Een nieuwe manier om optisch te meten neurotransmissie met behulp van fluorescerende dopamine-analogen.
Het zenuwstelsel zendt signalen tussen neuronen via neurotransmitters in de synaptische vesicles fusie. Te observeren neurotransmitter opname en afgifte van individuele presynaptische terminals direct, ontwierpen we fluorescerende valse neurotransmitters als substraten voor de synaptische vesicles monoamine transporter. Met behulp van deze probes om de afbeelding dopamine-afgifte in het striatum, maakten we verschillende opmerkingen die relevant zijn voor synaptische plasticiteit. We vonden dat de fractie van synaptische blaasjes het vrijgeven van neurotransmitters per stimulus is afhankelijk van de stimulus frequentie. Een kinetisch verschillende "reserve" synaptische vesicles bevolking werd niet waargenomen onder deze experimentele omstandigheden. Een frequentie-afhankelijke heterogeniteit van de presynaptische terminals werd onthuld dat afhankelijk was van een deel van D2 dopamine receptoren, duidt op een mechanisme voor het frequentie-afhankelijke coderen van presynaptische selectie.
Hui Zhang en Niko G. gubernator droegen ook voor dit werk.
In deze video, demonstreren we een methode om optisch te visualiseren neurotransmissie met behulp van fluorescerende dopamine-analogen. FFN511 is de eerste generatie FFNs we hebben ontwikkeld. Hoewel het werd ontworpen door zich te richten de neuronale vesiculaire monoamine transporter (VMAT2) die monoamine neurotransmitters draagt vanuit het cytoplasma naar synaptische blaasjes, en in het bijzonder labels dopamine terminals in het striatum en de vermoedelijke catecholamine en / of serotonine terminals in de cortex (zoals in de wetenschap papier), een passende oplaadfase is van cruciaal belang voor de specificiteit, omdat FFN511 relatief hydrofoob. Wij vonden dat incubatie langer dan 40 minuten zal resulteren in een uitgebreide niet-specifieke kleuring in striatale plakjes. De specificiteit kan gewoon worden bepaald door ontkleuren wordt het gebruik van een hoge concentratie van KCl, waarvan de release van FFN zou ervoor moeten zorgen binnen de functionele synaptische blaasjes. Blootstelling van de slice om FFN511 voor minder dan 15 minuten zal resulteren in een zwak fluorescerende signaal als gevolg van onvoldoende laden van de kleurstof in de terminals. In dit protocol gebruiken we 100 urn ADVASEP-7 aan de kleurstof gebonden aan extracellulaire weefsel te verwijderen. Deze stap is niet noodzakelijk, maar als het wordt weggelaten, de wash-out tijd in ACSF dient te worden verlengd. Samengevat, afhankelijk van de voorbereiding die u kiest, moet u de concentratie en het laden periode te wijzigen om een optimale etikettering vast te stellen.
The authors have nothing to disclose.
D. Sames bedankt de G. Harold & Leila Y. Mathers Charitable Foundation en de Universiteit van Columbia initiatieven in Science and Engineering.
D. Sames en D. Sulzer dank de McKnight Foundation for The McKnight technologische innovaties in Neuroscience Award
D. Sulzer dankzij NIDA, NIMH, en de Picower en de ziekte van Parkinson stichtingen.
H. Zhang bedankt NARSAD.
RH Edwards bedankt de Michael J. Fox Foundation, de National Parkinson Foundation, NIDA en NIMH.
Wij danken Robert Burke voor 6-OHDA injecties en advies, Mark Sonders voor nuttige discussie, Merek Siu voor beeldvorming analyse programmering, en Jan Schmoranzer voor technische ondersteuning bij de TIRF microscopie setup.
Material Name | タイプ | Company | Catalogue Number | Comment |
---|---|---|---|---|
FFN511 (8-(2-Amino-ethyl)-2,3,5,6-tetrahydro-1H,4H-11-oxa-3a-aza-benzo[de]anthracen-10-one) | Dalibor Sames’s laboratory at Columbia University | |||
ADVASEP-7 | CyDex, Overland Park, KS | AR-OA7-005 | ||
RC-27L Recording chamber | Warner Instrument | 64-0375 | ||
PELCO PrepEze 6-Well Holder | Ted Pella, Inc. | 36157-1 | For slice incubation | |
Master-8 pulse stimulator and Iso- Flex stimulus isolator | AMPI, Jerusalem, Israel |