Этот протокол описывает метод изображения флуоресцентного Т-клетки вводятся в лимфатические узлы ломтиками. Техника позволяет в режиме реального времени анализ миграции Т-клеток с традиционными широкопольных флуоресценции или конфокальной микроскопии.
Наивные Т-клетки непрерывно трафик на вторичных лимфоидных органах, в том числе периферических лимфатических узлов, для выявления редких выразил антигенов. Миграцию Т-клеток в лимфатические узлы является сложным процессом, который включает как сотовая и химических факторов, включая хемокинов. В последнее время использование двух-фотонной микроскопии позволило отслеживать Т-клеток в интактных лимфатических узлов и получить некоторые количественные данные об их поведении и их взаимодействие с другими клетками. Хотя Есть очевидные преимущества в системе естественных условиях, этот подход требует сложных и дорогостоящих приборов и обеспечивает ограниченный доступ к ткани. Для анализа поведения Т-клеток в мышиный лимфатических узлов, мы разработали срез анализа 1, первоначально созданная нейробиологов и транспонированной недавно мышиного тимуса 2. В этой технике, флуоресцентно меченных Т-клетки высевают на вершине остро подготовлена часть лимфатических узлов. В этом видео-статьи, локализации и миграции Т-клеток в ткани, анализируются в режиме реального времени с широкопольных и конфокальной микроскопии. Техника, которая дополняет в естественных условиях двухфотонного микроскопии предлагает эффективный подход к изображению Т-клеток в их естественной среде и выяснить механизмы, лежащие Т-клеток миграции.
Мы описали простой, быстрый и надежный способ для генерации лимфатических узлов ломтиками, которые используются для исследования поведения введен Т-клеток. В последние годы этот метод был успешно применен использованием тимуса и кусочками лимфатических узлов для определения внеклеточных факторов, контролирующих Т позиционирования клетки и подвижность 1,5. Он также был использован для измерения Са 2 + ответов в тимоцитов при положительном отборе и в Т-клетках после распознавания антигена 2,6. Анализ наложения срез представляет преимущества и ограничения, которые заслуживают того, чтобы обсуждать. Следует отметить, что эта система обеспечивает доступ к ткани, полезно, если нужно манипулировать ломтиками фармакологически для того, чтобы вмешиваться в молекулярный контроль миграции клеток. После обработки изображений, ломтики могут быть обработаны для иммуногистохимии для сбора дополнительной информации о структурах, которые были в образ. Более того, наблюдения могут быть сделаны с традиционными микроскоп флуоресценции широкопольных. Хотя резолюция не так хорошо, как с конфокальной или двухфотонного микроскопа и фототоксичности, что, в принципе, более серьезные с однофотонной, чем с двухфотонной микроскопии, она имеет преимущества простоты, низкой стоимости, и более широкого выбора возбуждения волн.
Изображений Т-клеток в здоровом лимфатических узлов требует внутривенного введения меченых лимфоцитов, которые впоследствии домой лимфоидных органах. Как было показано ранее 1, часть анализа вполне совместим с приемными эксперимент перевода. Тем не менее, время, необходимое для Т-клеток на главную в лимфатические узлы могут осложнить использование флуоресцентных красителей, которые имеют тенденцию к утечке из клеток с течением времени. Это случай Са 2 + краситель Фура-2. С быстрым набора (<30 мин) Т-клеток в ткани, срез анализа дает возможность использовать такие красители. Наконец, этот метод имеет большое преимущество для анализа Т клеточных функций в некоторых тканях человека оставлял в живых.
Эта экспериментальная система представляет также ограничения, которые необходимо иметь в виду. Повреждения, связанные с нарезки может повлиять T функционирования клеток, особенно в области поверхностных тканей вблизи поверхности среза. Для того чтобы оценить гибели клеток в срезе, мы использовали флуоресцентный краситель SYTOX зеленый, который проникает клетки с ослабленной плазматической мембраны. Наши эксперименты показывают, что около 20% от общего числа клеток узловой, в основном локализована в области поверхностных тканей, были помечены флуоресцентно этого ядерного красителя. Другая потенциальная проблема с анализа является способность ломтиками сохранить важные растворимых факторов, включая хемокинов. Хотя, у нас нет никаких признаков того, что наши данные были затронуты такие проблемы, так как Т-клетки дисплей хорошей подвижности в ломтик, мы хотели бы подчеркнуть важность изображений Т-клеток у здоровых регионов, расположенных в несколько десятков микрон от поверхности среза. Принимая во внимание, это может быть сделано с традиционными микроскопы (широкопольных или конфокальной), как в этот протокол, вполне вероятно, что часть лимфатического узла подготовки в сочетании с двухфотонного изображения увеличится пространственное разрешение по глубине и снижения фототоксичности.
The authors have nothing to disclose.
Авторы хотели бы поблагодарить д-ра Ален Траутманн, который призвал нас провести ломтиками лимфатических узлов. Эта работа была частично поддержана грантами от Национальной лиги Contre ле Рак, Фонд залить La Recherche Medicale ан Франции и Ассоциацией залить La Recherche сюр-ле-Рака.
Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments (optional) |
---|---|---|---|
Confocal microscope | Leica | SP5 | |
Vibratome | Leica | VT1200S | |
Fine Forceps | World Precision Instruments | 14142 | |
30 mm Culture inserts | Millipore | PICM0RG50 | |
RPMI | Invitrogen | 61870010 | Complete RPMI-medium is made by adding 10 % heat-inactivated fetal calf serum and Penicillin/streptomycin |
Hanks’ Balanced Salt Solution (HBSS) | Invitrogen | 14170088 | |
Low gelling temperature Agarose, type VII-A | Sigma-Aldrich | A0701 | |
Butyl Cyanoacrylate Glue, Vetbond | 3M | 1469 | |
Stainless steel washers, 4 mm of inner diameter | DIY store | ||
Cell Tracker green CMFDA | Invitrogen | C7025 |