We present a new technique to measure the lateral diffusion of a surface active species at the fluid-fluid interface by merging a droplet monolayer onto a flat monolayer.
We introduce a new method to measure the lateral diffusivity of a surfactant monolayer at the fluid-fluid interface, called fluorescence recovery after merging (FRAM). FRAM adopts the same principles as the fluorescence recovery after photobleaching (FRAP) technique, especially for measuring fluorescence recovery after bleaching a specific area, but FRAM uses a drop coalescence instead of photobleaching dye molecules to induce a chemical potential gradient of dye molecules. Our technique has several advantages over FRAP: it only requires a fluorescence microscope rather than a confocal microscope equipped with high power lasers; it is essentially free from the selection of fluorescence dyes; and it has far more freedom to define the measured diffusion area. Furthermore, FRAM potentially provides a route for studying the mixing or inter-diffusion of two different surfactants, when the monolayers at a surface of droplet and at a flat air/water interface are prepared with different species, independently.
リン脂質は細胞膜および細胞小器官の膜の主要成分であり、これらの膜層の流動性は、多くの場合、膜タンパク質1の活性を変化させることによって細胞機能に影響する– 3。例えば、膜 脂質ホメオスタシスは、膜タンパク質によって検出される膜の流動性を調整することによって達成され、流動性の異常なレベルは、脂肪肝及び胆汁うっ滞4などの重篤な疾患を引き起こします。また、エア肺胞流体界面でのリン脂質単分子膜の流動性は、その機能において重要な意味を持ちます。低流動性が呼気5,6の間に肺胞内に収まるように層を可能にする一方、肺サーファクタントリン脂質単層の高い流動性は、吸入の間層の広がりを促進します。これは、それらの役割を理解するために、リン脂質層の流動性を推定することが重要です。
_content ">流動性の直接測定は、粘度であり、かつリン脂質層の粘度は、ミクロンサイズのコロイド7、磁性針8,9、および磁性マイクロボタン6,10,11を用いて測定された。しかしながら、これらの技術比較的剛性のフィルムに限定され、かつ粘性の低いフィルムを測定することができない。このような場合、拡散率はリン脂質層の流動性を定量化するための代替手段であろう。数十年のために、リン脂質層の拡散特性を測定するための様々な技術が開発されていますこのような蛍光消光法12、パルス磁場勾配NMR 13、および蛍光相関分光法(FCS)14として最も代表的な方法の一つは、(FRAP)15,16を光退色後蛍光回復である。これにより、測定手順の単純さと関連しますリン脂質層の拡散特性の理論、いくつかの研究では、FRAPを使用して行われてきました<suP> 17から19まで。しかし、FRAPは、通常、高出力レーザーで高価な共焦点顕微鏡のセットアップが必要です。ここでは、(FRAM)をマージした後蛍光回復と呼ぶリン脂質単層の横方向の拡散を測定するための新しい手法を提示します。 FRAPとFRAMの主な違いは、光退色のステップをドロップ合体により置換されていることです。蛍光標識された平らな単層上に非蛍光単分子膜で覆われた液滴をマージするので、光退色のステップと同じ初期状態を設定し、明るいフラット化単分子膜上に円形の暗い染みを残します。それから、横方向の拡散率を測定するための時間と暗い染色での蛍光回復を観察します。ドロップ合体によるこの新しい「漂白」のステップは、FRAP上で重要な利点を提供します:FRAMは、蛍光顕微鏡ではなく、FRAPに必要な高出力レーザで高価な共焦点顕微鏡を必要とします。私n個の追加、それが光退色過程を伴わないため、FRAMは、蛍光色素の幅広い選択をしています。 FRAPのみが単層の自己拡散を測定しながら、最終的に、二つの異なる単層、液滴単層および平坦化単分子膜は、このように相互拡散を測定することができるように、独立して調製することができます。
FRAMは、高粘性の物質からほぼ非粘性材料に拡散測定の広い範囲を提供します。原則として、FRAMは、拡散がドロップ合体プロセス(〜10ミリ秒)の時間の間に100ミクロンによって領域にわたって100μmで発生した場合、既存の技術に匹敵する10 6μmの2 /秒、最大拡散率を測定することができます。単層が固体でない限り、また、遅い拡散プロセスを容易に測定することができます。 FRAMであれば、適切な蛍光タグ付き分子が利用可能であるような表面活性物質、任意の種類のために使用することができます。
FRAMは、特に特定の領域を漂白した後蛍光回復を測定するため、FRAPとの基本原則の多くを共有するが、FRAMは、漂白の領域を形成するために平坦な界面上に液滴をマージする代わりに、強い光を適用するプロセスを使用しています。マージ処理は、このようにFRAMの中で最も重要なステップであり、特に、液滴をマージした後のフラット化単分子膜で暗い染みの形状は、拡散率測定の精度を決定します。具体的には、現在の方法に基づいて、我々は唯一の手順4に示した暗い染色の平均強度を計算する関心領域として半径Rの円を設定し、円形状からあまり偏差がある場合、これは、拡散係数の正確な測定を妨げるであろう。したがって、円形の暗領域を得るために必要であるが、非円形の形状が原因で、いくつかの理由のために時折形成されています。まず、ペットにおける対流が存在する場合里皿を、暗い領域の形状は、流れの方向に沿って細長いなります。手順1.3で述べたように、円錐形装置は、対流を抑制するのに役立ち、そしてこの伸びを最小限に抑えることになります。キャピラリの先端がマージプロセス中に平坦な界面に触れるとキャピラリー端がマージ処理を中断するので秒、暗い領域は、様々な形状に形成されています。唯一の毛細管の最後からぶら下がっている液滴を取得することにより、この中断を防止することができます。具体的には、キャピラリーの疎水化処理は、キャピラリの最後に座って液滴をするのに役立ちます。したがって、上記のトラブル銃撃や修正をより正確に拡散特性を測定することが可能となります。
このよくtroubleshotプロセスは、このようにFRAMは、FRAPの上にいくつかの重要な利点を持つことができます。まず、FRAMは、FRAPに比べて簡単な装置を必要とします。 FRAMのために、簡単な蛍光MICROSを使用するのに十分です代わりに波長色素の吸収スペクトルと一致している必要があり、高出力レーザーで高価な共焦点顕微鏡で、対応いたします。また、FRAMは、液滴サイズ、液滴表面の面圧を調整することにより、容易に領域のサイズを制御しながら、FRAPで漂白領域の大きさを調整するために追加の装置を使用する必要があります。第二に、FRAM中の染料の様々な種を使用することが可能です。 FRAPは、その漂白プロセス、拡散プロセスよりもはるかに高速である色素分子を使用しています。染料の拡散が漂白工程中に発生した場合、それは正確に拡散特性を推定することは困難です。 FRAMは、しかしながら、染料を漂白するための方法を必要とせず、これは、このように蛍光イメージングにおける染料の様々なタイプの使用を可能にします。また、FRAPは、追加の高出力レーザーを必要とするフィルタは、FRAMにフィルタセットを交換することだけが必要であるが、染料の種類を変更する設定します。最後に、FRAPのみを測定しながら、液滴表面と平坦な界面で単分子層は、このように相互拡散の調査を可能にする、またはB型の単層に型単層をマージすることによって、2つの異なる脂質単層との混合、独立して形成することができるので単分子層の自己拡散。
これらの利点にもかかわらず、フラットな空気 – 水界面上に液滴をマージするプロセスは、潜在的に、このような2単層との間の面圧の不一致などの懸念があるかもしれないいくつかの問題に起因するこの技術では、マージ処理の時間スケールを制限することができます、および液滴をマージした後平らな単分子膜の表面圧の増加。これらの問題は、しかし、次の理由により、大幅に拡散測定には影響を与えません。まず、二つの異なる単層における面圧が非常に異なっていても、平衡化プロセスは、回復プロセスの間、非常に早い段階で終了します。例えば、T彼は、液滴表面に単分子膜の面圧が平坦な空気 – 水界面で単分子層よりも高い、暗い領域は、表面圧平衡になるまで膨張します。このプロセスは、10ミリ秒以内に完了しているので、それはかなり拡散プロセスに影響を与える前に、面圧が平衡化されます。マージ処理の時間スケールが十分に高速であれば第二に、それは全く拡散測定を制限するものではありません。幸いなことに、典型的なマージプロセスは、10ミリ秒以内に完了されます。トラフの表面積は、液滴の表面積よりもはるかに大きいため、最終的に、平坦な界面に液滴の偶数倍マージは、表面圧を増加させません。トラフのサイズおよびプロトコルに記載の液滴によると、分子当たりの面積は、液滴をマージして0.015%未満を増加させます。従って、原因分子当たりの面積の変化に対する面圧の上昇がnegligiblで0.1%未満でありますEウィルヘルミー板張力計によって測定され、それは、面圧で、典型的な誤差よりはるかに小さいからです。
要約すると、我々は平坦な界面上に液滴単層をマージすることにより、リン脂質単層の横方向の拡散特性を測定するための新しい方法を導入しました。この技術は、比較的単純な設備を必要とし、また色素種の各種の使用を可能にします。 FRAMは、流体 – 流体界面でのリン脂質、ブロックコポリマー、タンパク質、さらにはナノ粒子を含む任意の表面活性剤の拡散を測定するためにこのように潜在的に適用可能です。さらに、我々はFRAMは、2つの異なる界面活性剤との間の相互拡散や混合を研究する新しい方法を提供することを期待しています。
The authors have nothing to disclose.
この作品は、韓国国立研究財団(NRF- 2012R1A6A3A040395、NRF-2013R1A1A2057708、NRF- 2012R1A1A1011023)を通じて2014年KAIST資金によるK-バレーRED&Bプロジェクトと基礎科学研究開発プログラムでサポートされています。
Acetone | OCI corporation | Acetone 3.8L Extra Pure | Purity: ≥ 99.5%, Please consult material safety data sheets (MSDS) before use. |
Ethanol | OCI corporation | Ethanol 3.8L Extra Pure | Purity: ≥ 94%, Please consult material safety data sheets (MSDS) before use. |
Deionized water/Water purify system | Millipore | Milli-Q liocel | >18.2 MΩ·cm |
Dioleoylphosphatidylcholine, DOPC | Avanti Polar Lipids | 850375C | Please consult material safety data sheets (MSDS) before use. Chloroform is carcinogenic. |
Chloroform | LiChrosolv | Chloroform ultrapure (A3633) | Purity: ≥ 99.8%, Please consult material safety data sheets (MSDS) before use. Carcinogenic |
Rhodamine DPPE | Avanti Polar Lipids | 810158C, 810158P | Avoid direct light exposure to prevent photobleaching |
Wilhelmy plate tensiometer | R&K ultrathin organic film technology | Wilhelmy tensiometer | http://www.rieglerkirstein.de/index.htm |
Micropipette puller | Sutter instrument | P-1000 | |
Micro-injector | Eppendorf | Femtojet | |
Micromanipulator | Eppendorf | Micromanipulator 5171 | |
Microscope 1 | Objective lens: Olympus | Objective lens: UPlanFl 10x | Objective lens: 10x NA 0.3 |
Microscope 2 | Objective lens: Olympus, Tube lens: Thorlabs | Objective lens: UPlanFl 10x | Objective lens: 10x NA 0.3, tube lens: focal length 17 cm |
CCD for Microscope 1 | Jai | CV 950 camera | |
CCD for Microscope 2 | Andor | iXon3 EMCCD | |
Filter set | Chroma technology | Catalog Set 49004: ET545, T565, ET605 | Prepare suitable for dye molecules |
Sonicator | DAIHAN Scientific | Wiseclean WUC-D06H |