Summary

Иммунокомпетентная модель альвеолы на чипе для изучения иммунных реакций альвеолярной слизистой оболочки

Published: May 31, 2024
doi:

Summary

Модели легких на чипе превосходят традиционные 2D-культуры, имитируя воздушно-жидкостную границу раздела и перфузию эндотелиальных клеток, имитируя кровоток и обмен питательных веществ, что имеет решающее значение для исследований физиологии легких. Это повышает актуальность исследований легких, предлагая динамичную, физиологически точную среду для улучшения понимания и лечения респираторных инфекций.

Abstract

Мы представляем передовую иммунокомпетентную модель легкого на чипе, предназначенную для воспроизведения альвеолярной структуры и функции человека. В этой инновационной модели используется микрофлюидно-перфузионный биочип, который поддерживает воздушно-жидкостную границу, имитирующую окружающую среду в альвеолах человека. Тканевая инженерия используется для интеграции ключевых клеточных компонентов, включая эндотелиальные клетки, макрофаги и эпителиальные клетки, для создания репрезентативной тканевой модели альвеолы. Модель облегчает углубленное изучение иммунных реакций слизистых оболочек на различные патогены, включая вирусы, бактерии и грибки, тем самым улучшая наше понимание иммунитета легких. Основная цель этого протокола состоит в том, чтобы предоставить подробную информацию для создания этой модели альвеолы на чипе в качестве надежной платформы in vitro для изучения инфекций, позволяющей исследователям внимательно наблюдать и анализировать сложные взаимодействия между патогенами и иммунной системой хозяина в легочной среде. Это достигается за счет применения микрофлюидных методов для моделирования ключевых физиологических состояний альвеол человека, включая кровоток и биомеханическую стимуляцию эндотелиальных клеток, а также поддержания границы раздела воздух-жидкость, имеющего решающее значение для реалистичного воздействия воздуха на эпителиальные клетки. Модельная система совместима с рядом стандартизированных анализов, таких как иммунофлуоресцентное окрашивание, профилирование цитокинов и анализ колониеобразующих единиц (КОЕ)/бляшек, что позволяет получить всестороннее представление об иммунной динамике во время инфекции. Альвеола-он-чип состоит из основных типов клеток, включая эпителиальные клетки дистального отдела легких человека (H441) и эндотелиальные клетки пупочной вены человека (HUVECs), разделенные пористыми мембранами из полиэтилентерефталата (ПЭТ), при этом первичные макрофаги, полученные из моноцитов, стратегически расположены между эпителиальным и эндотелиальным слоями. Тканевая модель расширяет возможности препарирования и анализа нюансов факторов, участвующих в легочных иммунных реакциях in vitro. Являясь ценным инструментом, он должен способствовать развитию исследований легких, обеспечивая более точную и динамичную модель in vitro для изучения патогенеза респираторных инфекций и тестирования потенциальных терапевтических вмешательств.

Introduction

Легкое человека играет замечательную роль в дыхании и иммунной защите, со сложными взаимодействиями между иммунными реакциями альвеолярной слизистой оболочки1. Способность альвеол создавать эффективный иммунный ответ жизненно важна для предотвращения инфекций легких и обеспечения здоровья легких. Поскольку легкие постоянно подвергаются воздействию широкого спектра потенциальных рисков, включая бактерии, вирусы, грибки, аллергии и твердые частицы, понимание сложностей иммунных реакций слизистых оболочек альвеол имеет решающее значение для выявления механизмов респираторных инфекций, воспалительных заболеваний и лечения легочныхзаболеваний.

Для изучения инфекций и воспалительных процессов дыхательных путей in vitro требуются модели, которые могли бы точно имитировать альвеолярную среду и иммунные реакции. Двухмерные клеточные культуры и модули животных на протяжении десятилетий использовались в качестве важных инструментов для биомедицинских исследований иммунного ответа легких. Тем не менее, они часто имеют ограничения в своем трансляционном потенциале в человеческих ситуациях. Модели «легкое на чипе» могут способствовать заполнению пробела между традиционными моделями in vitro и in vivo и обеспечить новый подход к изучению специфических иммунных реакций человека 2,3. Модели «легкое на чипе» могут имитировать границу раздела воздух-жидкость, которая необходима клеткам легких для повторения физиологических условий дыхательных путей и разработки более точной и надежной модели ткани. Этот метод культивирования позволяет точно исследовать дифференцировку, функционирование и реакцию клеток на лекарства или стимулы, связанные с заболеванием, in vitro 2.

В этом исследовании мы представляем микрофлюидную модель альвеолы человека в качестве эффективного инструмента для повторения альвеолярной среды человека путем применения перфузии для имитации кровотока и биомеханической стимуляции эндотелиальных клеток, а также включения воздушно-жидкостного интерфейса с эпителиальными клетками, подвергшимися воздействию воздушной фазы4. Мы разработали микрофлюидную перфузную альвеолу на кристалле, которая имитирует физическую структуру и биологические взаимодействия альвеолы человека, уделяя особое внимание границе раздела воздух-жидкость. Этот интерфейс играет решающую роль в дифференцировке эпителиальных клеток дыхательных путей, что имеет важное значение для точного моделирования легочной среды. В модели используются эпителиальные клетки дистального отдела легких человека (H441) и эндотелиальные клетки пупочной вены человека (HUVECs), разделенные пористыми мембранами из полиэтилентерефталата (ПЭТ), с первичными макрофагами, полученными из моноцитов, расположенными между слоями клеток. Эта установка воспроизводит сложное клеточное расположение альвеолы и имеет решающее значение для точного моделирования границы раздела воздух-жидкость, которая является важным фактором физиологической функции легочной ткани.

Обоснование разработки модели распространяется на интеграцию как циркулирующих, так и тканевых резидентных иммунных клеток. Этот подход предназначен для точной имитации воспалительной реакции хозяина на респираторные инфекции человека, обеспечивая динамическую среду для изучения взаимодействий патогена и хозяина. Присутствие макрофагов позволяет исследовать непосредственные иммунные реакции и их взаимодействие с патогенами, отражая первую линию защиты от респираторных инфекций. Кроме того, конструкция платформы биочипа способствует удобному и точному манипулированию как биофизическими, так и биохимическими сигналами, что имеет решающее значение для репликации функции альвеол in vitro. Такая гибкость играет важную роль в анализе факторов, способствующих инфицированию человека, позволяя исследователям корректировать условия в соответствии с различными состояниями заболевания или тестировать потенциальные терапевтические вмешательства. Совместимость платформы с несколькими технологиями считывания, включая передовую микроскопию, микробиологический анализ и биохимический анализ сточных вод, повышает ее полезность. Эти возможности позволяют всесторонне оценить реакцию тканей на инфекции, включая оценку клеточного поведения, пролиферации патогенов и эффективности иммунных реакций.

Мы представляем подробный протокол и методы создания и использования модели альвеолы на чипе человека, ориентированной на репликацию границы раздела воздух-жидкость и интеграцию иммунных клеток для изучения инфекций человека in vitro.

Protocol

Клетки HUVEC выделяют из пуповины и используют до пассажа 4. Первичные моноциты выделяются от здоровых доноров из цельной крови. Исследование было одобрено комитетом по этике Университетской больницы Йены, Йена, Германия (3939-12/13). Согласно Хельсинкской декларации, все лица, сдающие клетки ?…

Representative Results

Изучение морфологических изменений и экспрессии маркерных белков может быть выполнено с помощью иммунофлуоресцентного окрашивания. После совместного культивирования в течение 14 дней сосудистая и эпителиальная стороны анализируются на экспрессию соответствующих клеточных маркеро?…

Discussion

Модель альвеолы на чипе представляет собой многослойную тканевую модель альвеолы человека, объединяющую основные типы клеток нижних дыхательных путей, включая эпителиальные клетки легких, эндотелиальные клетки и макрофаги, культивируемые в органотипической компоновке в ОПЛ со сред?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

H.K. и A.S.M. выражают признательность за финансирование от Leibniz Science-Campus InfectoOptics Jena, финансируемое по линии финансирования Strategic Networking Ассоциации Лейбница. M.A. и A.S.M. были поддержаны проектом IGF IMPROVE, финансируемым Федеральным министерством экономики и энергетики на основании постановления Бундестага Германии. Компания A.S.M также выражает признательность за финансовую поддержку со стороны Кластера передового опыта Balance of the Microverse в рамках Стратегии совершенствования Германии – EXC 2051 – Project-ID 690 390713860.

Materials

Consumables
Cellcounting chamber slides (Countess) Invitrogen C10283
Cell culture Multiwell Plates, 24 Well, steril Greiner Bio-One 662 160
Cell culture Multiwell Plates, 6 Well, steril Greiner Bio-One 657 160
Coverslips (24x40mm; #1.5) Menzel-Gläser 15747592
Eco wipes Dr. Schuhmacher 00-915-REW10003-01
Eppies 2.0 Sarstedt 72.691
Eppis 0.5 Sarstedt 72.699
Eppis 1.5 Sarstedt 72.690.001
Falcons 15mL Greiner Bio-One 188 271-TRI
Falcons 50mL Greiner Bio-One 227 261-TRI
Gauze swab Noba PZN 2417767
Gloves Nitril 3000 Meditrade 1280
Microscope slides Menzel-Gläser AAAA000001##12E
Multiwell Plates 24 Well, sterile Greiner Bio-One 662 160
Pasteur pipettes (glass) 150mm Assistent 40567001
Pasteur pipettes (glass) 230mm Assistent 40567002
Round-bottom tubes (PS, 5mL) Falcon 352052
Safety-Multifly-Set, 20G, 200mm Sarstedt 85.1637.235
Scalpels Dahlhausen 11.000.00.715
Serological pipettes 10mL Greiner Bio-One 607 160-TRI
Serological pipettes 25mL Greiner Bio-One 760 160-TRI
Serological pipettes 2mL Greiner Bio-One 710 160-TRI
Serological pipettes 50mL Greiner Bio-One 768 160-TRI
Serological pipettes 5mL Greiner Bio-One 606 160-TRI
S-Monovette, 7,5ml Z-Gel Sarstedt 1.1602
S-Monovette, 9,0ml K3E Sarstedt 02.1066.001
Softasept N Braun 3887138
T25 flask Greiner Bio-One 690 960
Tips sterile 10µL Greiner Bio-One 771 261
Tips sterile 1250µL Greiner Bio-One 750 261
Tips sterile 300µL Greiner Bio-One 738 261
Tips unsterile 10µL Greiner Bio-One 765 290
Tips unsterile 1000µL Greiner Bio-One 739 291
Tips unsterile 200µL Greiner Bio-One 686 290
Tweezers (Präzisionspinzette DUMONT abgewinkelt Inox08, 5/45, 0,06 mm) Roth K343.1
Chemicals
Descosept AF Dr. Schuhmacher N-20338
Ethanol 96% Nordbrand-Nordhausen 410
Fluorescein isothiocyanate (FITC)-dextran (3-5kDa) Sigma Aldrich FD4-100MG
Fluorescent Mounting Medium Dako S3023
Methanol VWR 20847.295
Saponin Fluka 47036
Tergazyme Alconox 1304-1
Cell culture
Collagen IV Sigma-Aldrich C5533-5MG
Dexametason Sigma-Aldrich D4902
DPBS (-/-) Lonza BE17-516F
DPBS (+/+) Lonza BE17-513F
EDTA solution Sigma-Aldrich E788S
Endothelial Cell Growth Medium Promocell C-22020
Endothelial Cell Growth Medium supplement mix Promocell C-39225
Fetal bovine Serum Sigma-Aldrich E2129-10g
H441 ATCC
Human recombinant GM-CSF Peprotech 300-30
Lidocain Sigma-Aldrich L5647-15G
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Gibco 15140-122 /-163
RPMI Gibco 72400047
Trypane blue stain 0.4% Invitrogen T10282
Trypsin Gibco 15090-046
Primary antibodies
Cadherin-5 / VE-Cadherin (goat) BD 610252
CD68 (rabbit) CellSignaling 76437
E-Cadherin (goat) R&D AF748
SP-A (mouse) Abcam ab51891
Secondary antibodies
AF488 (donkey anti mouse) Invitrogen R37114
AF647 (donkey anti mouse) invitrogen A31571
AF647 (donkey anti rabbit) Invitrogen A31573
Cy3 (donkey anti goat) jackson research 705-165-147
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dilactate) Invitrogen D3571
Microfluidic
Chip Dynamic 42 BC002
Male Luer Lock (small) ChipShop 09-0503-0270-09
Male mini luer plugs, row of four,PP, green Microfluidic chipshop 09-0558-0336-11
Male mini luer plugs, row of four,PP, opaque Microfluidic chipshop 09-0556-0336-09
Male mini luer plugs, row of four,PP, red Microfluidic chipshop 09-0557-0336-10
Plugs Cole Parmer GZ-45555-56
Reservoir 4.5mL ChipShop 16-0613-0233-09
Tubing Dynamic 42 ST001
Equipment
Autoclave Tuttnauer 5075 ELV
Centrifuge Eppendorf 5424
CO2 Incubator Heracell 150i
Countess automated cell counter Invitrogen C10227
Flowcytometer BD FACS Canto II
Freezer (-20 °C) Liebherr LCexv 4010
Freezer (-80 °C) Heraeus Herafreeze HFU 686
Fridge Liebherr LCexv 4010
Heraeus Multifuge Thermo Scientific X3R
Microscope Leica DM IL LED
Orbital shaker Heidolph Reax2000
Peristaltic pump REGLO Digital MS-4/12 ISM597D
Pipettes 10µL Eppendorf Research plus 3123000020
Pipettes 100µL Eppendorf Research plus 3123000047
Pipettes 1000µL Eppendorf Research plus 3123000063
Pipettes 2.5µL Eppendorf Research plus 3123000012
Pipettes 20µL Eppendorf Research plus 3123000039
Pipettes 200µL Eppendorf Research plus 3123000055
Scale Sartorius 6101
Scale Sartorius TE1245
Sterile bench Kojair Biowizard SL-130
Waterbath Julabo SW-20C
Fluorescence Microscope Setup
Apotome.2 Zeiss
Illumination device Zeiss HXP 120 C
Microscope Zeiss Axio Observer 5
Optical Sectioning Zeiss ApoTome
Power Supply Microscope Zeiss Eplax Vp232
Software
ZEN Blue Edition Zeiss

Riferimenti

  1. Mettelman, R. C., Allen, E. K., Thomas, P. G. Mucosal immune responses to infection and vaccination in the respiratory tract. Immunity. 55 (5), 749-780 (2022).
  2. Artzy-Schnirman, A., et al. Advanced in vitro lung-on-chip platforms for inhalation assays: From prospect to pipeline. Eur J Pharma Biopharma. 144, 11-17 (2019).
  3. Huh, D., et al. Reconstituting organ-level lung functions on a chip. Science. 328 (5986), 1662-1668 (2010).
  4. Benam, K. H., et al. Small airway-on-a-chip enables analysis of human lung inflammation and drug responses in vitro. Nat Meth. 13 (2), 151-157 (2016).
  5. Ronaldson-Bouchard, K., et al. A multi-organ chip with matured tissue niches linked by vascular flow. Nat Biomed Eng. 6 (4), 351 (2022).
  6. Deinhardt-Emmer, S., et al. Co-infection with staphylococcus aureus after primary influenza virus infection leads to damage of the endothelium in a human alveolus-on-a-chip model. Biofabrication. 12 (2), 025012 (2020).
  7. Schicke, E., et al. Staphylococcus aureus lung infection results in down-regulation of surfactant protein-a mainly caused by pro-inflammatory macrophages. Microorganisms. 8 (4), 577 (2020).
  8. King, S. D., Chen, S. Y. Recent progress on surfactant protein a: Cellular function in lung and kidney disease development. Am J Physiol Cell Physiol. 319 (2), C316-C320 (2020).
  9. Hoang, T. N. M., et al. Invasive aspergillosis-on-chip: A quantitative treatment study of human aspergillus fumigatus infection. Biomaterials. 283, 121420 (2022).
  10. Yuksel, H., Ocalan, M., Yilmaz, O. E-cadherin: An important functional molecule at respiratory barrier between defence and dysfunction. Front Physiol. 12, 720227 (2021).
  11. Van Roy, F., Berx, G. The cell-cell adhesion molecule e-cadherin. Cell Mol Life Sci. 65 (23), 3756-3788 (2008).

Play Video

Citazione di questo articolo
Koceva, H., Amiratashani, M., Rennert, K., Mosig, A. S. Immunocompetent Alveolus-on-Chip Model for Studying Alveolar Mucosal Immune Responses. J. Vis. Exp. (207), e66602, doi:10.3791/66602 (2024).

View Video