설립 demyelination과 생쥐의 척수 코드에 마우스를 신경 줄기 세포 (NSCs)의 이식이 자세히 있습니다. NSCs의 준비는 흉부 척추 9 조 (T9) 및 NSCs의 이식의 laminectomy은 생쥐의 사전 및 사후 수술 치료와 함께 설명되어 있습니다.
마우스 간염 바이러스의 neurotropic JHM 스트레인 (MHV)에 감염된 생쥐는 demyelinating 질병 다중 경화증 (MS) 환자와 유사한 병리 및 임상 결과를 개발할 수 있습니다. 우리는 모두 remyelination 및 임상 결과에 상당한 개선 아픈 쥐 결과의 척추 코드에 NSCs의 이식을 표시합니다. 만성 neurologic 질환의 치료를위한 세포 대체 요법은 이제 현실이며, 생체내 모델에 engrafted 세포 및 호스트 조직 microenvironment 사이의 상호 작용을 이해하는 핵심입니다. 이 프레 젠 테이션 JHMV에 감염된 생쥐의 척수에 세포를 이식에 대한 적응 방법을 제공합니다. 간단한, 우리는)) II, 이전 이식)를 게시 수술 치료를 미리 수술 생쥐의 치료, 3) laminectomy 통해 척수의 노출, IV) NSCs의 stereotactic 사출 및 IV를 NSCs의 준비를 I에 대한 절차를 제공합니다 .
잘 실행 이식 세포의주의 laminectomy 및 사출에 주로 힌지 것입니다. laminectomy 중에 피하기 위해 기본 함정은 척수의 손상이다. 이 절차 자체 동안이나 절차에 따라 남아 날카로운 뼈 조각에 의한 손상에 의해 발생할 수 있습니다. 이것을 방지하려면 곡선 마이크로 가위의 포인트는 항상 멀리 코드에서 직면 확인하고 신중하게 모든 뼈 조각이 해제되는 것을 보장하기 위해 laminectomized 척추를 검사하고 나머지 척추 구조가 명백히 튀어나온이나 계단이없는 가장자리 것을.
이전에 언급했듯이 빛을 주사하는 동안 노출된 척수에 밝은 직접 빛나는 경우 유출의 검색이 가능합니다. 유출은 30 게이지 바늘 (33 게이지 비교)과 사출이 너무 빠르게 할 경우 일어날 가능성이 높습니다. 이 프로토콜은 우리에게 좋은 결과를 주신지만, 다른 retracting 바늘 다음 사출 8,9에게 전 (최대 5 분) 기간을 기다리고 이상보고있다. 또한, 작은 게이지 바늘이 바람직하지만, 우리는 33 게이지 바늘을 통과하면 일부 세포가 너무 쉽게 lysed 것을 관찰했습니다.
효율을 극대화하기 위해 네 가지 방송국 (마우스를 준비, laminectomy, 사출 및 봉합) 매닝 이식 팀이 바람직합니다. 또한, 각 절차에 대한 타이밍은 세포가 얼음위에 대기하는 시간을 최소화하기 위해 최적화해야합니다. 예를 들어, 우리가 4 (주사기의 각 하중에 복용의 숫자)의 그룹의 마우스를 이식, 세포를 주입 사람이 세 번째 마우스가 laminectomized 후 주사기를로드 시작하고 생쥐를 준비하는 사람은 다음과 마취해야 이전 그룹의 두 번째 마우스 이후 그룹이 laminectomized되었습니다. 각각의 마우스가 약 30-40 분 소요됩니다하더라도 이러한 방법으로, 우리는 약 3 시간 40 마우스로 셀 (또는 제어 미디어) 이식 수 있습니다.
일부 CNS 장애의 치료를위한 세포 대체 요법 10 임상 실험에 있습니다. 이 NSC 이식 및 바이러스성 유도 demyelination MS의 중요한 모델의 사용을 용이와 생쥐의 척수 코드에 NSCs의 engraftment위한 프로토콜의 생체내 모델에 대한 대체가없고 쉽게 다른 모델로 적용할 수 있습니다.
The authors have nothing to disclose.
Name of the reagent/equipment | Company | Catalogue number | Comments (optional) |
---|---|---|---|
Ketaject | Phoenix Parmaceuticals | NDC 57319-542-02 | |
Xylazine Hydrochloride | MP Biomedicals | 158307 | |
Nair | Church & Dwight Co. | ||
10μl Hamilton Syringe w/ Removable needle | Hamilton Company | 7635-01 | |
Hamilton Needles, 30G or 33 G, ½ inch, 30° bevel | Hamilton Company | 7803-077803-05 | Test the viability of your cells following passage through needles to identify the best gauge to use |
Micro Scissors | World Precision Instruments | 555500S | |
Small Graefe Forceps | FST | 11053-10 | |
Stereotaxic | KOPF Instruments | Model 1772 Universal Holder | |
Stereotaxic | KOPF Instruments | Model 1773 Electrode Holder | |
Stereotaxic | KOPF Instruments | Model 902 small animal stereotaxic | |
Stereotaxic | KOPF Instruments | Model 960 left electrode carrier | |
Sutures | Ethicon | 95057-064 | |
Lactated Ringers | Hospira | NDC 0409-7953-03 | |
Staples | Fine Science | 12032-07 | |
Hemostat | FST | 13010-12 | |
Scalpels, sizes 10,11 | Fisher | 268878, 268879 | |
Sutures | ETHICON | 1676G | size 5-0, 3/8″ circle, 19mm needle, 45cm braided thread |
Reflex 7 wound clip applicator | FST | 12031-07 | |
7mm Reflex wound clips | FST | 12032-07 | |
Olsen-Hegar needle holder | FST | 12502-12 |