概要

שיטות להערכת Cytotoxicity ודיכוי חיסוני של תכשירי מוצרים דליקים טבק

Published: January 10, 2015
doi:

概要

Using optimized human peripheral blood mononuclear cell (PBMC) ex vivo assays, we showed that a combustible tobacco product preparation markedly suppresses receptor-mediated intracellularly secreted cytokines and cytolytic ability of effector PBMCs. These rapid assays may be useful in product evaluation and understanding the potential long-term effects of tobacco exposure.

Abstract

בין שינויי pathophysiological אחרים, חשיפה כרונית לעשן סיגריות גורמת לדלקת ודיכוי מערכת חיסונית, אשר נקשר לרגישות מוגברת של מעשנים לזיהומי חיידקים ושכיחות גידולים. Ex vivo דיכוי של מערכת חיסונית בתיווך קולט בתאי הדם היקפיים mononuclear אנושיים (PBMCs) טופל במרכיבי עשן הוא גישה אטרקטיבית ללמוד מנגנונים ולהעריך את ההשפעות ארוכת הטווח הסבירה של חשיפה למוצרי טבק. כאן, אנו מותאמים שיטות לבצע מבחני vivo לשעבר באמצעות PBMCs מגורה על ידי lipopolysaccharide חיידקים, יגנד רצפטור-4-כמו אגרה. ההשפעות של מדיום כל ממוזג עשן (WS-CM), הכנת מוצר טבק דליק (TPP), וניקוטין נחקרו על הפרשת ציטוקינים והרג תאי מטרה על ידי PBMCs במבחני vivo לשעבר. אנו מראים כי ציטוקינים מופרשים IFN-γ, TNF, IL-10, IL-6, IL-8 וציטוקינים תאיים IFN-47 ;, TNF-α, וMIP-1α דוכאו בPBMCs החשופה-WS-CM. פונקצית cytolytic של PBMCs מפעיל, כפי שנקבעו על ידי assay תא מטרת K562 הורג גם מופחתת על ידי חשיפה לWS-CM; הניקוטין היה מינימאלי יעיל במבחנים אלה. לסיכום, אנו מציגים סדרה של מבחני השתפרו להעריך את ההשפעות של עקר במבחני vivo לשעבר, ושיטות אלה יכולים להתאים בקלות לבדיקת מוצרים אחרים בעלי עניין.

Introduction

גוף משמעותי של נקודות ידע לתופעות לוואי הבריאותיות של עישון סיגריה כרוני, כולל מחלות לב וכלי דם (CVD), מחלת ריאות חסימתית כרונית (COPD) וסרטן 1,2. עישון סיגריות כרוני כבר ידוע לגרום לדלקת ודיכוי מערכת חיסונית, ושינויים אלה דיווחו לתרום לעלייה בסיכון לזיהום חיידקים וסרטן במעשנים 3. במבחנה וטכניקות vivo לשעבר שימושיות בהבהרת הבסיס המולקולרי של תופעות pathophysiological של עשן סיגריות 4-9 (טבלת 1) ומוכרות ככלים חשובים להדרכת תקנה החדשה של מוצרי טבק שונים 10,11.

לדוגמא, יש לנו הפגנו כי הכנות דליקים מוצר טבק (בעקר) כגון בינוני כל-מותנה עשן (WS-CM) וחומר חלקיקים כולל (TPM) הן הרבה יותר רעילות לתאים ומזיק לDNA מאשר בעקר או ניקוטין 12,13 אינו דליקים. עולה בקנה אחד עם העבודה שפורסמה, היא דיווחה לאחרונה כי בעקר או ניקוטין 12,13 דליקים. עולה בקנה אחד עם העבודה שפורסמה, שדיווחנו לאחרונה כי בעקר דליק גרם דיכוי חיסוני משמעותי. זה מעיד דיכוי Toll- כמו קולט -ligands (TLR), מגורה הפרשת ציטוקינים, וממוקד תא (K562) ההמתה בPBMCs במודל vivo לשעבר 14. בהתחשב במשמעות של דלקת בתהליכי מחלה נגרמים על-עשן סיגריות, אופטימיזציה נוספת של תנאי assay כדי להעריך את השפעות modulatory חיסון של עשן סיגריות מוצגת בדוח זה.

Vivo לשעבר מבחני בדרך כלל נמדדים תוך-תאיים ומופרשים ציטוקינים כמו גם הפונקציה של cytolytic ציטוטוקסיות תאי T וNK בתא K562 הורגת מבחני 14. מבחני מעורבים מראש דגירה עם WS-CM וניקוטין והגירוי הבא של PBMCים עם TLR אגוניסטים על פני תקופה של 3 ימים; הקריאות הסופיות מבוצעות באמצעות מבחני צמודי אנזים immunosorbent (ELISAs) ו / או cytometry זרימה. אנו מנוצלים lipopolysaccharide חיידקים (LPS), אשר נקשר לקולטנים TLR-4 ומעורר PBMCs כתוצאה מכך הייצור של ציטוקינים והפרשה של ציטוקינים תאיים. בנוסף לאופטימיזציה של צעדי assay השונים להערכת השפעות המערכת החיסונית של עקר, אנחנו גם שיטות הנוכחיות לPBMCs בידוד, מבחני מוות של תאים, ו- IL-8 כימות. שיטות אלה עשויות להיות מיושמות מטרה לענות על שאלות מחקר אחרות ומעודנות יותר כדי להעריך מוצרי טבק בהקשר הרגולטורי.

טבלת 1. פורסם דיווחים על במבחנה ושיטות לשעבר vivo משמשות ללמוד אפקטי pathophysiological varilus של הכנות מוצר טבק CS, בינוני עשן סיגריות.; CSC, עיבוי עשן סיגריות; מנוע חיפוש מותאם אישית, תמצית עשן סיגריות; ELISA, אנזים צמוד immunosorbent assay; GADPH, glyceraldehyde dehydrogenase 3-פוספט; qPCR, תגובת שרשרת של פולימראז כמותיים; RT, תגובת השרשרת של פולימראז כמותיים זמן אמת; TS, עשן טבק.

מחבר (שנת הלימוד) אל Laan et. (2004) אל מודי et. (2004) אל Oltmanns et. (2005) Vayssier (1998) אל Witherden et. (2004) אל Birrell et. (2008)
תאים המשמשים תאים אנושיים הסימפונות האנדותל (BEAS-2B), נויטרופילים אדם תאים אנושיים alveolar אפיתל (A549) תאי שריר חלקים בדרכי נשימה אנושיות (HASMC) תאים אנושיים premonocytic U937, מונוציטים אדם סוג מכתשי II תאי אפיתל (ATII) monocytic אדםשורת תאים (THP-1), מקרופאגים ריאות אנושיים
TPP משמש מנוע חיפוש מותאם אישית CSC מנוע חיפוש מותאם אישית TS מנוע חיפוש מותאם אישית CS
שיטה ELISA, qPCR, הגירה, שינוי electromobility Immunohisto-כימיה, אלקטרופורזה, ערכת Arrayscan, RT-PCR, ELISA ELISA, RT-PCR, qPCR, אלקטרופורזה משמרת ג'ל ניידות מיקרוסקופ אור, מיקרוסקופ אלקטרונים, אלקטרופורזה, ELISA qPCR, ELISA, ערכת E-toxate (Sigma), assay צלחת p65 (TransAM), אלקטרופורזה, ערכות immunoassay שונות
מדד IL-8, GM-CF, AP-1, NF-κB, הגירה acetyltransferases היסטון, deacetylases היסטון, NF-κB, IL-8, PI κB-α, GADPH HO-1, GADPH, RANTES, IL-8, eotaxin חלבוני הלם / עומס חום (HSP / Hsp70), גורם שעתוק HF, NF-κB,TNF-α חלבון פעילי שטח (SP-A, SP-C), IL-8, MCP-1, GRO-α, TNF-α, IL-1β, IFN-γ IL-8, IL-1β, IL-6, TNF-α, MIP1-α, GRO-α, MAPK / JNK / זירחון ERK, cJUN: DNA מחייב, גלוטתיון, p65: DNA מחייב
תוצאה סופית מנוע חיפוש מותאם אישית מטה-מווסת את ייצור ציטוקינים באמצעות דיכוי ההפעלה AP-1. H 2 O 2 וCSC לשפר acetylation של חלבוני היסטון, להקטין פעילות deacetylase היסטון, באופן דיפרנציאלי להסדיר שחרור ציטוקינים מעודדי דלקת. עשן סיגריות עלול לגרום לשחרורו של IL-8 מHASMC, משופר על ידי TNF-α, CSE 20% פחות שחרור IL-8, עיכוב של eotaxin וטווחים על ידי עשן סיגריות. TS הופעל גורם שעתוק HF, שהיה קשור עם ביטוי יתר Hsp70 ועיכוב של NFkB מחייב פעילות ושחרור TNF-α. alveo רמות chemokine תאים שמקורם ATII מופחת פשרהתיקון lar, תורם לנזק סיגריה מושרה עשן alveolar ואמפיזמה. נתונים לספק הסבר מכניסטי לזיהומים בדרכי הנשימה מדוע מעשנים גדלו. דיכוי התגובה המולדת מלווה בעלייה בIL-8.

Protocol

הערה: נכתב על הסכמה מהדעת לעשות מחקר זה התקבלה ביחידת מחקר קלינית מקומית באישור IRB, לשיטות עבודה קליניות טובות. עיבוד של דם, בידוד של PBMCs וניסויים תרבית תאים אחרים מבוצע בתנאים סטריליים, באמצעות אספקת microbiologically סטרילי וחומרים כימיים. <p class="jove_title" style=";text-align:right;direction:rtl…

Representative Results

התוצאות הוצגו כשגיאת ± סטנדרטית הממוצעת של הממוצע (ארבע דגימות תורם). מבחן t של הסטודנט בין דגימות בקרה שטופלו ולא טופלו בוצע באמצעות תוכנת Excel וכן השוואות מבחן t לכל הטיפולים עם הפקדים המתאימים שלהם. המובהקות הסטטיסטיות שצוינו על ידי: *, P <0.05; **, P <0.005; ***, P <0.0005. <p cla…

Discussion

אנו ואחרים הוכיחו בעבר כי הטיפול בPBMCs עם עקר מדכא כמה תגובות, כוללים ביטוי והפרשה של ציטוקינים ופעולות פונקציונליות כגון תא המטרה להרוג 14. השיטות הניסיוניות שתוארו בעבודה הקודמת דורשות תקופות דגירה ארוכות יותר והיו צנועים בגודל 14. בהתחשב ביישומים הפוטנצ?…

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו ממומנת על ידי RJ Reynolds חברת הטבק (RJRT) במסגרת הסכם לשיתוף פעולה מחקרית עם בית הספר לאוניברסיטת Wake Forest לרפואה. GL פראסאד הוא עובד במשרה מלאה של RJRT.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
12 X 75 tubes BD Falcon 352058
15 ml conical tubes Corning 430790
2 mL Microtubes Axygen MCT-150-C-S
3R4F reference cigarettes   Univ. of Kentucky, College of Agriculture 3R4F
50 ml conical tubes Corning 430828
500 ml bottle Corning 430282
7AAD BD Pharmingen 559925
96 well flat bottom plate Termo Nunc 439454
96 well round bottom plates BD Falcon 353077
Cell culture hood Thermo Scientific 1300 Series A2
Centrifuge Eppendorf 58110R
CFSE Molecular Probes Life Technologies C34554
Cluster tubes Corning 4401 Harmful if swallowed, carcinogen
Cytofix/Cytoperm (Permwash) BD Biosciences 555028 Flammable
DMSO (Dimethyl sulfoxide ) Sigma-Aldrich D8418
DPBS Lonza 17-512F
FBS Sigma-Aldrich F2442
FCAP Array BD Biosciences 652099 Software analyzes CBA data
Filter unit Nalgene 156-4020
Flow Cytometer BD Biosciences FACS Canto II  8 colors, at Ex 405 and Em785.
Flow Cytometer BD Biosciences FACS Calibur  4 colors at Ex 495 and Em 785.
Flow cytometry analysis software Tree Star FlowJo
Freezing Container Nalgene 5100-0001 Contains DMSO,  irritant
GogliPlug BD Biosciences 555029 Carcinogen, Irritant, Corrosive 
H2SO4 Sigma-Aldrich 339741
Human Inflammatory Cytokine Kit BD Biosciences 551811
IFN-γ V-500 Antibody BD Horizon 561980  skin sensitizer
IL-8 ELISA Kit R and D Systems DY208
Isolation Buffer Isolymph, CTL Scientific Corp. 1114868 Flammable liquid, Irritant 
Isopropyl alcohol Sigma-Aldrich W292907
L-Glutamine Gibco Life Technologies 25030-081
LPS Sigma-Aldrich L2630
MIP1-α PE Antibody BD Pharmingen 554730 Acute toxicity, Oral
Monensin Sigma-Aldrich M5273
NaCl Sigma-Aldrich S7653
Nicotine Sigma-Aldrich N3876 Acute toxicity, Environmental hazard
Parafilm Bemis “M”
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148 Flammable, Skin irritation 
Pen/strep Gibco Life Technologies 15140-122
RPMI 1640 Gibco Life Technologies 11875-093
Running buffer MACS Running Buffer, Miltenyi Biotech 130-091-221
Th1/Th2 CBA Kit BD Biosciences 551809
TNF-α Alexa Fluor 488 Antibody BioLegend 502915
Transfer pipette Fisher Scientific 13-711-20
Tris Base Sigma-Aldrich T1503

参考文献

  1. . . How Tobacco Smoke Causes Disease: The Biology and Behavioral Basis for Smoking-Attributable Disease, A Report of the Surgeon General. , (2010).
  2. Zeller, M., Hatsukami, D. The Strategic Dialogue on Tobacco Harm Reduction: a vision and blueprint for action in the US. Tob. Control. 18, 324-332 (2009).
  3. Sopori, M. Effects of cigarette smoke on the immune system. Nature Reviews Immunology. 2, 372-377 (2002).
  4. Birrell, M. A., Wong, S., Catley, M. C., Belvisi, M. G. Impact of tobacco-smoke on key signaling pathways in the innate immune response in lung macrophages. J. Cell Physiol. 214, 27-37 (2008).
  5. Laan, M., Bozinovski, S., Anderson, G. P. Cigarette smoke inhibits lipopolysaccharide-induced production of inflammatory cytokines by suppressing the activation of activator protein-1 in bronchial epithelial cells. J. Immunol. 173, 4164-4170 (2004).
  6. Moodie, F. M., et al. Oxidative stress and cigarette smoke alter chromatin remodeling but differentially regulate NF-kappaB activation and proinflammatory cytokine release in alveolar epithelial cells. Faseb J. 18, 1897-1899 (2004).
  7. Oltmanns, U., Chung, K. F., Walters, M., John, M., Mitchell, J. A. Cigarette smoke induces IL-8, but inhibits eotaxin and RANTES release from airway smooth muscle. Respir. Res. 6, 74 (2005).
  8. Vayssier, M., Favatier, F., Pinot, F., Bachelet, M., Polla, B. S. Tobacco smoke induces coordinate activation of HSF and inhibition of NFkappaB in human monocytes: effects on TNFalpha release. Biochem. Biophys. Res. Commun. 252, 249-256 (1998).
  9. Witherden, I. R., Vanden Bon, E. J., Goldstraw, P., Ratcliffe, C., Pastorino, U., Tetley, T. D. Primary human alveolar type II epithelial cell chemokine release: effects of cigarette smoke and neutrophil elastase. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 30, 500-509 (2004).
  10. Hatsukami, D. K., Biener, L., Leischow, S. J., Zeller, M. R. Tobacco and nicotine product testing. Nicotine Tob. Res. 14, 7-17 (2012).
  11. Ashley, D. L., Backinger, C. L., van Bemmel, D. M., Neveleff, D. J. Tobacco Regulatory Science: Research to Inform Regulatory Action at the Food and Drug Administration’s Center for Tobacco Products. Nicotine Tob. Res. , (2014).
  12. Arimilli, S., Damratoski, B. E., Bombick, B., Borgerding, M. F., Prasad, G. L. Evaluation of cytotoxicity of different tobacco product preparations. Regul. Toxicol. Pharmacol. 64, 350-360 (2012).
  13. Gao, H., Prasad, G. L., Zacharias, W. Differential cell-specific cytotoxic responses of oral cavity cells to tobacco preparations. Toxicol In Vitro. , (2012).
  14. Arimilli, S., Damratoski, B. E., Prasad, G. L. Combustible and non-combustible tobacco product preparations differentially regulate human peripheral blood mononuclear cell functions. Toxicol. In Vitro. 27, 1992-2004 (2013).
  15. Arimilli, S., Damratoski, B. E., Chen, P., Jones, B. A., Prasad, G. L. Rapid isolation of leukocyte subsets from fresh and cryopreserved peripheral blood mononuclear cells in clinical research. Cryo Letters. 33, 376-384 (2012).
  16. Schmid, I., Krall, W. J., Uittenbogaart, C. H., Braun, J., Giorgi, J. V. Dead cell discrimination with 7-amino-actinomycin D in combination with dual color immunofluorescence in single laser flow cytometry. Cytometry. 13, 204-208 (1992).
  17. Kim, G. G., Donnenberg, V. S., Donnenberg, A. D., Gooding, W., Whiteside, T. L. A novel multiparametric flow cytometry-based cytotoxicity assay simultaneously immunophenotypes effector cells: comparisons to a 4 h 51Cr-release assay. J. Immunol. Methods. 325, 51-66 (2007).
  18. Taga, K., Yamauchi, A., Kabashima, K., Bloom, E. T., Muller, J., Tosato, G. Target-induced death by apoptosis in human lymphokine-activated natural killer cells. Blood. 87, 2411-2418 (1996).

Play Video

記事を引用
Arimilli, S., Damratoski, B. E., G.L., P. Methods to Evaluate Cytotoxicity and Immunosuppression of Combustible Tobacco Product Preparations. J. Vis. Exp. (95), e52351, doi:10.3791/52351 (2015).

View Video