特徴付ける草食動物の耐性機構：上Spittlebugs Brachiaria属。例として

1。植物成熟した植物から単幹挿し木は実験台として使用されます。挿し木は植え材料の均一性を確保するために10 cmにトリミングされています。 植物の病原体による汚染を防ぐために、挿し木は2分間、3％次亜塩素酸ナトリウム溶液で洗浄し、その後、水道水でthoughroughlyすすぎ洗いされています。 それぞれのカットは、CAに植えられている。円筒状の塩ビ管の滅菌土壌36 gは（6.5センチ×高さ外径5.3センチメートル）発泡スチロールのカップと下端部に密封し、PVCのブッシングで​​キャップ。カットは、ブッシングの中央開口部に配置された泡のリングで固定されています。 十分な土壌水分を維持するために、必要に応じて植物は受精と水やりしている。 植物は根、木部授乳アワフキムシの幼虫のためのサイトを餌として表面的な根、の開発を可能に、昆虫が挑戦される前に一ヶ月のために成長します。 根挿しによるPVCチューブは、部分的にルートのアーキテクチャに固有の差異を調整し、さらに表面的な根の成長を刺激する前に出没〜8 Dに反転されています。この手順では、24ヘクタールの日のために提供する光の人工光源を必要とする。この反転処理は実験から除去された後、草食動物の抵抗を持つ草食から交絡エスケープを避けるために、個々の植物はほとんど、またはまったく表面的なルーツを複製します。この除去は、それらが表す遺伝子型の排除につながることはない、まれなはずです。 2。昆虫成人spittlebugsは、フィールドから集めた種を同定し、それらを餌に影響を受けやすいbrachiariagrassesの葉を提供している産卵ケージに導入されています。女性は、土壌中のそれらの卵は、ケージの底部に配置浅いリムーバブルトレイに含まれて横たわっていた。 数日後、土は水に懸濁させ、卵を収集するふるいのシリーズ（42、60、150メッシュ）を介して渡されます。 30パーセント生理食塩水でふるいにかけた材料​​を中断すると、未成熟卵と、残留有機物を残し、成熟卵が浮くようになります。 昆虫病原体による汚染を防ぐために、卵は5分間0.5％次亜塩素酸ナトリウム溶液で消毒してから蒸留水で洗浄されています。 各試験プラント（実験的ユニット）は、6成熟卵で、土壌表面で出没です。孵化に近いだけ成熟した卵が蔓延のために選択されています。昆虫の腹部に対応する彼らの後部にピンクのマーク、;と完全に拡張された蓋それらは2つの赤虫の目に対応する彼らの前方部分のドットの存在によって識別することができます。 成功したハッチングを任意まだ孵化していない卵が我々のコロニーから新生児アワフキムシにより置換されている時点で、4dと、後で確認されている。 試験植物は、遺伝子型ごとに6つの複製を持つ無作為化完全ブロックデザインに配置されています。 3。評価実験は、CAが評価されます。侵入後の30 D（正確な時間は勉強昆虫種によって異なります）。 ダメージは1が死んだ植物に目に見える損傷および5に相当する（図1）に対応する1から5までの視覚のスケール、で採点される。植物の損傷を獲得する耐性の推定値を提供します。 Brachiaria属のアワフキムシ草食への耐性を評価するために使用される図1。被害の規模。 1 =検出可能な損傷、2 = 0から25パーセント壊死葉、3 = 25から50パーセント壊死葉、4 = 50から75パーセント壊死葉、5 = 75から100パーセント壊死葉。 昆虫の生存は、その最終的な齢、大人のステージ（図2）のどちらかに到達する昆虫を数えることによって評価される。昆虫の生存のためにスコアリングする抗菌の推定値を提供します。 一齢幼虫（左）から大人（右）に図2。アワフキムシの開発。評価日で少なくとも最終的な齢（矢印）に到達する唯一の昆虫は、次のように数えている"生存者。" 4。代表的な結果アワフキムシAeneolamia reductaへの抵抗のための代表的なアッセイのスクリーニングのBrachiariaのハイブリッドからの結果を図3に示されている。 図3。アワフキムシAeneolamia reductaへの抵抗のためにBrachiariaの雑種のスクリーニングの結果。草食性への応答は、このプロットの下半分に低下した場合我々は、植物が耐性を考慮してください。右から左への抗生作用の増加と上から下へ耐性が増加する。矢印は、私たちの耐性チェックを指す。