概要

RNAi-vermittelte Gene Knockdown Doppelzimmer und Gustatorisch Perception Measurement in Honey Bees (<em> Apis mellifera</em>)

Published: July 25, 2013
doi:

概要

In diesem Protokoll beschreiben wir zwei Strategien, die gleichzeitig zwei Gene unterdrücken (doppelte Gen Knockdown) in Honigbienen. Dann präsentieren wir, wie die Rüssel extension response (PER) Test, um die Wirkung der doppelten Gen Knockdown auf Honigbiene geschmacklichen Wahrnehmung studieren verwenden.

Abstract

Dieses Video zeigt neue Techniken der RNA-Interferenz (RNAi), die zwei Gene gleichzeitig herunterreguliert in Honigbienen mit doppelsträngigen RNA (dsRNA) Injektionen. Es stellt auch ein Protokoll der Rüssel extension response (PER) Assay zur Messung geschmacklichen Wahrnehmung.

RNAi-vermittelte Gene Knockdown ist eine effektive Technik Herunterregulieren Ziel Genexpression. Diese Technik ist in der Regel für einzelne Genmanipulation verwendet, aber es hat seine Grenzen Wechselwirkungen und gemeinsame Wirkung von Genen nachzuweisen. Im ersten Teil dieses Video präsentieren wir zwei Strategien gleichzeitig niederzuschlagen zwei Gene (so genannte Doppel-Gen Knockdown). Wir zeigen beide Strategien sind in der Lage, effektiv zu unterdrücken zwei Gene, Vitellogenin (vg) und Ultraspiracle (usp), die in einer regulatorischen Rückkopplungsschleife sind. Diese doppelte Gen Knockdown Ansatz kann verwendet werden, um Zusammenhänge zwischen Genen sezieren und kann leicht in angewendet werdenverschiedene Insektenarten.

Der zweite Teil dieses Videos ist eine Demonstration der Rüssel extension response (PER)-Assay in Honigbienen nach der Behandlung von Doppel-Gen Knockdown. Die PER-Assay ist ein Standard-Test zur Messung geschmackliche Wahrnehmung in Honigbienen, die ein wichtiger Prädiktor für wie schnell eine Honigbiene Verhaltens Reifung ist. Größere Geschmacks Wahrnehmung Nest Bienen zeigt erhöht Verhaltensstörungen Entwicklung, die oft mit einem früheren Alter bei Beginn der Futtersuche und Futtersuche Spezialisierung in Pollen assoziiert ist. Darüber hinaus können pro Test angewendet, um metabolische Zustände der Sättigung oder Hunger in Honigbienen zu identifizieren. Schließlich PER-Assay mit verschiedenen Paarung Geruch Reize für die Konditionierung die Bienen auch weit verbreitet ist für Lernen und Gedächtnis in Studien Honigbienen kombiniert verwendet.

Introduction

RNA-Interferenz (RNAi) RNA ist auf post-transkriptionale Gen-Silencing, das in einer Vielzahl von eukaryotischen Organismen auftritt. Verfahren nach RNAi durch endogene oder exogene doppelsträngige RNA (dsRNA)-Vorstufen ausgelöst. Die dsRNA aktiviert das Protein Ribonuclease Dicer bindet und spaltet die dsRNA zu kleine Fragmente (20-25 bp). Dann werden die kleinen Fragmenten der dsRNA Führung eine Erkennung und Spaltung der komplementären mRNAs durch argonaute Proteine ​​eine katalytische Komponente des RNA-induced silencing complex (RISC) 1. Bei Säugetieren aktivieren dsRNAs länger als 30 nt, eine antivirale Reaktion (Interferon-Antwort, IFN), die unspezifische Abbau von RNA-Transkripte 2 führt. Allerdings haben lange dsRNAs als wirksam erwiesen und spezifische in Insekten, da ein Mangel an diesem IFN 3.

Lange dsRNAs haben Herunterregulation der Zielgene wurde in verschiedenen Insektenarten verwendet. Honigbienen sind eine der pionEER Insekten Organismen, in denen viele wichtige Funktionen der Gene in der Entwicklung und das Verhalten haben mit dsRNA 4,5 offenbart worden. Mehrere dsRNA Versandmethoden haben in Honigbienen durchgeführt: dsRNA Fütterung effizient herunterreguliert Ziel Genexpression in Honigbienenlarven 6, während dsRNA Injektion ist ein wirksamer Ansatz für die Gen-Knockdown in Honigbiene Embryonen 4 und erwachsenen Bienen 7,8.

Gene Knockdown durch das Aufbringen von dsRNA Insekten ausgestellt sind vorübergehend und lokalisiert. Studien haben gezeigt, dass beide Bauch dsRNA Injektionen und Brust-dsRNA Injektionen wirksam unterdrücken Ziel Genexpression in Bauchfett Körperzellen von Insekten 9,10. DsRNA in Bauch-und Brusthöhle und fetten Körper Zellen injiziert sind in der Lage, sich der dsRNA aus der Hämolymphe, wo die Zellen 10 gebadet werden. Allerdings können Gene in anderen Organen, wie Eierstöcke und Gehirn, nicht entweder gezieltBauch-oder Brust-Injektionen. Um Gene in Honigbiene Gehirn zielen, hat Gehirn Injektion von dsRNA auch durchgeführt worden, die effektiv beeinflusst Zielgenexpression in lokalen Hirnareale 11. Hier haben wir nur dokumentieren Bauch dsRNA Injektion, die häufiger verwendet wird, ist bei erwachsenen Bienen.

RNAi wurde in erster Linie verwendet, um ein einzelnes Gen gezielt und ist ein leistungsfähiges Werkzeug, um die Genfunktion zu offenbaren. Allerdings ist jedes Gen nicht isoliert von den anderen, es ist in komplexen regulatorischen Netzwerke. Ein Schlüssel für einen biologischen Prozess zu verstehen ist, sezieren, wie Gene miteinander, die eine gleichzeitige Manipulationen von mehreren Genen, anstatt ein einzelnes Gen Knockdown erfordert interagieren. In Säugerzellen, haben Wissenschaftler in gleichzeitig hemmen zwei oder drei Gene mithilfe Delivery-Systeme 12 oder multi-microRNA (miRNA) Haarnadel Designs 13 gelungen. Aber in Insekten, sind mehrere Gen Niederschlägen noch ungetestet. Hier presen wirt verschiedene Injektions-Strategien, die eine doppelte Gen Knockdown erreichen können. Wir haben das Ziel zwei Gene: vitellogenin (VG), die eine Vorläufer-Protein kodiert, Eigelb und Ultraspiracle (USP), die eine putative Rezeptor für Juvenilhormon (JH) codiert und als ein Transkriptionsfaktor Vermittlung antwortet JH 14 in Honigbienen dienen. Vg und JH regulieren sich gegenseitig in einer Rückkopplungsschleife 15 und sind in Honigbiene Verhaltensregulation 9 beteiligt. Mit dem Doppel-Gen Knockdown, entdecken wir stören sowohl Vg und JH Wege, und wie sie gemeinsam beeinflussen Honigbiene Verhalten und Physiologie und wie vg, usp und JH interagieren 9.

Gustatorisch Wahrnehmung ist ein Verhaltens-Prädiktor für die Honigbiene Sozialverhalten 16. In Bezug auf die Entwicklung des Verhaltens, nest Bienen mit hohen geschmacklichen Wahrnehmung behaviorally reifen schnell, und in der Regel Futter früh im Leben und es vorziehen, Pollen sammeln 16,17. Obwohl regulatorische mechanisms zugrunde geschmacklichen Wahrnehmung sind noch unklar, Studien haben gezeigt, dass geschmackliche Wahrnehmung der internen Energiestoffwechsel 9, Hormonausschüttung 18,19 und biogenetische Amin Signalwege 20 verbunden ist. Sowohl Vg und JH sind wichtige hormonellen Regulatoren modulierenden geschmacklichen Wahrnehmung 7,21. Im Labor kann eine Variation der geschmacklichen Wahrnehmung in Honigbienen durch die Prüfung der Rüssel extension response (PER) zu verschiedenen Saccharoselösungen ausgewertet werden. Jede Biene durch Berühren sowohl ihre Antennen mit Wassertröpfchen durch einen aufsteigenden Konzentrationsreihe von 0,1, 0,3, 1, 3, 10, 30% Saccharose gefolgt getestet. Eine positive Antwort wird darauf hingewiesen, wenn eine Biene voll streckt ihre Rüssel, wenn ein Tröpfchen von Wasser oder Saccharose zu jeder Antenne berührt wird. Basierend auf der Anzahl der positiven Reaktionen auf der Lösungen kann die geschmackliche Wahrnehmung Ebene der einzelnen 16 bestimmt werden. Jedoch ist die Anwendung der PER nicht auf die Messung begrenzt gustatory Wahrnehmung. Die PRO ist auch eine wirksame Methode, um den metabolischen Zustand der Bienen wie Sättigung gegen Hunger testen. Die Bienen mit mehr Antworten auf Saccharose sind hungriger im Allgemeinen (Wang und Amdam, unveröffentlichte Daten). Darüber hinaus kann die PER Paradigma auch in assoziativen Lernen und Gedächtnis in Honigbienen verwendet werden. In diesem Fall Bienen ausgebildet, um die Gegenwart von Saccharose Wasser mit einem Duft zu assoziieren werden. Wenn die Bienen den Verein zu erfahren, können nur die Anwesenheit des Geruchs eine positive Antwort ohne Rüssel belohnte sie mit dem Saccharose 22,23 evozieren. In diesem Video zeigen wir, wie Sie ausführen PER gustatory Wahrnehmung, die mit vg und usp Doppel Knockdown in einer früheren Studie 9 angeschlossen wurde evaluieren.

Protocol

Teil 1: RNAi-vermittelte doppelte Gen Knockdown 1. dsRNA Synthese Design-Primer dsRNAs Targeting vg, usp und ein Kontroll-Gen kodiert grün fluoreszierendes Protein (GFP), die nicht in der Honigbiene Genom: Primer wurden mit Online-freie Software Primer3 ( http://frodo.wi.mit.edu/ ) . dsRNA-Synthese für vg, usp und GFP: Verwendung RiboMax T7-RNA-Produktion-System von Promega für <em…

Representative Results

Sowohl die Single-Einspritzung und zwei Tage Injektion Strategien deutlich vg (One-way ANOVA, p <0,001) (Abbildung 2A) und USP (One-way ANOVA, p <0,001) (Abbildung 2B) reduziert Transkripte in Honigbienen Sechs Tage nach der dsRNA injiziert. Die Unterdrückung der usp Transkript mit dem einzigen Injektion mit dsRNA Mischung und die zweitägige Injektion mit vg ersten und zweiten usp (vg / usp) war signifikant niedriger als der …

Discussion

Unsere Studie ist der erste Versuch, gleichzeitig niederzuschlagen zwei Gene in erwachsenen Insekten. Unsere Ergebnisse zeigen, dass die beiden Strategien der dsRNA Injektionen (einzelne Injektion und zweitägigen Injektion) für die doppelte effektive Genunterdrückung und gleichzeitig Gen-Silencing von vg und usp sind, können 6 Tage nach der dsRNA Injektionen in Bienen 8,9 getestet werden. Allerdings variiert Gen Knockdown Wirksamkeit in verschiedenen Insektenarten abhängig Transkript Ni…

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Die Autoren bedanken sich für die Unterstützung Erin Fennern Experiment danken. Diese Arbeit wurde von der Research Council of Norway (180504, 185306 und 191699), Pew Charitable Trust und dem National Institute on Aging (NIA P01 AG22500) finanziert.

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number コメント
GE Healthcare PCR beads in 96 well plate GE Healthcare 27-9557-01
QIAquick PCR purification kit Qiagen 28104
RiboMax T7 RNA production system Promega P1300
Trizol LS Invitrogen 10296028
Chloroform:Isoamyl alcohol 24:1 Sigma-Aldrich C0549
isopropyl alcohol Sigma-Aldrich I9516
Hamilton micro syringe Hamilton 80301
30G BD disposable needles BD Biosciences 305106
Sucrose Sigma-Aldrich 84097
1 ml Syringe BD Biosciences 30960
Stereo dissection microscope Leica Microsystems S6D
Insect pins Fine Science Tools 26000-25
Wax plate

参考文献

  1. Okamura, K., Ishizuka, A., Siomi, H., Siomi, M. C. Distinct roles for Argonaute proteins in small RNA-directed RNA cleavage pathways. Genes Dev. 18, 1655-1666 (2004).
  2. Shi, Y. Mammalian RNAi for the masses. Trends Genet. 19, 9-12 (2003).
  3. Huvenne, H., Smagghe, G. Mechanisms of dsRNA uptake in insects and potential of RNAi for pest control: a review. J. Insect Physiol. 56, 227-235 (2010).
  4. Beye, M., Hartel, S., Hagen, A., Hasselmann, M., Omholt, S. W. Specific developmental gene silencing in the honey bee using a homeobox motif. Insect Mol. Biol. 11, 527-532 (2002).
  5. Amdam, G. V., Simoes, Z. L., Guidugli, K. R., Norberg, K., Omholt, S. W. Disruption of vitellogenin gene function in adult honeybees by intra-abdominal injection of double-stranded RNA. BMC Biotechnol. 3, 1 (2003).
  6. Patel, A. The making of a queen: TOR pathway governs diphenic caste development. PLoS ONE. 6, e509 (2007).
  7. Amdam, G. V., Norberg, K., Page, R. E., Erber, J., Scheiner, R. Downregulation of vitellogenin gene activity increases the gustatory responsiveness of honey bee workers (Apis mellifera). Behav. Brain Res. 169, 201-205 (2006).
  8. Wang, Y., et al. Down-regulation of honey bee IRS gene biases behavior toward food rich in protein. PLoS Genet. 6, e1000896 (2010).
  9. Wang, Y., Brent, C. S., Fennern, E., Amdam, G. V. Gustatory perception and fat body energy metabolism are jointly affected by vitellogenin and juvenile hormone in honey bees. PLoS Genet. 8, e1002779 (2012).
  10. Luna, B. M., Juhn, J., James, A. A. Injection of dsRNA into Female A. aegypti Mosquitos. J. Vis. Exp. (5), e215 (2007).
  11. Mussig, L., et al. Acute disruption of the NMDA receptor subunit NR1 in the honeybee brain selectively impairs memory formation. J. Neurosci. 30, 7817-7825 (2010).
  12. Stove, V., Smits, K., Naessens, E., Plum, J., Verhasselt, B. Multiple gene knock-down by a single lentiviral vector expressing an array of short hairpin RNAs. Electron J. Biotechnol. 19, 13 (2006).
  13. Sun, D., Melegari, M., Sridhar, S., Rogler, C. E., Zhu, L. Multi-miRNA hairpin method that improves gene knockdown efficiency and provides linked multi-gene knockdown. Biotech. 41, 59-63 (2006).
  14. Ament, S. A., et al. The transcription factor ultraspiracle influences honey bee social behavior and behavior-related gene expression. PLoS Genet. 8, e1002596 (2012).
  15. Amdam, G. V., Omholt, S. W. The hive bee to forager transition in honeybee colonies: the double repressor hypothesis. J. Theor. Biol. 223, 451-464 (2003).
  16. Pankiw, T., Page, R. E. Response thresholds to sucrose predict foraging division of labor in honeybees. Behav. Ecol. Sociobiol. 47, 265-267 (2000).
  17. Pankiw, T., Nelson, M., Page, R. E., Fondrk, M. K. The communal crop: modulation of sucrose response thresholds of pre-foraging honey bees with incoming nectar quality. Behav. Ecol. Sociobiol. 55, 286-292 (2004).
  18. Jaycox, E. R. Behavioral Changes in Worker Honey Bees (Apis mellifera L.) after Injection with Synthetic Juvenile Hormone (Hymenoptera: Apidae). J. Kan. Entomol. Soc. 49, 165-170 (1976).
  19. Jaycox, E. R., Skowronek, W., Guynn, G. Behavioral changes in worker honey bees (Apis mellifera) induced by injections of a juvenile hormone mimic. Ann. Entomol. Soc. Am. 67, 529-534 (1974).
  20. Scheiner, R., Pluckhahn, S., Oney, B., Blenau, W., Erber, J. Behavioural pharmacology of octopamine, tyramine and dopamine in honey bees. Behav. Brain Res. 136, 545-553 (2002).
  21. Robinson, G. E. Effects of a juvenile hormone analogue on honey bee foraging behaviour and alarm pheromone production. J. Insect. Physiol. , 277-282 (1985).
  22. Giurfa, M., Malun, D. Associative mechanosensory conditioning of the proboscis extension reflex in honeybees. Lear Memory. 11, 294-302 (2004).
  23. Scheiner, R., Page, R. E., Erber, J. The effects of genotype, foraging role, and sucrose responsiveness on the tactile learning performance of honey bees (Apis mellifera L.). Neurobiol. Learn Mem. 76, 138-150 (2001).
  24. Wang, Y., et al. PDK1 and HR46 gene homologs tie social behavior to ovary signals. PLoS ONE. 4, e4899 (2009).
  25. Wang, Y., et al. Regulation of behaviorally associated gene networks in worker honey bee ovaries. J. Exp. Biology. 215, 124-134 (2012).
  26. Amdam, G. V., Csondes, A., Fondrk, M. K., Page, R. E. Complex social behaviour derived from maternal reproductive traits. Nature. 439, 76-78 (2006).
  27. Amdam, G. V., Ihle, K. E., Page, R. E., Pfaff, D., et al. . Hormones, Brain and Behavio. , (2009).
  28. Guidugli, K. R., et al. Vitellogenin regulates hormonal dynamics in the worker caste of a eusocial insect. FEBS Letters. 579, 4961-4965 (2005).
  29. Corona, M. juvenile hormone, insulin signaling, and queen honey bee longevity. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 104, 7128-7133 (2007).
  30. Sinha, S., Ling, X., Whitfield, C. W., Zhai, C., Robinson, G. E. Genome scan for cis-regulatory DNA motifs associated with social behavior in honey bees. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 103, 16352-16357 (2006).
  31. Amdam, G. V., et al. Hormonal control of the yolk precursor vitellogenin regulates immune function and longevity in honeybees. Exp. Gerontol. 39, 767-773 (2004).
  32. Wang, Q. C., Nie, Q. H., Feng, Z. H. RNA interference: antiviral weapon and beyond. World J. Gastroenterol. 9, 1657-1661 (2003).
  33. Carmell, M. A., Xuan, Z., Zhang, M. Q., Hannon, G. J. The Argonaute family: tentacles that reach into RNAi, developmental control, stem cell maintenance, and tumorigenesis. Genes Dev. 16, 2733-2742 (2002).
  34. Hunt, G. J. Behavioral genomics of honeybee foraging and nest defense. Naturwissenschaften. 94, 247-267 (2007).
  35. Pankiw, T., Waddington, K. D., Page, R. E. Modulation of sucrose response thresholds in honey bees (Apis mellifera L.): influence of genotype, feeding, and foraging experience. J. Comp. Physiol. A. 187, 293-301 (2001).
  36. Pankiw, T., Page, R. E. Effect of pheromones, hormones, and handling on sucrose response thresholds of honey bees (Apis mellifera L.). J. Comp. Physiol. A. Neuroethol. Sens. Neural. Behav. Physiol. 189, 675-684 (2003).

Play Video

記事を引用
Wang, Y., Baker, N., Amdam, G. V. RNAi-mediated Double Gene Knockdown and Gustatory Perception Measurement in Honey Bees (Apis mellifera). J. Vis. Exp. (77), e50446, doi:10.3791/50446 (2013).

View Video