概要

Modellazione 3D del laterale ventricoli e istologica Caratterizzazione del Tissue periventricolare di esseri umani e il mouse

Published: May 19, 2015
doi:

概要

Using MRI scans (human), 3D imaging software, and immunohistological analysis, we document changes to the brain’s lateral ventricles. Longitudinal 3D mapping of lateral ventricle volume changes and characterization of periventricular cellular changes that occur in the human brain due to aging or disease are then modeled in mice.

Abstract

The ventricular system carries and circulates cerebral spinal fluid (CSF) and facilitates clearance of solutes and toxins from the brain. The functional units of the ventricles are ciliated epithelial cells termed ependymal cells, which line the ventricles and through ciliary action are capable of generating laminar flow of CSF at the ventricle surface. This monolayer of ependymal cells also provides barrier and filtration functions that promote exchange between brain interstitial fluids (ISF) and circulating CSF. Biochemical changes in the brain are thereby reflected in the composition of the CSF and destruction of the ependyma can disrupt the delicate balance of CSF and ISF exchange. In humans there is a strong correlation between lateral ventricle expansion and aging. Age-associated ventriculomegaly can occur even in the absence of dementia or obstruction of CSF flow. The exact cause and progression of ventriculomegaly is often unknown; however, enlarged ventricles can show regional and, often, extensive loss of ependymal cell coverage with ventricle surface astrogliosis and associated periventricular edema replacing the functional ependymal cell monolayer. Using MRI scans together with postmortem human brain tissue, we describe how to prepare, image and compile 3D renderings of lateral ventricle volumes, calculate lateral ventricle volumes, and characterize periventricular tissue through immunohistochemical analysis of en face lateral ventricle wall tissue preparations. Corresponding analyses of mouse brain tissue are also presented supporting the use of mouse models as a means to evaluate changes to the lateral ventricles and periventricular tissue found in human aging and disease. Together, these protocols allow investigations into the cause and effect of ventriculomegaly and highlight techniques to study ventricular system health and its important barrier and filtration functions within the brain.

Introduction

Un ependimali linee monostrato cellulare il sistema ventricolare del cervello fornire funzioni bidirezionali di barriera e di trasporto tra il fluido cerebrale spinale (CSF) e liquido interstiziale (ISF) 1-3. Queste funzioni aiutano a mantenere in equilibrio fisiologico 2,3 libero da agenti tossici nel cervello. Negli esseri umani la perdita di porzioni di questo rivestimento per infortunio o malattia non sembra tradursi in sostituzione rigenerativa come si trova in altri rivestimenti epiteliali; piuttosto la perdita di copertura cellulare ependimale sembra comportare astrogliosis periventricolare con un reticolo di astrociti che coprono regioni spoglie di cellule ependimali in superficie ventricolo. Gravi ripercussioni ai meccanismi importanti CSF / cambio ISF e di liquidazione sarebbero previsti come conseguenza la perdita di questo strato epiteliale 1,2,4-7.

Una caratteristica comune di invecchiamento umano è allargata ventricoli laterali (ventricolomegalia) ed edema periventricolare associati come observcato da MRI e fluido attenuato inversion recovery MRI (risonanza magnetica / FLAIR) 8-14. Per indagare il rapporto tra ventricolomegalia e l'organizzazione cellulare del rivestimento ventricolo, post-mortem sequenze MRI umani sono stati abbinati con preparati istologici di ventricolo laterale del tessuto periventricolare. Nei casi di ventricolomegalia, aree consistenti di gliosi avevano sostituito copertura cellulare ependimale lungo la parete del ventricolo laterale. Quando l'espansione ventricolo non è stato rilevato da analisi del volume basato su risonanza magnetica, il rivestimento delle cellule ependimale era intatto e gliosi non è stato rilevato lungo il rivestimento ventricolo 6. Questo approccio combinatorio rappresenta la prima documentazione dettaglio cambiamenti globali in integrità cellulare del rivestimento ventricolo laterale utilizzando preparazioni wholemount di porzioni o l'intera parete del ventricolo laterale e modellazione 3D di volumi ventricolo 6. Molte malattie (malattia di Alzheimer, la schizofrenia) e le lesioni (lesioni cerebrali traumatiche)mostrano ventricolomegalia come funzionalità neuropathological presto. Denudation delle aree del rivestimento delle cellule ependimale quindi sarebbe previsto per interferire con la normale funzione delle cellule ependimali e compromettere l'equilibrio omeostatico tra CSF / fluido ISF e scambio soluto. Così, un esame più approfondito delle modifiche apportate al sistema ventricolare, la sua composizione cellulare, e la conseguenza di strutture cerebrali sottostanti o vicine alla fine inizierà a rivelare di più sulla neuropatologia associata con l'allargamento del ventricolo.

La mancanza di dati di imaging multimodali, in particolare sequenze di dati longitudinali, con accesso limitato ai corrispondenti campioni istologici rende l'analisi di patologie cerebrali umane difficile. Fenotipi modellazione trovano in invecchiamento umano o malattia può spesso essere realizzato con modelli di topo e modelli animali diventano uno dei nostri migliori mezzi per esplorare le domande circa l'inizio e la progressione delle malattie umane. Diversi studi insani giovani topi hanno descritto la citoarchitettura delle pareti ventricolo laterale e la nicchia di cellule staminali sottostante 4,7-15. Questi studi sono stati estesi per includere la modellazione 3D e analisi cellulare delle pareti del ventricolo attraverso invecchiamento 6,15. Né gliosi periventricolare né ventricolomegalia sono osservati in topi anziani, piuttosto topi mostrano una zona subventicular relativamente robusta (SVZ) staminali nicchia di cellule soggiacente ad una cella ependimale intatto fodera 6,15. Così, esistono notevoli differenze specie-specifiche sia nella manutenzione e l'integrità del rivestimento ventricolo laterale generale durante il processo di invecchiamento 6,15. Pertanto, per migliori topi uso di interrogare le condizioni presenti negli esseri umani, le differenze tra le due specie hanno bisogno di essere caratterizzato e adeguatamente considerati in qualsiasi paradigma di modellazione. Qui vi presentiamo le procedure per valutare le variazioni longitudinali ai ventricoli laterali e tessuto periventricolare associati in esseri umani e mouse. Le nostre procedure comprendono Rendering 3D e volumetria del mouse e ventricoli umani, e l'uso di analisi immunoistochimica di interi preparati montaggio di tessuto periventricolare per caratterizzare sia di organizzazione e struttura cellulare. Insieme, questi procedimenti forniscono un mezzo per caratterizzare cambiamenti nel sistema ventricolare e tessuto periventricular associato.

Protocol

NOTA: le procedure di animali sono stati approvati dalla University of Connecticut IACUC e sono conformi alle linee guida NIH. Il tessuto umano e l'analisi dei dati e le procedure fossero conformi e approvati dalla University of Connecticut IRB e sono conformi alle linee guida NIH. 1. Mouse: Analisi di periventricolare Cellular Integrità e modellazione 3D del ventricolo laterale 1.1) Preparazione del mouse ventricolo laterale intera parete Monti Prep…

Representative Results

Contour tracciamento dei ventricoli laterali del mouse sulla base immunostained 50 micron sezioni coronali e ricostruzioni 3D (Figura 3) consente ai dati del volume per essere raccolti in diversi paradigmi sperimentali utilizzando il mouse come sistema modello per la malattia o infortunio. Fondamentale per questa procedura è l'esclusione delle regioni in cui le pareti laterali ventricolo aderiscono l'uno all'altro. Con subsegmenting regioni dei ventricoli e la designazione di un colore dive…

Discussion

Presentiamo strumenti e protocolli che possono essere utilizzati per valutare l'integrità del sistema ventricolare del cervello in topi e negli esseri umani. Questi strumenti, tuttavia, possono essere applicati anche ad altre strutture cerebrali o sistemi di organi che subiscono variazioni dovute a lesioni, malattie, o durante il processo di invecchiamento 14,21,22. Le strategie presentate approfittare di software che permette l'allineamento di sequenze MRI trasversali e longitudinali per generare ra…

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

An NINDS Grant NS05033 (JCC) supported this work. The University of Connecticut RAC, SURF and OUR programs provided additional support.

Materials

Name of the Materal/Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Phosphate buffered saline (PBS) Life Technologies 21600-069
Paraformaldehyde (PFA) Electron Microscopy Sciences 19210 Use at 4% in PBS, 4 °C
Normal Horse Serum Life Technologies 16050 10% in PBS-TX (v/v)
Normal Goat Serum Life Technologies 16210 10% in PBS-TX (v/v)
Triton X-100 (TX) Sigma-Aldrich T8787 0.1% in PBS (v/v)
Vibratome Leica VT1000S
Fluorescence Microscope Zeiss Imager.M2
Camera Hamamatsu ORCA R2
Microscope Stage Controller Ludl Electronic Products MAC 6000
Stereology software MBF Bioscience Stereo Investigator 11
Stereology software ImageJ/NIH NIH freeware
3D Reconstruction software MBF Bioscience Neurolucida Explorer
Confocal Microscope Leica TCS SP2
MRI Software
Freesurfer https://surfer.nmr.mgh.harvard.edu/fswiki/DownloadAndInstall Segmentation and Volume
ITK-Snap http://www.itksnap.org/pmwiki/pmwiki.php Segmentation and Volume
Multi-image Analysis GUI (Mango) http://ric.uthscsa.edu/mango/ Longitudinal overlay
Whole Mount Equipment
22.5° microsurgical straight stab knife Fisher Scientific NC9854830
parafilm
wax bottom dissecting dish 
pins
fine forceps
aquapolymount
Dissecting Microscope Leica MZ95
Whole Mount Antibodies
mouse anti-b-catenin BD Bioschiences, San Jose, CA, USA 1:250
goat anti-GFAP Santa Cruz Biotechnology 1:250
rabbit anti-AQP4 (aquaporin-4)  Sigma-Aldrich 1:400
Coronal Antibodies
Anti-S100β antibody Sigma-Aldrich 1:500
4’,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) Life Technologies D-1306 10 µg/mL in PBS

参考文献

  1. Del Bigio, M. R. Ependymal cells: biology and pathology. Acta Neuropathol. 119, 55-73 (2010).
  2. Johanson, C., et al. The distributional nexus of choroid plexus to cerebrospinal fluid, ependyma and brain: toxicologic/pathologic phenomena, periventricular destabilization, and lesion spread. Toxicol Pathol. 39, 186-212 (2011).
  3. Roales-Bujan, R., et al. Astrocytes acquire morphological and functional characteristics of ependymal cells following disruption of ependyma in hydrocephalus. Acta Neuropathologica. 124, 531-546 (2012).
  4. Cserr, H. F. Physiology of the choroid plexus. Physiol Rev. 51, 273-311 (1971).
  5. Iliff, J. J., et al. A paravascular pathway facilitates CSF flow through the brain parenchyma and the clearance of interstitial solutes, including amyloid beta. Science Translational Medicine. 4, 147ra111 (2012).
  6. Shook, B. A., et al. Ventriculomegaly associated with ependymal gliosis and declines in barrier integrity in the aging human and mouse brain. Aging Cell. , (2013).
  7. Xie, L., et al. Sleep drives metabolite clearance from the adult brain. Science. 342, 373-377 (2013).
  8. Fazekas, F., et al. Pathologic correlates of incidental MRI white matter signal hyperintensities. Neurology. 43, 1683-1689 (1993).
  9. Meier-Ruge, W., Ulrich, J., Bruhlmann, M., Meier, E. Age-related white matter atrophy in the human brain. Ann N Y Acad Sci. 673, 260-269 (1992).
  10. Resnick, S. M., Pham, D. L., Kraut, M. A., Zonderman, A. B., Davatzikos, C. Longitudinal magnetic resonance imaging studies of older adults: a shrinking brain. The Journal Of Neuroscience : The Official Journal Of The Society For Neuroscience. 23, 3295-3301 (2003).
  11. Sener, R. N. Callosal changes in obstructive hydrocephalus: observations with FLAIR imaging, and diffusion MRI. Comput Med Imaging Graph. 26, 333-337 (2002).
  12. Sze, G., et al. Foci of MRI signal (pseudo lesions) anterior to the frontal horns: histologic correlations of a normal finding. AJR Am J Roentgenol. 147, 331-337 (1986).
  13. Tisell, M., et al. Shunt surgery in patients with hydrocephalus and white matter changes. Journal of Neurosurgery. 114, 1432-1438 (2011).
  14. Valdes Hernandez Mdel, C., et al. Automatic segmentation of brain white matter and white matter lesions in normal aging: comparison of five multispectral techniques. Magn Reson Imaging. 30, 222-229 (2012).
  15. Shook, B. A., Manz, D. H., Peters, J. J., Kang, S., Conover, J. C. Spatiotemporal changes to the subventricular zone stem cell pool through aging. The Journal of Neuroscience : The Official Journal Of The Society For Neuroscience. 32, 6947-6956 (2012).
  16. Mirzadeh, Z., Merkle, F. T., Soriano-Navarro, M., Garcia-Verdugo, J. M., Alvarez-Buylla, A. Neural stem cells confer unique pinwheel architecture to the ventricular surface in neurogenic regions of the adult brain. Cell Stem Cell. 3, 265-278 (2008).
  17. Mirzadeh, Z., Doetsch, F., Sawamoto, K., Wichterle, H., Alvarez-Buylla, A. The subventricular zone en-face: wholemount staining and ependymal flow. J Vis Exp. , (2010).
  18. Luo, J., Daniels, S. B., Lennington, J. B., Notti, R. Q., Conover, J. C. The aging neurogenic subventricular zone. Aging Cell. 5, 139-152 (2006).
  19. Luo, J., Shook, B. A., Daniels, S. B., Conover, J. C. Subventricular zone-mediated ependyma repair in the adult mammalian brain. J Neurosci. 28, 3804-3813 (2008).
  20. Marcus, D. S., Fotenos, A. F., Csernansky, J. G., Morris, J. C., Buckner, R. L. Open access series of imaging studies: longitudinal MRI data in nondemented and demented older adults. J Cogn Neurosci. 22, 2677-2684 (2010).
  21. Giorgio, A., De Stefano, N. Clinical use of brain volumetry. J Magn Reson Imaging. 37, 1-14 (2013).
  22. Caspers, S., et al. Studying variability in human brain aging in a population-based German cohort-rationale and design of 1000BRAINS. Front Aging Neurosci. 6, 149 (2014).
  23. Keuken, M. C., et al. Ultra-high 7T MRI of structural age-related changes of the subthalamic nucleus. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 33, 4896-4900 (2013).
  24. Marti-Bonmati, L., Sopena, R., Bartumeus, P., Sopena, P. Multimodality imaging techniques. Contrast Media Mol Imaging. 5, 180-189 (2010).
  25. Bergmann, O., et al. The age of olfactory bulb neurons in humans. Neuron. 74, 634-639 (2012).
  26. Sanai, N., et al. Corridors of migrating neurons in the human brain and their decline during infancy. Nature. 478, 382-386 (2011).
  27. Wang, C., et al. Identification and characterization of neuroblasts in the subventricular zone and rostral migratory stream of the adult human brain. Cell Res. 21, 1534-1550 (2011).
  28. Carmen Gomez-Roldan, D. e. l., M, , et al. Neuroblast proliferation on the surface of the adult rat striatal wall after focal ependymal loss by intracerebroventricular injection of neuraminidase. The Journal of Comparative Neurology. 507, 1571-1587 (2008).

Play Video

記事を引用
Acabchuk, R. L., Sun, Y., Wolferz, Jr., R., Eastman, M. B., Lennington, J. B., Shook, B. A., Wu, Q., Conover, J. C. 3D Modeling of the Lateral Ventricles and Histological Characterization of Periventricular Tissue in Humans and Mouse. J. Vis. Exp. (99), e52328, doi:10.3791/52328 (2015).

View Video