概要

Внутриутробное Электропорация последующей первичной нейронов культуры для изучения функции генов в Подмножество корковых нейронов

Published: October 08, 2010
doi:

概要

В электропорации внутриутробно является ценным методом трансфекции клеток-предшественников нейронов в живом организме. В зависимости от размещения электродов и развития timepoint электропорации, некоторые подмножества клеток коры могут быть направлены. Целевые клетки могут быть проанализированы в естественных условиях или в пробирке для воздействия генетических изменений.

Abstract

В пробирке изучение первичных нейронов культур позволяет количественного анализа аксонов. Для того, чтобы изучить, как генетические изменения влияют на нейронные результатом процесса, shRNA или кДНК конструкции могут быть введены в первичные нейроны с помощью трансфекции химического или вирусной трансдукции. Тем не менее, с первичным корковых клеток, гетерогенных бассейн типов клеток (нейронов глутаматергической из разных слоев, тормозящие нейроны, глиальные клетки) трансфекции с помощью этих методов. Использование внутриутробно электропорации ввести конструкций ДНК в эмбриональных коре грызунов допускает определенные подмножества ячеек, которые будут целевые: в то время электропорации ранней эмбриональной коры цели глубоких слоях коры, электропорации на поздних эмбриональных timepoints цели более поверхностные слои. Кроме того, дифференциальные размещения электродов через головы отдельных результатов эмбрионов в адресности спинно-медиальной по сравнению с вентральной-боковых отделах коры. После электропорации, трансфицированных клеток можно разрезать из, диссоциированных и покрытие в пробирке для количественного анализа аксонов. Здесь мы предоставляем шаг за шагом метод количественного измерения нейронов результатом процесса в подмножествах корковых клеток.

Базового протокола в электропорации внутриутробно была подробно описана в двух других статьях Юпитера от Kriegstein лаборатории 1, 2. Мы предоставим обзор наших протокол электропорации в матке, уделяя особое внимание наиболее важные детали, за которым следует описание нашего протокола, который применяется в электропорации внутриутробно для изучения функции генов в нейронных результатом процесса.

Protocol

Базового протокола в электропорации внутриутробно был подробно описан в другой статье от Юпитера Kriegstein лаборатории 1, 2. Эта методика была впервые описана в Osumi лаборатории 3 и наш протокол основан на одной из развитых в LoTurco лаборатории 4. Мы предоставим обзор …

Discussion

В пробирке изучение первичных нейронов культур позволяют количественного анализа аксонов. Для того, чтобы изучить, как генетические изменения влияют на нейронные результатом процесса, shRNA или misexpression конструкции могут быть введены в первичные нейроны с помощью трансфекции химич?…

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы хотели бы поблагодарить Иосифа LoTurco и Деннис Selkoe за полезные дискуссии на эту технику. Авторы выражают благодарность донорам Американский фонд содействия здравоохранению, за поддержку этого исследования.

Materials

Material Name タイプ Company Catalogue Number Comment
Cortical Neuron Preparation        
Dissection Media:        
10X Hanks’ Balanced Salt Solution (HBSS) (Ca+2 /Mg +2 free)   Gibco 14185-052  
10X Hanks’ Balanced Salt Solution (HBSS) (with Ca+2 /Mg +2 )   Gibco 14065-056  
1M HEPES pH 7.4   Gibco 15630-080  
Dishes and Vials:        
100 x 15 mm Petri Dishes Fisherbrand 08-757-12  
60 x 15 mm Petri Dishes   BD Falcon 351007  
15 mL conical vial   Sarstedt 62-547-205  
50 mL conical vial   Sarstedt 62-554-205  
Dissection Tools:        
Scissors   Fine Science Tools 91402-12  
Standard Forceps Fine Science Tools 11000-12  
Curved Forceps   Fine Science Tools 11273-20  
Fine Forceps   Fine Science Tools 11255-20  
Vannas spring scissors   Fine Science Tools 15000-00  
Miscellaneous:        
.25% Trypsin-EDTA   Gibco 25200  
Reichert Bright-Line Hemacytometer   Hausser Scientific 1490  
Hand-Held Tally Counter   Sigma Z169021  
Plating Medium:        
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (D-MEM)   Gibco 11960-051  
Fetal Bovine Serum   Sigma F4135  
Penicillin-Streptomycin   Gibco 15140  
L-glutamine   Gibco 25030  
Growth Medium:        
NEUROBASAL Medium   Gibco 21103-049  
B-27 Serum-Free Supplement   Gibco 17504-044  
GlutaMAX -I Supplement   Gibco 35050-061  
Gentamicin Reagent Solution   Gibco 15750-060  
Immunostaining:        
Fixative, Washes, and Blocking Buffer:        
Paraformaldehyde   Sigma P6148  
Phosphate Buffered Saline   Sigma P4417  
Triton X-100   Sigma T9284  
Donkey Serum   Jackson Immuno 017-000-121  
Antibodies:        
beta-III tubulin antibody   Chemicon MAB1637  
MAP2 antibody   Chemicon AB15452  
Donkey Cy3 anti-mouse   Jackson Immuno 715-166-151  
Donkey Cy2 anti-chicken   Jackson Immuno 703-226-155  
DAPI   Gibco D3571  
Slide Preparation:        
CC2 Coated Two-Chamber Slides   Lab-Tek 154852  
Fluorescent Mounting Media   KPL 71-00-16  
24 x 60 mm Micro Cover Glasses   VWR 48393-106  
Clear nail polish   Electron Microscopy Sciences 72180  
Electroporation:        
Ketamine   Henry Schein 995-2949  
Xylazine   Henry Schein 4015809TV  
buprenorphine   Henry Schein 1118217  
Picospritzer III   Parker    
BTX square wave electroporator   Fisher BTXECM830  
Tweezertrodes, 7 mm, platinum   Harvard Apparatus 450488  

参考文献

  1. Walantus, W., Castaneda, D., Elias, L., Kriegstein, A. In utero intraventricular injection and electroporation of E15 mouse embryos. J Vis Exp. , (2007).
  2. Walantus, W., Elias, L., Kriegstein, A. In utero intraventricular injection and electroporation of E16 rat embryos. J Vis Exp. , (2007).
  3. Takahashi, M., Sato, K., Nomura, T., Osumi, N. Manipulating gene expressions by electroporation in the developing brain of mammalian embryos. Differentiation. 70 (4-5), 155-1562 (2002).
  4. Bai, J., Ramos, R. L., Ackman, J. B., Thomas, A. M., Lee, R. V., LoTurco, J. J. RNAi reveals doublecortin is required for radial migration in rat neocortex. Nat Neurosci. , 1277-1283 (2003).
  5. Okada, A., Lansford, R., Weimann, J. M., Fraser, S. E., McConnell, S. K. Imaging cells in the developing nervous system with retrovirus expressing modified green fluorescent protein. Exp Neurol. 156 (2), 394-406 (1999).
  6. Bai, J., Ramos, R. L., Paramasivam, M., Siddiqi, F., Ackman, J. B., LoTurco, J. J. The role of DCX and LIS1 in migration through the lateral cortical stream of developing forebrain. Dev Neurosci. , 144-156 (2008).
  7. Molyneaux, B. J., Arlotta, P., Menezes, J. R., Macklis, J. D. Neuronal subtype specification in the cerebral cortex. Nat Rev Neurosci. , 427-437 (2007).
  8. Young-Pearse, T. L., Bai, J., Chang, R., Zheng, J. B., Loturco, J. J., Selkoe, D. J. A Critical Function for -Amyloid Precursor Protein in Neuronal Migration Revealed by In Utero RNA Interference. J Neurosci. 27, 14459-14469 (2007).
  9. Young-Pearse, T. L., Chen, A. C., Chang, R., Marquez, C., Selkoe, D. J. Secreted APP regulates the function of full-length APP in neurite outgrowth through interaction with integrin beta1. Neural Develop. 3, 15-15 (2008).

Play Video

記事を引用
Rice, H., Suth, S., Cavanaugh, W., Bai, J., Young-Pearse, T. L. In utero Electroporation followed by Primary Neuronal Culture for Studying Gene Function in Subset of Cortical Neurons. J. Vis. Exp. (44), e2103, doi:10.3791/2103 (2010).

View Video