Summary

Kwantificering van de selectiviteit van visuele kenmerken van de optokinetische reflex bij muizen

Published: June 23, 2023
doi:

Summary

Hier beschrijven we een standaardprotocol voor het kwantificeren van de optokinetische reflex. Het combineert virtuele drumstimulatie en video-oculografie en maakt zo een nauwkeurige evaluatie mogelijk van de eigenschapsselectiviteit van het gedrag en de adaptieve plasticiteit ervan.

Abstract

De optokinetische reflex (OKR) is een essentiële aangeboren oogbeweging die wordt geactiveerd door de globale beweging van de visuele omgeving en dient om netvliesbeelden te stabiliseren. Vanwege het belang en de robuustheid ervan is de OKR gebruikt om visueel-motorisch leren te bestuderen en om de visuele functies van muizen met verschillende genetische achtergronden, leeftijden en medicamenteuze behandelingen te evalueren. Hier introduceren we een procedure voor het evalueren van OKR-reacties van muizen met een hoofdfixatie met hoge nauwkeurigheid. Hoofdfixatie kan de bijdrage van vestibulaire stimulatie aan oogbewegingen uitsluiten, waardoor het mogelijk wordt om oogbewegingen te meten die alleen door visuele beweging worden veroorzaakt. De OKR wordt uitgelokt door een virtueel drumsysteem, waarbij een verticaal rooster dat op drie computermonitoren wordt gepresenteerd, horizontaal oscillerend of unidirectioneel met een constante snelheid afdrijft. Met dit virtual reality-systeem kunnen we systematisch visuele parameters zoals ruimtelijke frequentie, temporele/oscillatiefrequentie, contrast, luminantie en de richting van roosters wijzigen, en afstemmingscurven van selectiviteit van visuele kenmerken kwantificeren. High-speed infrarood video-oculografie zorgt voor een nauwkeurige meting van het traject van oogbewegingen. De ogen van individuele muizen zijn gekalibreerd om mogelijkheden te bieden om de OKR’s te vergelijken tussen dieren van verschillende leeftijden, geslachten en genetische achtergronden. De kwantitatieve kracht van deze techniek stelt het in staat om veranderingen in de OKR te detecteren wanneer dit gedrag zich plastisch aanpast als gevolg van veroudering, zintuiglijke ervaring of motorisch leren; Het maakt deze techniek dus een waardevolle aanvulling op het repertoire van instrumenten die worden gebruikt om de plasticiteit van ooggedrag te onderzoeken.

Introduction

Als reactie op visuele stimuli in de omgeving bewegen onze ogen om onze blik te verschuiven, netvliesbeelden te stabiliseren, bewegende doelen te volgen of de foveae van twee ogen uit te lijnen met doelen die zich op verschillende afstanden van de waarnemer bevinden, die van vitaal belang zijn voor een goed zicht 1,2. Oculomotorisch gedrag is op grote schaal gebruikt als aantrekkelijke modellen van sensomotorische integratie om de neurale circuits in gezondheid en ziekte te begrijpen, althans gedeeltelijk vanwege de eenvoud van het oculomotorische systeem3. Bestuurd door drie paar extraoculaire spieren, draait het oog in de kas voornamelijk rond drie overeenkomstige assen: elevatie en depressie langs de transversale as, adductie en abductie langs de verticale as, en intorsie en extorsie langs de anteroposterieure as 1,2. Zo’n eenvoudig systeem stelt onderzoekers in staat om het oculomotorische gedrag van muizen gemakkelijk en nauwkeurig te evalueren in een laboratoriumomgeving.

Een belangrijk oculomotorisch gedrag is de optokinetische reflex (OKR). Deze onwillekeurige oogbeweging wordt veroorzaakt door langzame driften of verschuivingen van beelden op het netvlies en dient om netvliesbeelden te stabiliseren terwijl het hoofd van een dier of zijn omgeving beweegt 2,4. De OKR, als gedragsparadigma, is om verschillende redenen interessant voor onderzoekers. Ten eerste kan het betrouwbaar worden gestimuleerd en nauwkeurig worden gekwantificeerd 5,6. Ten tweede zijn de procedures voor het kwantificeren van dit gedrag relatief eenvoudig en gestandaardiseerd en kunnen ze worden toegepast om de visuele functies van een groot cohort dieren te evalueren7. Ten derde is dit aangeboren gedrag zeer plastisch 5,8,9. De amplitude kan worden versterkt wanneer herhaalde retinale slips gedurende lange tijd optreden 5,8,9, of wanneer de vestibulaire oculaire reflex (VOR) van zijn werkpartner, een ander mechanisme voor het stabiliseren van netvliesbeelden veroorzaakt door vestibulaire input2, is aangetast5. Deze experimentele paradigma’s van OKR-potentiëring stellen onderzoekers in staat om de circuitbasis te onthullen die ten grondslag ligt aan oculomotorisch leren.

In eerdere studies zijn voornamelijk twee niet-invasieve methoden gebruikt om de OKR te evalueren: (1) video-oculografie in combinatie met een fysieke trommel 7,10,11,12,13 of (2) willekeurige bepaling van hoofddraaien in combinatie met een virtuele trommel6,14,15,16. Hoewel hun toepassingen vruchtbare ontdekkingen hebben opgeleverd bij het begrijpen van de moleculaire en circuitmechanismen van oculomotorische plasticiteit, hebben deze twee methoden elk enkele nadelen die hun vermogen beperken om de eigenschappen van de OKR kwantitatief te onderzoeken. Ten eerste maken fysieke trommels, met gedrukte patronen van zwarte en witte strepen of stippen, het niet mogelijk om gemakkelijk en snel visuele patronen te veranderen, wat de meting van de afhankelijkheid van de OKR van bepaalde visuele kenmerken, zoals ruimtelijke frequentie, richting en contrast van bewegende roosters, grotendeels beperkt 8,17. In plaats daarvan kunnen tests van de selectiviteit van de OKR voor deze visuele kenmerken baat hebben bij geautomatiseerde visuele stimulatie, waarbij visuele kenmerken gemakkelijk van proef tot proef kunnen worden gewijzigd. Op deze manier kunnen onderzoekers systematisch het OKR-gedrag in de multidimensionale visuele parameterruimte onderzoeken. Bovendien rapporteert de tweede methode van de OKR-test alleen de drempels van visuele parameters die waarneembare OKR’s veroorzaken, maar niet de amplitudes van oog- of hoofdbewegingen 6,14,15,16. Het gebrek aan kwantitatief vermogen verhindert dus het analyseren van de vorm van afstemmingscurven en de geprefereerde visuele kenmerken, of het detecteren van subtiele verschillen tussen individuele muizen in normale en pathologische omstandigheden. Om de bovenstaande beperkingen te overwinnen, waren video-oculografie en geautomatiseerde virtuele visuele stimulatie gecombineerd om het OKR-gedrag in recente studies te testen 5,17,18,19,20. Deze eerder gepubliceerde studies boden echter niet genoeg technische details of stapsgewijze instructies, en daarom is het voor onderzoekers nog steeds een uitdaging om zo’n OKR-test voor hun eigen onderzoek op te zetten.

Hier presenteren we een protocol om de selectiviteit van visuele kenmerken van OKR-gedrag onder fotopische of scotopische omstandigheden nauwkeurig te kwantificeren met de combinatie van video-oculografie en geautomatiseerde virtuele visuele stimulatie. Muizen zijn met hun hoofd gefixeerd om de oogbewegingen te vermijden die worden opgeroepen door vestibulaire stimulatie. Een hogesnelheidscamera wordt gebruikt om de oculaire bewegingen vast te leggen van muizen die bewegende roosters met veranderende visuele parameters bekijken. De fysieke grootte van de oogbollen van individuele muizen wordt gekalibreerd om de nauwkeurigheid van het afleiden van de hoek van oogbewegingen te garanderen21. Deze kwantitatieve methode maakt het mogelijk om OKR-gedrag tussen dieren van verschillende leeftijden of genetische achtergronden te vergelijken, of om de verandering ervan te volgen die wordt veroorzaakt door farmacologische behandelingen of visueel-motorisch leren.

Protocol

Alle experimentele procedures die in deze studie zijn uitgevoerd, zijn goedgekeurd door de Biological Sciences Local Animal Care Committee, in overeenstemming met de richtlijnen die zijn opgesteld door de University of Toronto Animal Care Committee en de Canadian Council on Animal Care. 1. Implantatie van een hoofdstang bovenop de schedel OPMERKING: Om de bijdrage van VOR-gedrag aan de oogbewegingen te voorkomen, wordt de kop van de muis geïmmobilise…

Representative Results

Met de hierboven beschreven procedure evalueerden we de afhankelijkheid van de OKR van verschillende visuele kenmerken. De hier getoonde voorbeeldsporen zijn afgeleid met behulp van de analysecodes in Aanvullend coderingsbestand 1, en het onbewerkte voorbeeldbestand met sporen is te vinden in Aanvullend coderingsbestand 2. Wanneer het trommelrooster in een sinusvormige baan (0,4 Hz) dreef, volgde het oog van het dier automatisch de beweging van het rooster op een vergelijkbare oscilleren…

Discussion

De hier gepresenteerde methode van de OKR-gedragstest biedt verschillende voordelen. Ten eerste lost computergegenereerde visuele stimulatie de intrinsieke problemen van fysieke drums op. Rekening houdend met het probleem dat fysieke drums het systematische onderzoek van ruimtelijke frequentie-, richtings- of contrastafstemmingniet ondersteunen 8, maakt de virtuele drum het mogelijk om deze visuele parameters per proef te wijzigen, waardoor een systematische en kwantitatieve analyse van de kenmerk…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We zijn Yingtian He dankbaar voor het delen van gegevens over het afstemmen van richtingen. Dit werk werd ondersteund door subsidies van de Canadian Foundation of Innovation en Ontario Research Fund (CFI/ORF-project nr. 37597), NSERC (RGPIN-2019-06479), CIHR (Project Grant 437007) en Connaught New Researcher Awards.

Materials

2D translational stage Thorlabs XYT1
Acrylic resin Lang Dental B1356 For fixing headplate on skull and protecting skull
Bupivacaine STERIMAX ST-BX223 Bupivacaine Injection BP 0.5%. Local anesthesia
Carprofen RIMADYL 8507-14-1 Analgesia
Compressed air Dust-Off
Eye ointment Alcon Systane For maintaining moisture of eyes
Graphic card NVIDIA Geforce GTX 1650 or Quadro P620. For generating single screen among three monitors
Heating pad Kent Scientific HTP-1500 For maintaining body temperature
High-speed infrared (IR) camera Teledyne Dalsa G3-GM12-M0640 For recording eye rotation
IR LED Digikey PDI-E803-ND For CR reference and the illumination of the eye
IR mirror Edmund optics 64-471 For reflecting image of eye
Isoflurane FRESENIUS KABI CP0406V2
Labview National instruments version 2014 eye tracking
Lactated ringer BAXTER JB2324 Water and energy supply
Lidocaine and epinephrine mix Dentsply Sirona 82215-1 XYLOCAINE. Local anesthesia
Luminance Meter Konica Minolta LS-150 for calibration of monitors
Matlab MathWorks version xxx analysis of eye movements
Meyhoefer Curette World Precision Instruments 501773 For scraping skull and removing fascia
Microscope calibration slide Amscope MR095 to measure the magnification of video-oculography
Monitors Acer  B247W Visual stimulation
Neutral density filter Lee filters 299 to generate scotopic visual stimulation
Nigh vision goggle Alpha optics AO-3277 for scotopic OKR
Photodiode Digikey TSL254-R-LF-ND to synchronize visual stimulation and video-oculography
Pilocarpine hydrochloride Sigma-Aldrich P6503
Post Thorlabs TR1.5
Post holder Thorlabs PH1
PsychoPy open source software version xxx visual stimulation toolkit
Scissor RWD S12003-09 For skin removal
Superglue Krazy Glue Type: All purpose. For adhering headplate on the skull

Riferimenti

  1. Gerhard, D. Neuroscience. 5th Edition. Yale Journal of Biology and Medicine. , (2013).
  2. Distler, C., Hoffmann, K. P. . The Oxford Handbook of Eye Movement. , 65-83 (2011).
  3. Sereno, A. B., Bolding, M. S. . Executive Functions: Eye Movements and Human Neurological Disorders. , (2017).
  4. Giolli, R. A., Blanks, R. H. I., Lui, F. The accessory optic system: basic organization with an update on connectivity, neurochemistry, and function. Progress in Brain Research. 151, 407-440 (2006).
  5. Liu, B. H., Huberman, A. D., Scanziani, M. Cortico-fugal output from visual cortex promotes plasticity of innate motor behaviour. Nature. 538 (7625), 383-387 (2016).
  6. Prusky, G. T., Alam, N. M., Beekman, S., Douglas, R. M. Rapid quantification of adult and developing mouse spatial vision using a virtual optomotor system. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 45 (12), 4611-4616 (2004).
  7. Stahl, J. S., van Alphen, A. M., De Zeeuw, C. I. A comparison of video and magnetic search coil recordings of mouse eye movements. Journal of Neuroscience Methods. 99 (1-2), 101-110 (2000).
  8. Faulstich, B. M., Onori, K. A., du Lac, S. Comparison of plasticity and development of mouse optokinetic and vestibulo-ocular reflexes suggests differential gain control mechanisms. Vision Research. 44 (28), 3419-3427 (2004).
  9. Katoh, A., Kitazawa, H., Itohara, S., Nagao, S. Dynamic characteristics and adaptability of mouse vestibulo-ocular and optokinetic response eye movements and the role of the flocculo-olivary system revealed by chemical lesions. Proceedings of the National Academy of Sciences. 95 (13), 7705-7710 (1998).
  10. Cahill, H., Nathans, J. The optokinetic reflex as a tool for quantitative analyses of nervous system function in mice: application to genetic and drug-induced variation. PLoS One. 3 (4), 2055 (2008).
  11. Cameron, D. J., et al. The optokinetic response as a quantitative measure of visual acuity in zebrafish. Journal of Visualized Experiments. (80), 50832 (2013).
  12. de Jeu, M., De Zeeuw, C. I. Video-oculography in mice. Journal of Visualized Experiments. (65), e3971 (2012).
  13. Kodama, T., du Lac, S. Adaptive acceleration of visually evoked smooth eye movements in mice. The Journal of Neuroscience. 36 (25), 6836-6849 (2016).
  14. Doering, C. J., et al. Modified Ca(v)1.4 expression in the Cacna1f(nob2) mouse due to alternative splicing of an ETn inserted in exon 2. PLoS One. 3 (7), e2538 (2008).
  15. Shi, C., et al. Optimization of optomotor response-based visual function assessment in mice. Scientific Reports. 8 (1), 9708 (2018).
  16. Waldner, D. M., et al. Transgenic expression of Cacna1f rescues vision and retinal morphology in a mouse model of congenital stationary night blindness 2A (CSNB2A). Translational Vision Science & Technology. 9 (11), 19 (2020).
  17. Tabata, H., Shimizu, N., Wada, Y., Miura, K., Kawano, K. Initiation of the optokinetic response (OKR) in mice. Journal of Vision. 10 (1), 1-17 (2010).
  18. Al-Khindi, T., et al. The transcription factor Tbx5 regulates direction-selective retinal ganglion cell development and image stabilization. Current Biology. 32 (19), 4286-4298 (2022).
  19. Harris, S. C., Dunn, F. A. Asymmetric retinal direction tuning predicts optokinetic eye movements across stimulus conditions. eLife. 12, e81780 (2023).
  20. van Alphen, B., Winkelman, B. H., Frens, M. A. Three-dimensional optokinetic eye movements in the C57BL/6J mouse. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 51 (1), 623-630 (2010).
  21. Stahl, J. S. Calcium channelopathy mutants and their role in ocular motor research. Annals of the New York Academy of Sciences. 956, 64-74 (2002).
  22. Endo, S., et al. Dual involvement of G-substrate in motor learning revealed by gene deletion. Proceedings of the National Academy of Sciences. 106 (9), 3525-3530 (2009).
  23. Thomas, B. B., Seiler, M. J., Sadda, S. R., Coffey, P. J., Aramant, R. B. Optokinetic test to evaluate visual acuity of each eye independently. Journal of Neuroscience Methods. 138 (1-2), 7-13 (2004).
  24. Burroughs, S. L., Kaja, S., Koulen, P. Quantification of deficits in spatial visual function of mouse models for glaucoma. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 52 (6), 3654-3659 (2011).
  25. Wakita, R., et al. Differential regulations of vestibulo-ocular reflex and optokinetic response by β- and α2-adrenergic receptors in the cerebellar flocculus. Scientific Reports. 7 (1), 3944 (2017).
  26. Dehmelt, F. A., et al. Spherical arena reveals optokinetic response tuning to stimulus location, size, and frequency across entire visual field of larval zebrafish. eLife. 10, e63355 (2021).
  27. Magnusson, M., Pyykko, I., Jantti, V. Effect of alertness and visual attention on optokinetic nystagmus in humans. American Journal of Otolaryngology. 6 (6), 419-425 (1985).
  28. Collins, W. E., Schroeder, D. J., Elam, G. W. Effects of D-amphetamine and of secobarbital on optokinetic and rotation-induced nystagmus. Aviation, Space, and Environmental Medicine. 46 (4), 357-364 (1975).
  29. Reimer, J., et al. Pupil fluctuations track fast switching of cortical states during quiet wakefulness. Neuron. 84 (2), 355-362 (2014).
  30. Sakatani, T., Isa, T. PC-based high-speed video-oculography for measuring rapid eye movements in mice. Neuroscience Research. 49 (1), 123-131 (2004).
  31. Sakatani, T., Isa, T. Quantitative analysis of spontaneous saccade-like rapid eye movements in C57BL/6 mice. Neuroscience Research. 58 (3), 324-331 (2007).
  32. Vinck, M., Batista-Brito, R., Knoblich, U., Cardin, J. A. Arousal and locomotion make distinct contributions to cortical activity patterns and visual encoding. Neuron. 86 (3), 740-754 (2015).
  33. Bradley, M. M., Miccoli, L., Escrig, M. A., Lang, P. J. The pupil as a measure of emotional arousal and autonomic activation. Psychophysiology. 45 (4), 602-607 (2008).
  34. Hess, E. H., Polt, J. M. Pupil size as related to interest value of visual stimuli. Science. 132 (3423), 349-350 (1960).
  35. Di Stasi, L. L., Catena, A., Canas, J. J., Macknik, S. L., Martinez-Conde, S. Saccadic velocity as an arousal index in naturalistic tasks. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 37 (5), 968-975 (2013).

Play Video

Citazione di questo articolo
Liu, J., Liu, B. Quantification of Visual Feature Selectivity of the Optokinetic Reflex in Mice. J. Vis. Exp. (196), e65281, doi:10.3791/65281 (2023).

View Video