Elettroporazione di Mesenchima craniofacciale

Parte 1A. Attrezzatura Microscopio: verticale portata stereo-dissezione con obiettivo a basso Tensione / generatore di impulsi: BTX ECM 830 Piazza del sistema Elettroporazione Onda Pipette puller: P-87 Micropipetta Puller (Instrument Company Sutter, CA) Manipolatore: grossolani, o combinata grossa e fine a seconda preparazione. Micropipetta titolare: Strumenti Scienza fine Elettrodo: fatto in casa Elettroporazione camera: fatto in casa L a forma di elettrodi: Tagliare 8 cm di elevata purezza filo di tungsteno 0,4 mm (Goodfellow) e apporre a metà di una siringa da 1 ml con stucco (usiamo Blu-Tack). Lasciare 4 fili di tungsteno centimetri esposti dalla punta della siringa e la punta piegare in forma di L, 1 cm dalla fine (Fig. 1A). Trim punta in modo che alla fine le misure 0,5 millimetri di lunghezza. Tla sua punta è il capolinea degli elettrodi. Esegui eccesso parallelo filo di tungsteno di siringa e utilizzarlo per collegare il generatore di impulsi elettrodi. Ripetere il processo di fare una coppia di elettrodi. Collegare gli elettrodi al generatore di impulsi quadrati onda via cavo DC. Camera di elettroporazione Bottom line di 90 mm con piatto ~ 5 mm non tossica plastilina. Riempire piatto con i media elettroporazione. Utilizzando n. 5 orologeria forcipe ritagliarsi una forma di T e (Fig. 2). Il pozzo lungo deve misurare ~ 2 mm x 2 mm x 10 mm e la breve ~ 2 mm x 2 mm x 5 mm. Il piatto elettroporazione può essere lavato e riutilizzato. Parte 1B. Reagenti DNA o macromolecole paga Micropipette: 1 mm di larghezza 4 "lungo capillari di vetro borosilicato (WPI, TW100-F) Cultura dei media: Normale Amphibian Media (NAM) > 10 X magazzino: 1100 mM NaCl, 20mM KCL, 10 mM Ca (NO 3) 2 • 4H 2 O, 1 mM EDTA. Autoclave e conservare a 4 ° C. 1 X NAM: diluire da 10x magazzino, buffer con 0,1 mM NaHCO 3 e 0,2 mM Na 3 PO 4. Xenopus laevis girini, tappa 28 DNA preparazione: Preparare plasmidi di espressione utilizzando protocolli standard. Risospendere il DNA ad una concentrazione finale di 1 mg / mL nel priva di nucleasi H 2 0. * Abbiamo avuto successo con i vettori che contiene un promotore forte CMV, come pCS2 + [16]. Per l'analisi lignaggio, di solito includono DNA che codifica una proteina fluorescente verde (GFP + pCS2) ad una concentrazione finale di 0,1 mg / mL. Concentrazioni di DNA [tra 0,1-3 mg / mL sono stati testati. Abbiamo trovato che le concentrazioni di sotto di 0.8 mg / mL cellule inefficiente etichettati, mentre le concentrazioni di DNA superiore a 2 mg / m &u, l non ha migliorato l'efficienza elettroporazione]. Morfolino preparazione oligonucleotidi: (Nota:. MOS devono essere fluoresceinated (3'-carboxyfluorescein modificati) o altrimenti a pagamento) Risospendere oligonucleotidi morfolino (MOS) (Genetools, www.genetools.com ) ad una concentrazione di 2 mm priva di nucleasi H 2 0. Aliquota di calore di soluzione a 65 ° C per 5 minuti. Diluire a concentrazione finale di 0,5 mM in acqua priva di nucleasi. * 0.1-1mm MO soluzioni sono state testate. 0.5 mM soluzioni MO erano sufficienti per l'elettroporazione di molte cellule mesenchimali. Micropipette Preparare micropipette da capillari di vetro borosilicato (1 mm di larghezza, 4 "a lungo, WPI no. TW100-F). Estrattore Utilizzare l'ago per preparare micropipette con un cono 8-12 mm di lunghezza e punta fine. Crush punta ~ 2 mmdalla punta con pinze, creando una rottura frastagliato. Media Mezzi di incubazione: Preparare fresco 3 / 4 Normale Anfibio Media (NAM) da 1x magazzino. Aggiungi 0,025 mg / ml di gentamicina. Mezzi di elettroporazione: come sopra, con il 0,1% Benzocaina (Sigma, 06950). 2. Elettroporazione Micropipetta di setup Riempire con micropipetta ~ 1 soluzione iniettabile microlitri. Sicuro micropipetta in micromanipolatore e allegare alla microinjector (Picospritzer II). Micropipetta angolo a 50 ° dal piano del tavolo. Impostare la pressione di iniezione a 20 PSI. Calibrare micropipetta per iniettare 30 nl per impulso. Girino preparazione Anestetizzare tappa 28 larve di Xenopus incubando elettroporazione in media per 5 minuti. Trasferimento girino anestetizzato nella camera di elettroporazione riempito con i media elettroporazione. Posizione embrioneall'interno del lungo e in modo che la testa resti in incrocio a T con lato dorsale verso il basso e lato ventrale esposti. La testa deve essere leggermente elevata rispetto alla coda. Utilizzando pinze, dolcemente sicuro girino bene con circostante plastilina. (Nota:.. Se il girino non è protetto, essa può contrarsi e di contatto degli elettrodi durante elettroporazione In questo caso scartare il girino come tessuti facciali sarà gravemente danneggiato) Elettroporazione Inserire il puntale micropipetta immediatamente posteriore alla ghiandola cemento e in mesenchima del viso. Iniettare 30 soluzione nl in mesenchima. Ritrarre micropipetta. Allineare rapidamente punte degli elettrodi in parallelo alla testa di un embrione (Fig. 3). Applicare 8 50 ms, impulsi 20mV quadrati. Ritrarre elettrodi. Utilizzando pinze attentamente rilascio da girino bene e il trasferimento a 3 / 4 NAM, 0,025 mg / ml di gentamicina. Girini possono essere incubate in 3 / 4 NAM, 0,025 mg / ml overnight, o più. Embrioni schermo per l'elettroporazione efficiente mediante microscopia a fluorescenza, dopo 24 ore. 3. Rappresentante dei risultati: L'uso di molecole fluorescenti permette lo screening degli embrioni elettroporate facile. La Figura 4 mostra una partita tipica di MO elettroporate girini ~ 12, 48 e 96 ore dopo l'elettroporazione, incubate a 14,5 ° C. Usando la microscopia a fluorescenza, MOS possono essere visualizzati immediatamente dopo l'elettroporazione e persistono per diversi giorni dopo l'elettroporazione. Nella nostra esperienza, la fluorescenza è debolmente evidente allo stadio 46 (~ 5 giorni dopo). Nel cartilagini, fluorescenza diminuisce drasticamente dopo l'inizio della differenziazione (~ ° 42), tuttavia, MO fluorescenza persiste più forte in altri tipi di cellule come l'endoderma faringeo. Microscopia a fluorescenza mostra che oligonucleotidi sono incorporati in vari tessuti tra cui la cartilagine cranio-facciale. Oligonucleotide fluorescenza cuno spesso essere visualizzati in tessuto su entrambi i lati della testa. Ciò è probabilmente dovuto alla rapida diffusione della soluzione iniettabile di tutto il mesenchima craniofacciale sciolto prima di elettroporazione. Figura 1 elettrodi fatti in casa. L a forma di filo di tungsteno è attaccato ad una siringa da 1 ml con atossici argilla o mastice. (A) Il capolinea elettrodo misure di 5 mm. (B) Allegare una coppia di elettrodi, in modo che i termini corrono parallele. Gli elettrodi sono collegati al generatore di impulsi da cavi DC. Figura 2 camera di elettroporazione. (A) 90 millimetri piatto rivestito con la plastilina è pieno di media e una T-camera a forma scolpita con una pinza n. 5 orologeria. (B) Il lato lungo misura 2 mm x 2 mm X10 millimetromentre le misure a breve 2 mm x 2 mm x 5 mm. La testa dell'embrione riposa nella incrocio a T, lato ventrale in su. Figura 3 procedura di elettroporazione schematica illustrazione. St. 28 girino viene posto in camera di elettroporazione, lato ventrale in su. Micropipetta viene inserito in viso ghiandola cemento mesenchima sottostante. Iniettare. Micropipetta viene rimossa e a forma di L elettrodi sono allineati parallelamente ai lati della testa. Applicare otto 50 ms, 20 mV impulsi quadrati. Ritrarre elettrodi. Girini crescono a fasi desiderato. Visualizzate MOS o espressione GFP usando la microscopia a fluorescenza. Figura 4 girini Rappresentante 12 (A), 48 (B) e 96 (C) ore dopo l'elettroporazione (tappe 30, 34 e 44 rispettivamente). (A "B") fluorescente MO possono essere visualizzati all'interno di mesenchima craniofacciale al cervoES 30 e 34. Fluorescenza possono essere rilevati in fase di cartilagini a 44 (punta di freccia, C 'C "). L'intestino è altamente autofluorescenti.