Ce protocole démontre comment maintenir en bonne santé, indifférencié souches embryonnaires humaines (ES) cellules.
Souches embryonnaires humaines (hES) les cellules doivent être surveillés et soignés afin de maintenir en bonne santé, cultures indifférenciées. Au minimum, les cultures doivent être nourris chaque jour en effectuant un changement de milieu complet à reconstituer les éléments nutritifs perdus et de maintenir les cultures libres de facteurs de différenciation indésirable. Même si une petite quantité de différenciation est normal et prévu dans les cultures de cellules souches, la culture doit être systématiquement nettoyé en supprimant manuellement, ou «cueillette» des zones différenciées. Identifier et éliminer l'excès de différenciation de cultures de cellules hES sont des techniques essentielles dans le maintien d'une population saine de cellules.
Stérilité doit être maintenue en tout temps lorsque vous travaillez avec des cellules hES. Nettoyer et stériliser l'enceinte de sécurité biologique et de tous les équipements avant l'utilisation. Tous les réactifs doivent être filtrés en utilisant un filtre de 0,22 um taille des pores avant l'utilisation. L'utilisation de antiboiotics en culture de cellules hES n'est pas nécessaire et devrait être évitée.
Un environnement distinct devrait être mis en place comme une station de cueillette désigné. L'enceinte stérile pour la station peut être une enceinte statique (comme un poste de travail PCR) avec une source de lumière UV, une hotte à flux laminaire, ou une enceinte de sécurité biologique. Un microscope à dissection à l'intérieur du poste de cueillette est nécessaire pour observer les colonies comme des zones différenciées sont supprimés. Le panneau de verre avant d'une enceinte statique ou une enceinte de sécurité biologique doit être modifié pour permettre les oculaires du microscope à s'étendre à travers le panneau, sans compromettre une bonne ventilation et la stérilité.
Pour entretenir la santé des cultures de cellules hES, les cellules doivent être passées au moment optimal, généralement tous les 4-7 jours. A cette époque les colonies ont atteint leur taille maximale et peut être commencent à fusionner. Fusionné colonies peuvent augmenter le taux de différenciation dans la culture. Ratios de Split tombent généralement 1:03-1:05, selon le nombre de colonies en plaqué, le taux d'expansion, et les conditions de culture. Overplated colonies (rapport de division trop faible) sera probablement fusionner prématurément et ont besoin d'être repiquées avant qu'ils atteignent leur taille maximale.
Cultures sur une couche nourricière MEF qui est plus de 2 semaines doit être passée à nouveau FAE qui soutiendront la croissance et la prolifération indifférenciée.
Depuis une différenciation se produit naturellement dans les cultures de cellules hES, une petite quantité est attendue. Différentiation fréquente ou excessive peut se produire si les cultures ne reçoivent pas les soins appropriés. Les cellules doivent être nourris tous les jours, la prolifération entre les passages doivent être évités. Toujours utiliser des réactifs frais. Tous les médias, les FAE et les réactifs doivent être utilisés dans les 14 jours afin d'éviter la croissance de cellules hES indifférenciées. Les nouveaux lots de réactifs, comme le remplacement Knockout Sérum, FBS et FAE, devraient être examinés avant toute utilisation. N'oubliez pas que toute les cellules différenciées pas enlevé avant repiquage sera transférée aux nouvelles cultures. Aussi, essayez de maintenir les cellules à 37 ° C dès que possible. Minimisez le temps passé à l'extérieur des cellules de l'incubateur (par exemple sur la platine du microscope ou dans l'enceinte de sécurité biologique.) Une platine de microscope chauffée peut être très bénéfique si les cellules seront de l'incubateur pour de longues périodes de temps.
En observant les cultures de cellules hES sous le microscope, d'abord évaluer la qualité globale et la taille des colonies vue en utilisant une faible puissance (2x ou 5x) objectif. Si les cellules potentiellement différenciés sont observés à faible puissance, de confirmer la morphologie différenciée en utilisant un objectif plus fort grossissement (10x).
Immédiatement après avoir enlevé la différenciation, les bords des colonies peuvent apparaître dentelées ou endommagés. Incuber les colonies pendant la nuit dans un milieu frais pour permettre aux cellules indifférenciées qui restent à recouvrer. Sans l'influence de la différenciation dans la culture, ces colonies restantes continueront à proliférer normalement.
Si possible, commencer des expériences utilisant faible passage de cellules hES. Caryotype des cellules avant et après toutes les expériences majeures.
Material Name | タイプ | Company | Catalogue Number | Comment |
---|---|---|---|---|
D-MEM | Invitrogen | 11965-092 | For MEF medium | |
Fetal Bovine Serum (FBS), Certified | Invitrogen | 16000-044 | Heat-inactivated For MEF medium |
|
D-MEM/F-12 | Invitrogen | 11330-057 | ||
Knockout™ Serum Replacement | Invitrogen | 10828-028 | Pre-screen to ensure support of hES cells | |
bFGF | Stemgent | 03-0002 | Use at [4 ng/mL] final | |
Non-essential Amino Acids | Invitrogen | 11140-050 | ||
L-glutamine | Invitrogen | 25030-081 | 200 mM (100X) Use at [1X] final |
|
PBS | Invitrogen | 14190-250 | Without Ca2+ or Mg2+ | |
Collagenase IV | Invitrogen | 17104-019 | Make a fresh solution at 1 mg/mL in D-MEM/F-12 | |
Gelatin | Sigma | G1890 | Type A, Porcine | |
Fetal Bovine Serum (FBS), Defined | HyClone | SH300.70.01 | For freezing medium | |
6-well plates | Nunc | 140675 | For general culture | |
4-well plates | Nunc | 176740 | For thawing | |
5 mL glass pipets | Fisher | 13-678-27E | Individually wrapped | |
15 mL conical tubes | Corning | 430052 | Polypropylene | |
Pasteur pipettes | Fisher | 13-678-20D | 9” glass |