Deze procedure beschrijft een methode voor de isolatie en de cultuur van het muriene orgaan van Corti, met of zonder de spiraal limbus en spiraal ganglion neuronen. We tonen ook aan een methode voor de expressie van een exogeen reportergen in het orgaan van Corti explant door elektroporatie.
In alle zoogdieren, is de sensorische epitheel voor auditie gelegen langs de spiraalvormige orgaan van Corti, dat zich bevindt binnen de schelp gevormd slakkenhuis van het binnenoor (fig. 1). Haarcellen in het slakkenhuis te ontwikkelen, die de mechanosensorische cellen van het auditieve systeem, zijn afgestemd op een rij binnenste haarcellen en drie (in de basis-en mid-bochten) tot vier (in de apicale beurt) rijen buitenste haarcellen dat overspanning de lengte van het orgaan van Corti. Haarcellen transduceren sound-geïnduceerde mechanische trillingen van het basilair membraan in de neurale impulsen die de hersenen kunnen interpreteren. De meeste gevallen van perceptief gehoorverlies worden veroorzaakt door dood of disfunctie van cochleaire haarcellen.
Een steeds belangrijker instrument in auditieve onderzoek is de isolatie en in vitro cultuur van het orgel explantaat 1,2,9. Eenmaal geïsoleerd, kan de explantaten worden gebruikt in verschillende manieren om informatie met betrekking tot normatieve, afwijkend, of therapeutische fysiologie te geven. Genexpressie, stereocilia motiliteit, cel-en moleculaire biologie, evenals biologische benaderingen voor haar celregeneratie zijn voorbeelden van experimentele toepassingen van orgaan van Corti explantaten.
Dit protocol beschrijft een methode voor de isolatie en de cultuur van het orgaan van Corti van neonatale muizen. De bijgaande video bevat stapsgewijze aanwijzingen voor de isolatie van het slaapbeen van muis pups, en de daaropvolgende isolatie van de cochlea, spiraal ligament, en orgaan van Corti. Eenmaal geïsoleerd, kan de zintuiglijke epitheel worden uitgeplaat en gekweekt in vitro in zijn geheel, of als een verdere ontleed micro-isolaat dat mist de spiraal limbus en spiraal ganglion neuronen. Met behulp van deze methode kan de primaire explantaten worden gehandhaafd voor 7-10 dagen. Als voorbeeld van het nut van deze procedure, zal orgaan van Corti explanten worden geëlektroporeerd met een exogene DsRed reportergen. Deze methode biedt een verbetering ten opzichte van andere gepubliceerde methoden omdat het reproduceerbaar, eenduidig, en stapsgewijze aanwijzingen voor de isolatie, microdissectie, en primaire cultuur van het orgaan van Corti.
Er zijn verschillende details die essentieel zijn voor het succes van deze procedure. Hoe korter de tijd van slaapbeen isolatie tot orgaan van Corti incubatie, hoe groter de kans dat de organen zal hechten aan het dekglaasje en resulteren in levensvatbare orgaan culturen. Daarom is het belangrijk om de hoeveelheid van de termijn tussen de dissectie en het plaatsen van de organen in de couveuse. De keuze van antibiotica is ook van cruciaal belang, omdat veel aminoglycoside-antibiotica zijn ototoxische en zal resulteren in het haar celdood. Hoewel het de voorkeur om het gebruik van antibiotica helemaal af te zien, dit laat de mogelijkheid open voor de verontreiniging. Daarom raden we het gebruik van 10 ug / ml ampicilline als algemene regel om mogelijke besmetting problemen te overwinnen.
Het meest lastige aspect van deze, en andere procedures voor de primaire cultuur van het orgaan van Corti, is de neiging van de organen te drijven af van de platen tijdens de incubatie. Hoewel de drijvende orgel culturen kunnen levensvatbaar blijven voor 5-7 dagen, zijn er nadelen van het kweken van drijvende organen. Bijvoorbeeld, drijvende orgel culturen vaak folden op zich na 4-5 dagen rendering microscopie problematisch. Vervolgens kan de structurele integriteit van het orgaan worden aangetast in vergelijking met de organen die zijn aangebracht op het dekglaasje. We hebben gevonden dat de volgende technieken helpen om ervoor te zorgen dat het orgaan van Corti niet zweven in de cultuur media, maar blijft aangebracht op de dekglaasje aan. De eerste, de vacht van de glazen dekglaasjes in 1:1 polyornithine / laminine aangevuld met 20% FBS zoals beschreven. De overnacht incubatie gevraagd in dit protocol is de minimale tijd dat de plaat zou moeten worden bekleed. In ons laboratorium hebben we vaak jas al de platen die we nodig hebben voor een week en houd ze bij 4 ° C tot de dag voorafgaand aan het gebruik als we ze naar de incubator voor een incubatie gedurende de nacht. Ten tweede, na de organen worden getransporteerd naar de gecoate dekglaasjes, oriënteren de explantatie, zodat de cilia van de haarcellen naar boven. Deze oriëntatie zal de hechting van het basilair membraan naar de cultuur schotel. Ten derde, verwijdert u de media in de put aan te brengen de explantatie aan de beklede schaal. Dit zal zorgen voor contact tussen de cultuur schotel en het basilair membraan en vergroten het vermogen van de explantaten zich te houden aan het glas. Dit zal ook helpen bij het handhaven van de structurele integriteit van de rijen van de haarcellen. Ten slotte is zorgvuldig drip twee druppels kweekmedium op het oppervlak van het orgaan van Corti met behulp van een 200 pi capaciteit pipet en dan langzaam de put te vullen door druppelen de resterende volume (van de totaal 130 pi) aan de kant van het dekglaasje. Het is belangrijk om snel te werken aan de bevestiging van het orgaan van Corti, verzekeren het gecoate dekglaasje aan. Uit de inleiding van de dissectie van de incubatie van de explantaten, duurt het normaal gesproken 10 minuten voor een geoefend operator klaar zijn met dit orgaan van Corti isolatie procedure.
In dit protocol, presenteren we ook een methode voor de micro-isolatie van de sensorische epitheel van de spiraal limbus van het orgaan van Corti. In deze procedure is de spiraal limbus weg ontleed van de zintuiglijke epitheel met behulp van 28G ½ insuline naalden als dissectie-instrumenten. De resulterende micro-isoleren bestaat uit de rijen van de haarcellen en de bijbehorende ondersteunende cellen (fig 3). De geïsoleerde sensorische epitheel kan dan worden gekweekt, zoals beschreven in dit protocol. Deze micro-isolatie procedure moet worden vergeleken met de enzymatische scheiding van de sensorische epitheel van het omringende weefsel 4. Bij zoogdieren, maar ook niet-zoogdieren, zoals kippen, thermolysine vertering van geïsoleerde vestibulaire organen resulteert in de isolatie van sensorische epitheel van de kelder mesenchymale cellen 4. In de rat slakkenhuis, thermolysine spijsvertering resulteert in de scheiding van de grotere epitheliale nok, in mindere epitheliale nok en bijbehorende sensorische epitheel van de kelder membraan 5. Het is echter onduidelijk of de cochleaire sensorische epitheel kan hechten aan de gecoate platen zonder de bijbehorende mesenchymale cellen. Terwijl zowel de mechanische micro-isolatie-methode en enzymatische vertering methode resulteert in de scheiding van de sensorische epitheel van de spiraal limbus, de voordelen van de micro-isoleren dissectie over de thermolysine spijsvertering zijn een relatief kortere protocol, goedkoper reagentia, en mogelijk minder stress de explantaat als gevolg van enzymatische werking van de spijsvertering. Daarnaast is de basale membraan intact gelaten in deze aanpak, die bevestiging van de sensorische epitheel van de cultuur plaat te verbeteren. Nadelen van deze methode zijn de noodzaak om de vaardigheden te ontwikkelen voor deze delicate dissectie en mogelijke mechanische schade aan de sensorische epitheel als gevolg van de micro-dissectie.
Als voorbeeld van het nut van deze procedure, presenteren we ook een voorbeeld van het gebruik van het orgel van deCorti culturen, de elektroporatie van exogene genen in de explantaat cultuur. De elektroporatie hierboven beschreven procedure is gebaseerd op de vorige methoden van orgaan van Corti elektroporatie. Met name Zheng en Gao (2000) beschrijven de elektroporatie van geïsoleerde rat organen van Corti, waar de explantaten op hun plaats gehouden voor elektroporatie door een gevormde groef van agarose en vervolgens uitgeplaat op collageen gecoate 8-goed LabTek slide in serum-vrij medium 2. Een voordeel van hun aanpak is dat de organen zo zijn gericht dat de bovenste oppervlakken van de explantaten de kathode, die theoretisch zou moeten resulteren in een gelijkmatige verdeling van geëlektroporeerde cellen over de explantatie gezicht. In onze handen echter, de methode die we beschrijven verbeterd op deze procedure, omdat het orgaan van Corti bleef aangebracht op de dekglaasje gedurende de procedure waardoor de manipulatie van de explantaat na elektroporatie. Daarnaast bleef een hoger percentage van organen van Corti aan de dekglaasjes het gebruik van deze methode gepresenteerd. Onze methode is afkomstig uit Jones, et al.. (2006), die de toevoeging van de Fugene 6 reagens gebruikt om de efficiëntie van genexpressie toenemen na de elektroporatie. In de Jones et al.. (2006) protocol, zijn de organen geëlektroporeerd, geïncubeerd gedurende 5 minuten met 100 pi van Fugene 6 transfectiereagens, en vergulde 6. Onze methode verschilt in het gebruik van een 3:2 verhouding van Fugene 6 reagens om plasmide DNA, die vonden we empirisch een optimale transgene expressie te bieden met een minimum aan orgaantoxiciteit. Wij gebruiken geen onverdund Fugene 6 reagens, wat kan leiden tot toxiciteit voor de culturen. De elektrode configuratie in ons protocol, evenals Jones et al.. (2006), resulteert in een lagere expressie van genen in zowel de spiraal limbus of zintuiglijke epitheel, afhankelijk van de positie van de kathode. Hoewel er DsRed positieve cellen aan de kant van de cultuur verre naar de kathode, is er een hogere concentratie van de transgene cellen dichter bij de kathode. Om ervoor te zorgen een volledige expressie van het transgen in beide zijden van het orgaan van Corti Explantatie, kan de stroom worden omgekeerd voor een tweede puls trein door simpelweg het omkeren van de leads. De gepresenteerde protocol resulteert in een robuuste expressie van het transgen door het orgaan van Corti (fig. 5).
De auteurs willen graag Demêmes Danielle en Douglas Cotanche bedanken en voor hun inzet in het onderwijs ons de methoden voor de isolatie van het orgaan van Corti. Daarnaast willen we bedanken Ismaël Stefanov-Wagner voor engineering van de electroporator elektroden, Sherry Lin voor haar bijdrage kunstwerk aan de video-animatie, en Matthew Chana, Jason Meeker en Kendra Marshall ( www.goodfightproductions.com ) voor het produceren van de video. Dit werk werd gefinancierd door subsidies (R03DC010065-Parker, RO1DC007174-Edge; P30DC05209-MEEI Core Ondersteuning voor Hearing Research) van de NIDCD, toont.
Material Name | タイプ | Company | Catalogue Number | Comment |
---|---|---|---|---|
Glass microscope coverslips | DYNALAB Corporation (Rochester, NY) | 2010 | 10mm diameter, circle #1, 1mm thickness, 1 ounce | |
4 ringed cell culture dish | Greiner Bio-One (Frickenhausen, Germany) | 627170 | Sterilized 35 X 10 mm cell culture dish with 4 inner rings | |
Poly-L-ornithine | Sigma-Aldrich Company (St. Louis, MO) | P4957 | 0.01% Solution | |
Laminin | BD Biosciences (Franklin Lakes, NJ) | 354232 | made in mouse | |
Fetal Bovine Serum | Invitrogen (Carlsbad, CA) | 26140-095 | Qualified | |
Operating scissors | Roboz Surgical Instrument Co. (Gaithersburg, MD) | RS-6806 | Straight, sharp-blunt length 5″ | |
#11 Scalpel Blade | Becton Dickenson (Franklin Lakes, NJ) | 372611 | ||
#4 Dumoxel forceps | Fine Science Tools (Foster City, CA) | 11241-30 | ||
#55 Dumostar fine forceps | Fine Science Tools (Foster City, CA) | 11295-51 | ||
Dulbecco’s Modified Eagle Medium | Invitrogen (Carlsbad, CA) | 10564-011 | High Glucose | |
Horse Serum | Invitrogen (Carlsbad, CA) | 2605088 | Heat Inactivated | |
Ampicillin Sodium Salt | Invitrogen (Carlsbad, CA) | 11593-027 | Irradiated | |
½ cc Lo-Dose Insulin Syringe | Becton Dickenson (Franklin Lakes, NJ) | 329465 | U-100 28G½ | |
Fugene 6 Transfection Reagent | Roche (Mannheim, Germany) | 11-815-091-001 | ||
Polystyrene test tube | Fisher Scientific (Pittsburgh, PA) | 14-956-5A | ||
Laminar flow hood | The Baker Company (Stanford, ME) | Model SG603a | SterileGARD III Advanced Class II Biological Safety Cabinet |
|
Opti-MEM I Reduced-Serum Medium | Invitrogen (Carlsbad, CA) | 31985 | ||
Reporter plasmid | Clontech (Mountain View, CA) | 632539 | pCMV DsRed-Express 2 | |
Electroporator | BioRad (Hercules, CA) | 165–2662 | BioRad Gene Pulser Xcell |