Этот протокол описывает эффективный метод количественного обнаружения окислительного повреждения ДНК в клетках MCF-7 с помощью технологии ИФА.
Основание 8-оксо-7,8-дигидро-2′-дезоксигуанозина (8-оксо-dG) является преобладающей формой часто наблюдаемого окислительного повреждения ДНК. Нарушение ДНК глубоко влияет на экспрессию генов и служит ключевым фактором в стимулировании нейродегенеративных расстройств, рака и старения. Таким образом, точное количественное определение 8-oxoG имеет клиническое значение при исследовании методологий обнаружения повреждений ДНК. Тем не менее, в настоящее время существующие подходы к обнаружению 8-oxoG создают проблемы с точки зрения удобства, целесообразности, доступности и повышенной чувствительности. Мы использовали метод иммуноферментного анализа (ИФА), высокоэффективный и быстрый колориметрический метод, для выявления вариаций содержания 8-оксо-dG в образцах клеток MCF-7, стимулированных различными концентрациями перекиси водорода (H2O2). Мы определили концентрациюH2,O2 , которая индуцировала окислительное повреждение в клетках MCF-7, обнаружив значение IC50 в клетках MCF-7. Впоследствии мы обрабатывали клетки MCF-7 0, 0,25 и 0,75 мМН2О2 в течение 12 ч и извлекали из клеток 8-оксо-dG. Наконец, образцы были подвергнуты ИФА. После ряда этапов, включая раскладывание планшетов, промывку, инкубацию, развитие цвета, окончание реакции и сбор данных, мы успешно обнаружили изменения в содержании 8-оксо-dG в клетках MCF-7, индуцированные H2O2. С помощью таких усилий мы стремимся создать метод оценки степени окислительного повреждения ДНК в образцах клеток и, таким образом, продвинуть разработку более целесообразных и удобных подходов к обнаружению повреждений ДНК. Это начинание призвано внести значимый вклад в изучение ассоциативного анализа между окислительным повреждением ДНК и различными областями, включая клинические исследования заболеваний и обнаружение токсичных веществ.
Окислительное повреждение ДНК является следствием дисбаланса между образованием активных форм кислорода (АФК) и клеточной системой антиоксидантной защиты1. В первую очередь он включает в себя окисление ДНК пуриновых и пиримидиновых оснований 2,3. Эта окислительная модификация оснований ДНК не только нарушает целостность генома, но и охватывает широкий спектр патологических проблем, включая рак, нейродегенеративные заболевания и сердечно-сосудистыезаболевания. Основание гуанина в ДНК имеет самый низкий восстановительный потенциал и наиболее подвержено окислению6. Таким образом, 8-оксо-7,8-дигидро-2′-дезоксигуанозин (8-оксо-dG) служит первичным маркером для оценки степени окислительного повреждения ДНК 7,8. Точное количественное определение 8-оксо-dG стало критически важным вопросом при рассмотрении различных аспектов возникновения, прогрессирования заболевания и оценки многофакторной окислительной нагрузки9.
Традиционные методы детектирования 8-оксо-дГ, такие как высокоэффективная жидкостная хроматография с электрохимическим детектированием (ВЭЖХ-ЭКД), масс-спектрометрия и связанные с ней методы с использованием дефиса, обладают высокой чувствительностью и специфичностью 10,11,12. Однако эти методы часто имеют сложные эксплуатационные требования и высокую стоимость, что препятствует их широкому применению и практичности при анализе образцов с высокой пропускной способностью. С непрерывным развитием науки и техники появилось множество новых, эффективных и точных методов. Применение этих новых технологий позволяет нам более точно количественно определять уровень 8-оксо-dG и предоставляет более мощные инструменты для углубленного изучения связи между окислительным стрессом и болезнями. Например, исследователи применили технологию нанопор для количественного обнаружения и секвенирования ДНК13, идентификации типов повреждений ДНК с помощью стратегии секвенирования кода14 одним щелчком мыши, разработки методов высокопроизводительного секвенирования и создания биосенсоров на основе 8-оксоG путем интеграции биотин-стрептавидина с ИФА15. Среди них ИФА, с ее признанными преимуществами с точки зрения специфичности, высокой пропускной способности скрининга и стоимости, является одним из идеальных решений для обнаружения 8-оксо-dG. Поэтому крайне важно разработать высокопроизводительный, высокочувствительный, удобный и быстрый метод обнаружения 8-оксо-дГ.
Метод иммуноферментного анализа (ИФА), разработанный в 1971-16 гг., быстро развивался в течение последних 50 лет и в настоящее время стал одним из наиболее часто используемых методов обнаружения в области биологии и медицины 17,18,19. Технология ИФА обладает высокой чувствительностью и специфичностью, коротким временем реакции и простотой в использовании, что делает ее широко признанным выбором для тестирования крупномасштабных образцов и высокопроизводительного анализа20. В результате, ИФА широко используется для количественного или полуколичественного анализа соединений, белков, антител или молекул в клетках 21,22,23. Например, он был использован для обнаружения биомаркеров, связанных с различными заболеваниями, остатками лекарств и биомолекулами24. ИФА можно разделить на четыре основных типа в зависимости от плана эксперимента и принципов25. К таким методам относятся прямой ИФА, непрямой ИФА, сэндвич-ИФА и конкурентный ИФА 26,27. Среди них для исследования в данной статье был выбран сэндвич-ИФА, в котором используются два специфических антитела, одно из которых предназначено для захвата молекулы-мишени, а другое – для детектирования. Экспериментальный принцип сэндвич-ИФА заключается в следующем: сначала специфическое антитело иммобилизуется в лунках микропланшета для захвата интересующего аналита. После добавления стандарта или образца целевой аналит связывается с иммобилизованным антителом. Затем добавляется меченое антитело, которое распознает другой эпитоп на антигене, образуя сэндвич-структуру. После удаления несвязанных антител добавляют субстрат. Под каталитическим действием вторичного антитела происходит цветовая реакция, причем интенсивность цвета положительно коррелирует с концентрацией целевого аналита в образце. Наконец, измеряли оптическую плотность (OD) для определения концентрации образца. Сэндвич ИФА обладает преимуществами повышенной чувствительности и специфичности для целевых образцов, что делает его пригодным для детектирования низких концентраций целевых аналитов и сложных образцов28. Кроме того, полученные результаты могут быть количественно оценены для дальнейшего анализа. Эти факторы делают сэндвич-ИФА широко используемым методом обнаружения как в научных исследованиях, так и в клинических лабораториях29.
Данное исследование было направлено на количественное обнаружение 8-оксо-dG в клетках MCF-7 для определения степени окислительного повреждения ДНК в клетках. Данное исследование состоит из двух основных частей: построения модели окислительного повреждения ДНК клеток MCF-7 и детектирования 8-оксо-dG с помощью ИФА. Во-первых, клетки MCF-7 культивировали in vitro и обрабатывали различными концентрациямиH2O2в течение разного времени. Жизнеспособность клеток оценивали с помощью анализа CCK-8 для определения полумаксимальной ингибирующей концентрации (IC50) H2O2 в клетках MCF-7. На основе значений IC50 были выбраны подходящее время обработки H2O2 и индукционная концентрация. Для извлечения образцов поврежденных окислением клеток MCF-7 были получены образцы клеток и надосадочной жидкости, которые были добавлены в ферментные лунки, ранее покрытые антителами 8-oxo-dG. 8-оксо-dG, присутствующий в образце, будет связываться с антителами, связанными с твердофазным носителем. Затем добавляли антитела 8-оксо-dG, меченные пероксидазой хрена. Реакционную смесь инкубировали при постоянной температуре, чтобы обеспечить полное связывание образца и антитела. Несвязанный фермент удаляли путем промывки, а затем добавляли колориметрическую подложку, которая давала синий цвет. Под действием кислоты раствор становился желтым. Наконец, значение наружного диаметра образцов из реакционной лунки измеряли на длине волны 450 нм, а концентрация 8-оксо-dG в образце была пропорциональна значению наружного диаметра. С помощью стандартной кривой можно рассчитать концентрацию 8-оксо-dG в образце.
Развитие методов ИФА имеет большое значение как для существующих, так и для новых методик обнаружения повреждений ДНК. По сравнению с традиционными методами ВЭЖХ и масс-спектрометрии, этот подход не только удобен в использовании, но и обладает высокой чувствительностью и отвечает треб…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана Инновационной исследовательской группой по науке и технологиям Высшего учебного заведения Цзянсу (2021 г.), Программой Исследовательского центра инженерных технологий Профессионального колледжа Цзянсу (2023 г.), Ключевой технологической программой технологических проектов по обеспечению средств к существованию народа Сучжоу (SKY2021029), Открытым проектом Биобанка клинических ресурсов Цзянсу (TC2021B009), Проектом Государственной ключевой лаборатории радиационной медицины и защиты, Университет Сучжоу (GZK12023013), программы Сучжоуского профессионального медицинского колледжа (SZWZYTD202201) и проект Цин-Лань провинции Цзянсу в Китае (2021, 2022).
0.25% Trypsin-EDTA(1x) | Gibco | 25200-072 | |
Cell Counting Kit-8 | Dojindo | CK04 | |
Cell Counting Plate | QiuJing | XB-K-25 | |
CO2 incubator | Thermo | 51032872 | |
DMEM basic(1X) | Gibco | C11995500BT | |
FBS | PAN | ST30-3302 | |
GraphPad Prism X9 | GraphPad Software | statistical analysis software | |
H2O2(3%) | Jiangxi Caoshanhu Disinfection Co.,Ltd. | 1028348 | |
high-speed centrifuge | Thermo | 9AQ2861 | |
Human 8-oxo-dG ELISA Kit | Zcibio | ZC-55410 | |
L-1000XLS+ Pipettes | Rainin | 17014382 | |
L-20XLS+ Pipettes | Rainin | 17014392 | |
liquid nitrogen tank | Mvecryoge | YDS-175-216 | |
MCF-7 CELL | BNCC | BNCC100137 | |
Multiskan FC microplate photometer | Thermo | 1410101 | |
PBS | Solarbio | P1020 | |
Penicillin-Streptomycin Solution, 100X | Beyotime | C0222 | |
Trinocular live cell microscope | Motic | 1.1001E+12 | |
Ultra-low temperature freezer | Haire | V118574 |