概要

器官型海马切片培养

Published: February 03, 2011
doi:

概要

我们描述了一种方法来准备器官可以很容易地适应大脑的其他区域的海马。大脑切片放在多孔膜和文化传媒是可以形成一个接口。这种方法保留了长达2周文化的海马毛架构。

Abstract

海马,边缘系统的一个组成部分,起着重要的作用,在长期记忆空间导航1。海马神经元后,可以修改其连接的实力较强的激活短暂。这种现象,长时程增强(LTP),可以持续数小时或数天,并已成为学习记忆2的最佳人选机制。此外,定义良好的解剖和海马 3的连接已成为一个经典的模型系统研究突触传递和突触可塑性的4。

由于我们了解海马突触生理学增长和分子球员成为确定,需要操纵突触蛋白成为当务之急。海马器官型文化提供易于基因操作和精确的药物干预的可能性,但仍维持突触的组织,是了解一个更自然的背景下,比常规培养方法分离​​神经元突触功能的关键。

在这里,我们提出了一个方法,准备和文化,可以很容易地适应大脑的其他区域的海马。这种方法可以方便地访问基因操纵的片,用不同的方法,如病毒感染的5,6 biolistics 7。此外,片可以很容易地恢复为8生化分析,或转移到显微镜成像910电生理实验。

Protocol

1。开始之前的海马脑片的制备。 准备放置一块聚四氟乙烯板,并安装一个新的刀片组织切片机。 用70%乙醇擦拭组织培养(TC),引擎盖和设置解剖显微镜内。消毒的油烟机,显微镜,组织切片机和紫外线灯15分钟所有解剖工具。 准备6家训练班板。每孔加750μL,切片文化传媒(SCM)的每口井和地点细胞培养插入。确保彻底湿膜与无气泡下方。板块放置在孵化器在35 ° C与5%?…

Discussion

上最初Stoppini 描述的方法,这种方法是基于 11和海马文化提供了一个快速的方式。此协议的最重要的是保持切片无菌;因此,关键是使用适当的无菌技术,并妥善消毒和消毒与组织接触的所有材料。

血清来源的不同可以影响切片质量。我们建议先测试几个批次。如果污染是一个经常出现的问题,检查孵化器和组织文化引擎盖污染的可能来源。正确使用?…

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作是由美国NINDS – 美国国立卫生研究院R01NS060756

Materials

Material Name タイプ Company Catalogue Number Comment
Cell culture inserts   Millipore PICM03050  
6 well plates   BD Falcon 353046  
Tissue Slicer   Stoelting 51425/51415  
Microscope   Olympus SZX7-ILLD2-100  
Hippocampus dissecting tool   F.S.T 10099-15  
Large utility scissors. Perfection   F.S.T 37500-00/37000-00 Right/ Left handed  
Iris Spatula   F.S.T 10093-13  
Straight spatula   F.S.T 10094-13  
Rounded spoon micro spatula   VWR 57949-039  
Dissecting single cutting edge needle   Electron Microscopy Science 72946  
Dissecting tweezers   Dummont #2  
Small dissecting scissors   F.S.T 14060-10  
MEM Eagle medium   Cellgro 50-019 PB  
Horse serum heat inactivated   Invitrogen 26050-88  
L-Glutamine (200 mM)   Invitrogen 25030081  
CaCl2 (1 M)   Sigma C3881  
MgSO4 (1 M)   Sigma M2773  
Insulin (1 mg/ml), dissolved in HCl 0.01 N   Sigma I0516  
Ascorbic Acid, solution (25%)   Sigma A4544  
D-Glucose   Sigma G5767  
NaHCO3   Sigma S6014  
Hepes   Sigma H7523  
Sucrose   Sigma S5016  
Phenol Red Solution 0.5% in DPBS   Sigma P0290  
KCl   Sigma P3911  
MgCl2 (1 M)   Sigma M9272  

参考文献

  1. Martin, S. J., Grimwood, P. D., Morris, R. G. Synaptic plasticity and memory: an evaluation of the hypothesis. Annu Rev Neurosci. 23, 649-711 (2000).
  2. Bliss, T. V., Collingridge, G. L., Morris, R. G. I. n. t. r. o. d. u. c. t. i. o. n. Long-term potentiation and structure of the issue. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 358, 607-611 (2003).
  3. Shepherd, G. M. . The synaptic organization of the brain. , (2004).
  4. Malinow, R., Tsien, R. W. Presynaptic enhancement shown by whole-cell recordings of long-term potentiation in hippocampal slices. Nature. 346, 177-180 (1990).
  5. Malinow, R. Introduction of green fluorescent protein (GFP) into hippocampal neurons through viral infection. Cold Spring Harb Protoc. , (2010).
  6. Shi, S., Hayashi, Y., Esteban, J. A., Malinow, R. Subunit-specific rules governing AMPA receptor trafficking to synapses in hippocampal pyramidal neurons. Cell. 105, 331-343 (2001).
  7. Woods, G., Zito, K. Preparation of gene gun bullets and biolistic transfection of neurons in slice culture. J Vis Exp. , (2008).
  8. Esteban, J. A. PKA phosphorylation of AMPA receptor subunits controls synaptic trafficking underlying plasticity. Nat Neurosci. 6, 136-143 (2003).
  9. Mainen, Z. F. Two-photon imaging in living brain slices. Methods. 18, 231-239 (1999).
  10. Barria, A., Malinow, R. Subunit-specific NMDA receptor trafficking to synapses. Neuron. 35, 345-353 (2002).
  11. Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. A simple method for organotypic cultures of nervous tissue. J Neurosci Methods. 37, 173-182 (1991).
  12. Simoni, A. D. e., Griesinger, C. B., Edwards, F. A. Development of rat CA1 neurones in acute versus organotypic slices: role of experience in synaptic morphology and activity. J Physiol. 550, 135-147 (2003).

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記事を引用
Opitz-Araya, X., Barria, A. Organotypic Hippocampal Slice Cultures. J. Vis. Exp. (48), e2462, doi:10.3791/2462 (2011).

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