ここでは、ヒト誘導多能性幹細胞(HiPSC)ニューロンに対する集束超音波の神経調節効果のモニタリングと定量化を可能にするハイスループットシステムを使用するためのプロトコルを紹介します。
集束超音波(FUS)の神経調節効果は動物モデルで実証されており、FUSはヒトの運動障害や精神障害の治療に使用されています。しかし、FUSの成功にもかかわらず、ニューロンに対する効果の根底にあるメカニズムは十分に理解されておらず、FUSパラメータの調整による治療の最適化を困難にしています。この知識のギャップを埋めるために、ヒト人工多能性幹細胞(HiPSC)から培養した神経細胞を用いて、 in vitro でヒトの神経細胞を研究しました。ヒトiPS細胞を用いることで、生理学的状態と病理学的状態の両方におけるヒト特異的な神経細胞の挙動を研究することができます。本報告では、HiPS細胞ニューロンに対するFUSの神経調節効果のモニタリングと定量化を可能にするハイスループットシステムを使用するためのプロトコルを提示する。FUSのパラメータを変化させ、薬剤や遺伝子の改変によってHiPS細胞の神経細胞を操作することで、研究者は神経応答を評価し、HiPS細胞の神経細胞に対するFUSの神経調節効果を解明することができます。この研究は、さまざまな神経疾患や精神疾患に対する安全で効果的なFUSベースの治療法の開発に大きな影響を与える可能性があります。
集束超音波(FUS)は、サブミリメートルの分解能1,2,3でセンチメートルレベルの深さでの非侵襲的刺激を可能にする有望な神経調節モダリティです。これらの長所にもかかわらず、FUSの臨床的影響は、その作用機序に関する知識の欠如が一因であり、限定的である。確固たる理論的基盤がなければ、研究者や臨床医は、さまざまな条件下で個々の患者の特定のニーズを満たすように治療法を調整することが困難になります。Yooらが提唱した著名な理論4は、機械感受性イオンチャネルがニューロンの活性化に関与していることを示唆しています。しかし、この理論では、これらのチャネルを欠くヒト脳ニューロンにおけるFUSの活性化を説明できない5。この曖昧さは、治療結果を最適化するためのFUSパラメータの調整を妨げるため、臨床でのFUSの利用を制限します。
これまでの関連研究では、FUSを支える生理学的メカニズムを調査し、最適な刺激パラメータを決定するために、さまざまなアプローチが採用されています。このプロセスにおける重要なステップは、フィードバックとしてのニューロン応答のモニタリングであり、これは、カルシウムイオンイメージング4、光学イメージング1、およびex vivo電気生理学的記録(例えば、筋電図6または皮膚神経電気生理学7)などのイオンゲートモニタリングを含む方法によって達成することができる。しかし、これらの研究のほとんどは、ヒト以外のニューロンやin vivoアプローチを使用しているため、コントロールが最適ではないために、さらなるばらつきが生じる可能性があります。対照的に、電極を使用してin vitroヒト人工多能性幹細胞(HiPSC)ニューロンの神経シグナルを測定すると、より高感度な測定が可能になり、実験環境をより詳細に制御できます。本研究では、図1に示すように、微小電極アレイ(MEA)を用いて、FUS刺激後のHiPS細胞ニューロンの電気的応答を測定するin vitroシステムを開発しました。このシステムにより、コミュニティの研究者は、超音波パラメータ(周波数、バースト長、強度など)を変化させたときにニューロンの応答を監視できます。さらに、このシステムは、ニューロンのイオンチャネル機能を遺伝的および薬学的に操作できるため、物理的刺激(温度、圧力、キャビテーションなど)に対するニューロンの感受性を高度に制御することを可能にします8,9(例:イオンチャネルを阻害するためにガドリニウムを使用する)10,11,12。.この分子レベルの制御は、FUSの神経調節効果の背後にあるメカニズムの解明に役立つ可能性があります。
この論文では、FUSニューロモジュレーション中のHiPS細胞のニューロン活動を記録するために使用できる新しい方法について説明しています。このプロトコルは、さまざまなFUSトランスデューサやMEAシステムに一般化できます。記載されたプロトコルで観察された結果を再現するには、研究者はトランスデューサーの焦点がMEAウェルの底部の面積よりも大きいことを確認する必要があります。さらに、異なる神経細胞株を使用する場合は、フィルターパラメータをウェル内の細胞の予想される周波数応答に調整する必要があります。代表的な結果が得られない場合は、前述のパラメータ(バースト長、強度、デューティサイクルなど)の変更を検討する必要があります。
この研究は、FUS刺激後の発火率の増加を実証したが、結論を出す前に、この発見の再現性を実証するために、より多くのデータを収集する必要がある。このプロトコルは、通常、微小電極電流信号の直接記録に起因する弱点を持つMEAシステムの制限を受け継いでいます。ニューロンに直接触れると感度は向上しますが、細胞が変化し、測定精度に影響を与える可能性があります。さらに、ウェルのサイズが小さいため、我々のシステムには末梢組織が含まれておらず、これも神経調節に関与している可能性がある17。これにより、このセットアップから導き出された結論の in vivo 環境への適用が制限される可能性があります。より複雑なネットワーク応答を研究するには、より高チャネル密度のMEAシステムを設計して感度を向上させる必要があります18。この提案されたシステムのためのいくつかの将来の方向性が特定されており、その中には、トランスデューサを保持し、正確な配置を確実にするための3Dガントリーの使用が含まれる19。個々のニューロンを分類するためにスパイクソーティングアルゴリズム20 を利用することを含む、後処理アルゴリズムに関してさらなる改善がなされ得る。このプロセスは、FUSのメカニズムに関する将来の研究において、マルチユニットニューロンの応答を解きほぐすのに有益です。最も重要なことは、そのメカニズムを解明するために、化学的刺激、電気的刺激、光学的刺激などの刺激のモダリティを追加することが不可欠です。これらの方法は、特異的イオンチャネル15 を阻害したり、膜特性21を修飾したりするなどして、ニューロンの特性および挙動を変化させることができる。仮説を立てたシグナル伝達経路内の主要な因子を調節することにより、研究者は制御された環境における各因子の寄与を特定し、最終的には複雑な相互作用に光を当てることができます。
電気刺激22 は、神経調節のための最も確立された技術の1つであり、臨床および研究の現場での応用に成功した長い歴史があります。対照的に、FUSとオプトジェネティクス23 は、近年注目を集めている比較的新しいモダリティです。FUSの主な利点は、その非侵襲性と、電気刺激やオプトジェネティクスなどの他の技術では到達が困難な深さのニューロンを刺激する能力です。ただし、オプトジェネティクス24と同様に、FUSには、波の伝播と関連するニューロン応答のモデル化に関連するいくつかの制限があります。生体 内で 組織の不均一な音響特性の複雑さを捉えることは困難な場合があり、圧力場、ひいてはニューロンの応答に不確実性をもたらします。これらの特性を正確にモデル化することの難しさは、特定の現実世界のアプリケーション向けに技術を最適化する際の課題となります。本質的な複雑さは、制御された音響強度条件下での応答の直接的な研究を可能にするため、この研究のような in vitro システムの重要性を強調しています。
結論として、このシステムは、ヒトニューロンに対するFUSの神経調節効果を研究するためのハイスループットな in vitro プラットフォームを提供します。このシステムでは、制御された環境でさまざまなレベルと種類の刺激にさらされたときのヒトニューロンからの電気的応答を測定することにより、FUSの作用機序を調べることができます。したがって、この分野で一般的に使用されるヒトおよび動物モデルに貴重な補助ツールを提供します。
The authors have nothing to disclose.
Amir Manbachi と Nitish Thakor は、国防高等研究計画局 (DARPA N660012024075) からの資金援助に感謝しています。さらに、アミール・マンバチは、米国国立衛生研究所(NIH)の国立トランスレーショナルサイエンス推進センター(NCATS)が運営するジョンズ・ホプキンス大学臨床トランスレーショナルリサーチ研究所(ICTR)の臨床研究奨学生プログラム(KL2)からの資金援助に感謝しています。Nitish Thakorは、米国国立衛生研究所(NIH)からの資金援助(R01 HL139158-01A1およびR01 HL071568-15)に感謝しています。
MEA System | Axion Biosystem Inc. | Maestro Edge | Sampling Rate: 11500 Hz |
MEA Plate | Axion Biosystem Inc. | CytoView MEA | Electrode and Well: 16 electrodes in 24 wells |
Well plate Interface | Amcor Inc. | Parafilm PM996; P7793 | Thickness: 127 µm |
CO2 Tank and Regulator for culture | AirGas Inc./ Harris Inc. | 9296NC | Concentration: 5% |
Culture Media | ThermoFisher Inc. | Laminin; 23017-015 | Concentration: 1 µg/mL |
HiPSC Neurons | Peprotech | CIPS and GM01582 Derived; 450-10 | Concentration: 10 ng/mL (Refer Taga et al [2021]13) |
Transducer | Sonic Concepts Inc. | CTX250; 008 | Center Frequency: 250 kHz |
Matching Network | Sonic Concepts Inc. | CTX250; NFS102v2 | Impedance: 50 Ω |
Transducer Power Output (TPO) | Sonic Concepts Inc. | Version 4.1; 020 | Frequency: From 250 kHz to 2.5 MHz |
Membrane | McMaster Inc. | Silicone Rubber; 5542N115 | Thickness: 0.0127 cm |
Coupling Gel | Parker Laboratory Inc. | Aquasonic 100; B08DDWG GXB | Viscosity: 130,000–185,000 cops |
Connection to Probe holder | McMaster Inc. | Steal Threaded Rod; 90322A661 | Length: 1–1/2" Long |
Centrifuge | ThermoFisher Inc. | Sorvall Legend X1R; 75004261 | Max acceleration: 10–25,830 x g |
Hydrophone | Sonic Concepts Inc. | Y-104; 009 | Range: 50 kHz–1.9 MHz |
Water Tank | Sonic Concepts Inc. | WT | Size: 30 cm x 30 cm x 30 cm |
Water Conditioning Unit | Sonic Concepts Inc. | WCU; SN006 | Flow Velocity: 50 mL/s maximum |
Oscilloscope | Rohde-Schwarz Inc. | RTC1002 | Sampling rate: Up to 50 MHz |
Stage | Sonic Concepts Inc. | MicroStage; 2 | Accuracy: 1 µm |
Thermochromic sheet | TIPTEMP Inc. | Liquid Crystal Sheet; TLCSEN337 | Range: 22–24 °C |
Computer | Microsoft Surface | Surface Pro | CPU i5 1035G4: 3.7 GHz |
Data Transfer Software | Mathworks Inc. | MATLAB | Version 2021b |
Processing Software | Python Software Foundation | Python | Version 3.7.10 |