente strumento per la generazione e lo studio delle cellule da una miriade di difficoltà ai tessuti di accesso per ricerche e studi pre-clinici di base, in particolare negli esseri umani 1-5. Una corretta modulazione delle vie di segnalazione di sviluppo in grado di dirigere la differenziazione delle cellule staminali pluripotenti al destino fenotipica desiderata. Molti protocolli sono stati sviluppati per generare cardiomiociti (CMS) a partire da cellule staminali pluripotenti 6-14. Questi protocolli comportano generalmente la modulazione di TFGβ superfamiglia (Activin, BMP e TGFβ) e percorsi attraverso temporizzata aggiunta di fattori di crescita esogeni e / o piccole molecole Wnt 10,12-15. Questi protocolli sono generalmente efficace ad aumentare la percentuale di cellule che diventano CMs, ma mancano di specificità, generando una popolazione mista di cellule che rappresentano linee atriale, ventricolare e sistema nodale / conduzione. Al fine di studiare cardiaco specifico sottotipi A appro differenziazione più direttoè necessario ach.

Gremlin2 (Grem2, chiamato anche proteine ​​correlate a Dan e Cerberus o PRDC in breve) è un antagonista BMP secreto che è necessario per una corretta differenziazione cardiaca e la formazione da camera atriale durante lo sviluppo cardiaco in zebrafish 16. Trattare differenziazione delle cellule staminali embrionali con Grem2 alla differenziazione giorno 4, subito dopo picco di espressione di marcatori mesodermici T-brachyury e Cerberus come 1, aumenta la resa della CM e genera un pool di cellule prevalentemente del lignaggio atriale 14.

Ricombinante Grem2 viene usato per trattare le cellule differenziazione e può essere realizzato con proteine ​​standard di tecniche di produzione 17 o possono essere acquistati commercialmente. È altamente solubile in soluzioni acquose e possono essere aggiunte esogenamente per culture al punto di tempo desiderato.

La differenziazione può essere rintracciato tramite RT-qPCR per quantificare l'espressione di marcatori di rappresentantedei progenitori cardiovascolari, i progenitori cardiaci, e impegnato CMS. Immunofluorescenza può anche essere usato per identificare e visualizzare la distribuzione spaziale dei tipi di cellule cardiache.

Le applicazioni che richiedono popolazioni pure vengono più facilmente effettuate quando si utilizza un sistema reporter per identificare e isolare CM. A questo scopo, abbiamo introdotto il αMHC-DsRedNuc costrutto nella linea di cellule del mouse CGR8 ES 14. Cellule CGR8 crescono e restano pluripotenti senza cellule di alimentazione, facilitando saggi di espansione e differenziazione 18. La linea di cellule ES contiene una proteina fluorescente DsRed sequenza codificante con un segnale di localizzazione nucleare sotto l'alfa cardiaca-specifico miosina catena pesante (alfa Mhc o Myh6) promotore del gene. Utilizzando queste cellule, CMS può essere facilmente identificato e isolato per la quantificazione, l'ordinamento delle cellule, elettrofisiologia, schermi di droga, e lo studio dei meccanismi di differenziazione atriale.

Protocol

1. Preparazione di cellule di coltura, soluzioni e reagenti. Preparare 500 ml di mouse sulle cellule staminali embrionali (Mesc) mezzi di miscelazione e filtrazione sterile (0,2 micron dimensione dei pori) 445 ml Glasgow Minimum Essential Medium (GMEM), 50 ml di calore inattivato siero fetale bovino (FBS), 5 ml 100X concentrato L- sostituzione di glutammina, 5 ml ricombinante del mouse leucemia inibitorio Factor (LIF) a 1 x 10 7 unità per ml e 1,43 microlitri ß-mercaptoetanolo (concentrazione fin…

Representative Results

Prima di differenziazione, le cellule staminali pluripotenti dovrebbero essere compatto e privo di differenziazione spontanea. Le cellule mostrati nella Figura 1A sono pronti per essere singolarizzati e utilizzato per appendere gocce come descritto in 5.1 della sezione del protocollo. Le cellule illustrati nella Figura 1B sono spontaneamente la differenziazione e non devono essere utilizzati per la preparazione di gocce sospese. <p class="jove_conten…

Discussion

Questo protocollo produce ordinariamente culture con una elevata percentuale di CMS che sono caratteristici della stirpe atriale. Come con qualsiasi protocollo di differenziazione, la qualità delle mESCs prima di differenziazione dovrebbe essere data particolare attenzione. mESCs dovrebbero essere monitorati di routine per una corretta morfologia (Figura 1A). Qualsiasi differenziazione spontanea che si verifica prima della formazione di EB si limitano fortemente l'efficienza del cardiogenesis e dev…

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato sostenuto da NIH sovvenzioni HL083958 e HL100398 (AKH) e 2T32HL007411-33 "Programmi in meccanismi cardiovascolari: Formazione in Investigation" (JB).

Materials

GMEM Life Technologies 11710
FBS Life Technologies 10082
Glutamax Life Technologies 35050
LIF EMD Millipore ESG1107
ß-Mercaptoethanol Sigma M3148
IMDM Sigma I3390
Non-Essential Amino Acids Sigma M7145
10 cm Tissue Culture Plates Sarstedt 83.3902
10 cm Bacterial Petri Dishes VWR 25384-342
6 cm Bacterial Petri Dishes VWR 25384-092
6-well tissue culture plates Sarstedt 83.3920
Gremlin 2 recombinant protein R&D Systems 2069-PR-050
Sterile filter units Thermo Fisher 09-741-02
Gelatin (from porcine skin) Sigma G1890
10X PBS, Sterile Sigma P5493
BSA  Sigma 5470
0.05% Trypsin-EDTA solution Life Technologies 25300054
DPBS, no Calcium, no Magnesium Life Technologies 14200

参考文献

  1. Loya, K., Eggenschwiler, R., et al. Hepatic differentiation of pluripotent stem cells. Biological Chemistry. 390 (10), 1047-1055 (2009).
  2. Narazaki, G., Uosaki, H., et al. Directed and systematic differentiation of cardiovascular cells from mouse induced pluripotent stem cells. Circulation. 118 (5), 498-506 (2008).
  3. Zhang, Y., Pak, C., et al. Rapid single-step induction of functional neurons from human pluripotent stem cells. Neuron. 78 (5), 785-798 (2013).
  4. Park, I. H., Arora, N., et al. Disease-specific induced pluripotent stem cells. Cell. 134 (5), 877-886 (2008).
  5. Golos, T. G., Giakoumopoulos, M., Garthwaite, M. A. Embryonic stem cells as models of trophoblast differentiation: progress, opportunities, and limitations. Reproduction. 140 (1), 3-9 (2010).
  6. Boheler, K. R., Czyz, J., Tweedie, D., Yang, H. T., Anisimov, S. V., Wobus, A. M. Differentiation of pluripotent embryonic stem cells Into cardiomyocytes. Circulation Research. 91 (3), 189-201 (2002).
  7. Burridge, P. W., Anderson, D., et al. Improved human embryonic stem cell embryoid body homogeneity and cardiomyocyte differentiation from a novel V-96 plate aggregation system highlights interline variability. Stem Cells. 25 (4), 929-938 (2007).
  8. Cai, C. L., Liang, X., et al. Isl1 Identifies a cardiac progenitor population that proliferates prior to differentiation and contributes a majority of cells to the heart. Developmental Cell. 5 (6), 877-889 (2003).
  9. Fujiwara, M., Yan, P., et al. Induction and enhancement of cardiac cell differentiation from mouse and human induced pluripotent stem cells with Cyclosporin-A. PLoS ONE. 6 (2), e16734 (2011).
  10. Rai, M., Walthall, J. M., Hu, J., Hatzopoulos, A. K. Continuous antagonism by Dkk1 counter activates canonical wnt signaling and promotes cardiomyocyte differentiation of embryonic stem cells. Stem Cells and Development. (1), 54-66 (2012).
  11. Burridge, P. W., Matsa, E., et al. Chemically defined generation of human cardiomyocytes. Nature Methods. 11 (8), 855-860 (2014).
  12. Lian, X., Zhang, J., et al. Directed cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells by modulating Wnt/β-catenin signaling under fully defined conditions. Nature Protocols. 8 (1), 162-175 (2013).
  13. Zhang, J., Klos, M., et al. Extracellular matrix promotes highly efficient cardiac differentiation of human pluripotent stem cells: the matrix sandwich method. Circulation Research. 111 (9), 1125-1136 (2012).
  14. Tanwar, V., Bylund, J. B., et al. Gremlin 2 promotes differentiation of embryonic stem cells to atrial fate by activation of the JNK signaling pathway. Stem Cells. 32 (7), 1774-1788 (2014).
  15. Kattman, S. J., Witty, A. D., et al. Stage-specific optimization of activin/nodal and BMP signaling promotes cardiac differentiation of mouse and human pluripotent stem cell lines. Cell Stem Cell. 8 (2), 228-240 (2011).
  16. Müller, I. I., Melville, D. B., et al. Functional modeling in zebrafish demonstrates that the atrial-fibrillation-associated gene GREM2 regulates cardiac laterality, cardiomyocyte differentiation and atrial rhythm. Disease Models & Mechanisms. 6 (2), 332-341 (2013).
  17. Kattamuri, C., Luedeke, D. M., Thompson, T. B. Expression and purification of recombinant protein related to DAN and cerberus (PRDC). Protein Expression and Purification. 82 (2), 389-395 (2012).
  18. Schulz, H., Kolde, R., et al. The FunGenES Database: A genomics resource for mouse embryonic stem cell differentiation. PLoS ONE. 4 (9), e6804 (2009).
  19. . Phosphate-buffered saline (PBS). Cold Spring Harbor Protocols. , (2006).
  20. Livak, K. J., Schmittgen, T. D. Analysis of relative gene expression data using Real-Time quantitative PCR and the 2−ΔΔCT method. Methods. 25 (4), 402-408 (2001).
  21. Beck, H., Semisch, M., Culmsee, C., Plesnila, N., Hatzopoulos, A. K. Egr-1 regulates expression of the glial scar component phosphacan in astrocytes after experimental stroke. American Journal of Pathology. 173 (1), 77-92 (2008).
  22. Graham, E. L., Balla, C., Franchino, H., Melman, Y., del Monte, F., Das, S. Isolation, culture, and functional characterization of adult mouse cardiomyoctyes. Journal of Visualized Experiments. (79), (2013).
  23. Brown, A. L., Johnson, B. E., Goodman, M. B. Patch clamp recording of ion channels expressed in Xenopus oocytes. Journal of Visualized Experiments. (20), (2008).
  24. Brown, A. L., Johnson, B. E., Goodman, M. B. Making patch-pipettes and sharp electrodes with a programmable puller. Journal of Visualized Experiments. (20), (2008).
  25. Sachinidis, A., Fleischmann, B. K., Kolossov, E., Wartenberg, M., Sauer, H., Hescheler, J. Cardiac specific differentiation of mouse embryonic stem cells. Cardiovascular Research. 58 (2), 278-291 (2003).
  26. Keller, G. M. In vitro differentiation of embryonic stem cells. Current Opinion in Cell Biology. 7 (6), 862-869 (1995).
  27. Höpfl, G., Gassmann, M., Desbaillets, I. Differentiating embryonic stem cells into embryoid bodies. Volume 2: molecular embryo analysis, live imaging, transgenesis, and cloning. Methods in Molecular Biology. , 254-279 (2004).
  28. Ao, A., Williams, C. H., Hao, J., Hong, C. C. Modified mouse embryonic stem cell based assay for quantifying cardiogenic Induction Efficiency. Journal of Visualized Experiments. (50), (2011).
  29. Antonchuk, J., Gassmann, M., Desbaillets, I. Formation of embryoid bodies from human pluripotent stem cells using AggreWell™ plates. Basic Cell Culture Protocols. 946, 523-533 (2013).
  30. Horii, T., Nagao, Y., Tokunaga, T., Imai, H. Serum-free culture of murine primordial germ cells and embryonic germ cells. Theriogenology. 59 (5-6), 1257-1264 (2003).

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記事を引用
Bylund, J. B., Hatzopoulos, A. K. Differentiation of Atrial Cardiomyocytes from Pluripotent Stem Cells Using the BMP Antagonist Grem2. J. Vis. Exp. (109), e53919, doi:10.3791/53919 (2016).

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