여기에서 우리는 electrogenic 막 수송의 특성에 대한 응용 프로그램에 초점을 맞춘 견고한 지원 세포막에 따라 전기 생리학 방법을 제시한다.
우리가 존재하는 전기 생리학 방법은 금 코팅 된 센서 칩 위에 포스파티딜콜린 단일 층에 화학적으로 흡착 octadecanethiol 층으로 구성된 고체 지원 막 (SSM)을 기반으로합니다. 이 어셈블리는 기준 전극, 염소화 실버 와이어를 포함하는 큐벳 시스템으로 마운트됩니다.
막 조각 또는 관심의 막 단백질을 포함 proteoliposomes의 흡착 후 빠른 솔루션 교환은 막 단백질의 수송 활동을 유도하는 데 사용됩니다. 단일 솔루션 교환 프로토콜 두 가지 솔루션을 하나의 비 활성화 한 활성화 솔루션이 필요합니다. 흐름은 패러데이 케이지 내에서 가압 공기 밸브와 배관 시스템에 의해 제어됩니다.
electrogenic 수송 활동의 속도론은 SSM과 proteoliposomes 또는 막 조각 사이의 용량 성 커플 링을 통해 얻을 수있다. 방법은, 그러므로, 오직 transien에게 얻을 수T 전류. 피크 전류는 고정 된 전송 작업을 나타냅니다. 시간에 따라 수송 전류는 회로 분석에 의해 재구성 할 수 있습니다.
이 방법은 특히 패치 클램프 또는 전압 클램프 방법으로 조사 할 수없는 세포 막에서 원핵 운송 또는 진핵 수송에 적합합니다.
여기에서 우리는 electrogenic 막 단백질의 특성에 대한 확고한 지원 막 (SSM)에 따라 새로운 전기 생리학 방법을 보여줍니다.
고체 지지체는 유리 슬라이드, 센서 칩에 얇은 금 층으로 구성되어 있습니다. 친수성 금 표면 alcanethiol 시약의 티올 그룹을 바인딩하는 데 사용됩니다. 그 후, selfassembly 포스파티딜콜린의 monolyer의는 SSM의 형성이 완료됩니다.
막 단백질의 electrogenic 반응을 측정하기 proteoliposomes 또는 막 조각은 SSM (그림 1)에 흡착된다. 막과 SSM을 포함하는 단백질은 그 용량 성 결합 멤브레인 시스템을 형성한다. 따라서 단백질을 포함하는 막에 충전 전위는 SSM을 통해 용량 성 결합에 의해 감지 할 수 있습니다. 이 방법은 일시적으로 만 전류를 얻을 수 있습니다. 피크 전류는 고정 된 전송 작업을 나타냅니다. 시간에 따라 수송 잘라 내기rrents은 회로 분석에 의해 재구성 할 수 있습니다.
센서 칩은 큐벳 시스템 (그림 2)에 장착된다. 큐벳은 17 μL의 원통형 큐벳 볼륨이 (O-링과 그물 볼륨 마운트). 스프링 접촉 핀은 앰프 연락처를 만듭니다. 콘센트 커넥터는 주요 부분의 상단에 나사와 기준 전극, 염소화 실버 와이어를 전달합니다.
큐벳은 패러데이 케이지에 장착되어 있습니다. 그것은 빠른 솔루션 교환 (그림 3)에 대한 응답으로 막 단백질의 수송 활동을 유도하는 데 사용되는 유체 통로로 연결되어 있습니다. 단일 솔루션 교환 프로토콜 두 가지 솔루션을 하나의 비 활성화 한 활성화 솔루션이 필요합니다. 흐름은 인터페이스 박스에있는 컴퓨터 또는 수동 스위치를 밸브 제어 소프트웨어를 사용하여 압축 공기에 의해 제어됩니다.
1. SSM 기반의 전기 생리학의 장점은 기존의 방법에 비해
SSM 기반의 전기 생리학은 전기 생리학 도구 상자의 유용한 도구로 자신을 증명하고있다. 그것은 규칙 전기 생리학, 즉 패치 클램프 및 전압 클램프 방법을 적용 할 수없는 경우에 특히 유용 외에도 몇 가지 드문 예외에서 세균 수송 때문에 박테리아의 작은 크기와 때문에 전압 클램프 또는 패치 클램프 방법을 사용하여 조사 할 수 없습니다 그들은 포유 동물 세포 나 난자에서 표현하기가 어렵습니다. 또한 생리학 관련 포유 동물 운송을 조사 할 수 있습니다. 이 경우 SSM 기반의 전기 생리학은 세포 세포막과 때문에 견고성 및 자동화에 대한 가능성의 약물 발견의 심사 응용 프로그램에 대한 운송을위한 매력적이다.
투명의 SSM-basedUsing 기존의 전기 생리학, 시간이 해결 특성orters가 도전합니다. 운송업자의 매출액은 낮기 때문에 '거대한 패치'또는 '전체 세포의 구성이 필요합니다, 솔루션 교환 실험에서 본질적으로 낮은 시간 해상도를 가지고있는. 합병증은 광분해 기판 릴리스를 사용하여 극복 할 수있다. 그러나 기판의 제한된 숫자는이 방법에 적합합니다. 여기에 SSM에서 빠른 솔루션 교환은 임의의 기판을 사용하여 높은 시간 해상도로 전기 생리학 연구를 수행 할 수있는 독특한 기회를 제공합니다.
2. 제한 사항 및 중요한 단계
패치 클램프 및 전압 클램프 기법과는 대조적으로, SSM 기반의 전기 생리학은 전위를 적용 할 수 없습니다. 수송 특성 따라서 막 잠재력에 의존하지 않는 모드를 수송하기 위하여 제한됩니다.
일반적으로, SSM 기반의 전기 생리학이 (electrogenic) 수송의 유형에 관한 아무런 제한이 없습니다. 그러나 전압 CL에게결합 단백질과 같은 세포 구성 요소는 단백질의 기능에 필요한 경우 앰프 나 패치 클램프 방법은 장점을 가지고 있습니다.
솔루션 교환이 큰 이슈 전류를 만드는 경우 제한이 발생할 수 있습니다. 기판 친 유성 화합물의 경우처럼 SSM과 강하게 상호 작용할 때 발생합니다. 아티팩트 컨트롤은 측정 된 신호를 수정하는 데 사용할 수 있습니다. 모든 측정 버퍼에서 더욱 높은 소금 배경 아티팩트를 줄일 수 있습니다. 그러나 경우에, 유물의 크기가 단백질 신호에 비교이고, 그 유물의 단백질 관련 신호를 분리하는 것은 거의 불가능하다. 다행히도, 높은 유물 최적화 된 솔루션 교환 예외적이다.
SSM 기반의 전기 생리학 실험의 성공적인 실현을위한 중요한 몇 가지 단계가 있습니다. 단백질 샘플의 준비는 가장 중요한 부분입니다. proteoliposomes를 사용하는 경우, 반드시 정찰titution 프로세스는 충분한 LPR의 깨끗하고 재생 가능한 샘플을 산출하고 수송이 올바른 방법으로 지향이다. 항체가 가능한 경우 LPR은 ELISA 실험에 의해 동결 골절 전자 현미경과 방향을 확인할 수 있습니다.
만 단백질 샘플을 배양 최적의 매개 변수를 보여줍니다 SSM을 사용합니다. 단백질의 주입은 또 다른 중요한 단계입니다. 초음파가 필수적이며, 기포 주입하는 동안 피해야한다. 기포 센서 칩에서 흡착 된 단백질 샘플을 제거하기 때문에 샘플 배양 한 후 측정 자체가 중요하다. 따라서 항상 솔루션을 변경 한 후 기포를 제거합니다. 그럼에도 불구하고 신호 런이 발생할 수 있습니다. 가능한 신호 런 문제를 해결하기 위해, 실험 기간 동안 런 컨트롤을 수행하는 것이 필수적입니다.
3. 특수 시스템
SSM-설정은 그 용도에 따라 변경 될 수 있습니다. 또한 t여기 완전히 다른, 고도로 전문화 된 설정입니다.
산도 기울기에 따라 예를 들어 비대칭 조건에서 단백질의 신호를 측정 할 수있는 가능성이 있습니다. 세 번째 해결책 내부와 proteoliposomes 외부 비대칭 버퍼 구성을 설정하려면, 휴식 솔루션 도입되어야하며이 두 Exchange 구성이 필요합니다. 여기에 비 활성화 및 휴식 솔루션 사이를 전환 추가로 세 방향 밸브가 필요합니다.
우리는 터미널 밸브를 부족하지만, 큐벳의 다른 유형을 사용하여 다른 흐름 경로를 개발 시스템의 시간 해상도를 증가시킵니다. 여기 활성화 및 비 활성화 솔루션의 접합 SSM 앞에 3mm, 큐벳 내부에 있습니다. 이 설정은 물론 빠른 전송 프로세스의 운동 분석에 적합합니다. 그것은 2 밀리 정도의 낮은 시간 해상도가 가능하다는 것을 보여 할 수 있습니다.
상업 Fully 자동화 시스템은 약물 검사에 대한 훨씬 더 높은 처리량을 목표로 사용할 수 있습니다. 이동식 장치 솔루션을 수집하고 표준의 microtiter 플레이트 형식의 96 – 웰 플레이트에서 센서 표면에 그들을 삽입합니다.
The authors have nothing to disclose.
우리는 지원과 도움이 토론의 레이스 측정 및 E. 밤베르크에 공헌 J. 가르시아 CELMA, I 미르 노바와 R. Kaback 감사합니다.
Materials | |||
Waterbath Sonicator | Bandelin | RK 52 H | |
Tip Sonicator | Hielscher Ultrasonics GmbH | UP50H | |
2-way valve | NResearch, West Caldwell, USA | NR225T011 | |
Terminal valve | NResearch, West Caldwell, USA | NR225T031 | |
Manometer | Greisinger electronics | GDH 14 AN | |
Faraday cage | Max Planck Institute of Biophysics | ||
Cuvette | Max Planck Institute of Biophysics | ||
100 ml solution containers | Kartell | 1623 | |
O-rings | Seal Science Inc. | ||
Oscilloscope | Tektronix | TDS 1002 | |
Reference electrode | Max Planck Institute of Biophysics | ||
Function generator | Max Planck Institute of Biophysics | ||
Tubings | SAINT-GOBAIN Performance Plastics | AAC00006 | |
Sensor chip | Fraunhofer Institut für Schicht und Oberflächentechnik | ||
Interface box | Max Planck Institute of Biophysics | ||
Amplifier | Keithley | 427 | |
Manual cog | Vygon GmbH | 876 | |
USB analog-to-digital converter | National Instruments | 6009 | |
Regeants | |||
1,2‑Diphytanoyl-sn-glycero-3-Phosphatidylcholine | Avanti Polar Lipids, Inc. | 850356 | |
Acrylamide/Bis-acrylamide | Sigma Aldrich | A3574 | |
Ammonium persulfate | Sigma Aldrich | A3678 | |
D-(+)-Glucose | Sigma Aldrich | G8270 | |
Dithiothreitol | Sigma Aldrich | 43819 | |
Ethanol absolut | VWR AnalaR NORMAPUR | 603-002-00-5 | |
Natural E. coli lipids polar extract | Avanti Polar Lipids, Inc. | 100600 | for LacY reconstitution |
n-Decane | Sigma Aldrich | D901 | |
Octadecanethiol | Sigma Aldrich | O1858 | |
Octadecylamine | Sigma Aldrich | 74750 | |
Potassium chloride | Merck | 1049360500 | |
Potassium phosphate dibasic | Sigma Aldrich | P3786 | |
Potassium phosphate monobasic | Sigma Aldrich | P9791 | |
Tetramethylethylenediamine | BIO RAD | 1610801 | |
α-Lactose monohydrate | Sigma Aldrich | L8783 |