Summary

En enkel teknikk for å analysere lokomotorisk aktivitet i Drosophila

Published: February 24, 2023
doi:

Summary

Den nåværende protokollen vurderer den lokomotoriske aktiviteten til Drosophila ved å spore og analysere bevegelsen av fluer i en håndlaget arena ved hjelp av åpen kildekode-programvare Fiji, kompatibel med plugins for å segmentere piksler i hver ramme basert på HD-videoopptak for å beregne parametere for hastighet, avstand, etc.

Abstract

Drosophila melanogaster er en ideell modellorganisme for å studere ulike sykdommer på grunn av sin overflod av avanserte genetiske manipulasjonsteknikker og ulike atferdsegenskaper. Identifisering av atferdsmangel i dyremodeller er et avgjørende mål på sykdommens alvorlighetsgrad, for eksempel i nevrodegenerative sykdommer der pasienter ofte opplever nedsatt motorisk funksjon. Men med tilgjengeligheten av ulike systemer for å spore og vurdere motoriske underskudd i fluemodeller, for eksempel narkotikabehandlede eller transgene individer, mangler det fortsatt et økonomisk og brukervennlig system for presis evaluering fra flere vinkler. En metode basert på AnimalTracker applikasjonsprogrammeringsgrensesnitt (API) er utviklet her, som er kompatibel med Fiji bildebehandlingsprogram, for systematisk å evaluere bevegelsesaktivitetene til både voksne og larveindivider fra innspilt video, og dermed muliggjøre analyse av deres sporingsadferd. Denne metoden krever bare et HD-kamera og en perifer maskinvareintegrasjon for å registrere og analysere atferd, noe som gjør det til en rimelig og effektiv tilnærming for screening av fluemodeller med transgene eller miljømessige atferdsmangler. Eksempler på atferdstester ved bruk av farmakologisk behandlede fluer er gitt for å vise hvordan teknikkene kan oppdage atferdsendringer hos både voksne fluer og larver på en svært repeterbar måte.

Introduction

Drosophila melanogaster gir en utmerket modellorganisme for å undersøke cellulære og molekylære funksjoner i nevronale sykdomsmodeller opprettet av genmodifisering1, medikamentell behandling2 og senescens3. Den høye bevaringen av biologiske veier, fysiske egenskaper og sykdomsassosierte homologgener mellom mennesker og Drosophila gjør fruktfluen til en ideell etterligning fra molekylært til atferdsnivå4. I mange sykdomsmodeller er atferdsmangel en viktig indeks, og gir en nyttig modell for ulike menneskelige nevropatier 5,6. Drosophila brukes nå til å studere flere menneskelige sykdommer, nevroutvikling og nevrodegenerative sykdommer som Parkinsons sykdom og amyotrofisk lateralsklerose 7,8. Påvisning av sykdomsmodellenes motoriske evne er avgjørende for å forstå den patogene utviklingen og kan gi en fenotypisk korrelasjon til de molekylære mekanismene som ligger til grunn for sykdomsprosessen.

Nylig har kommersielt tilgjengelige programvareverktøy og kostnadseffektive programmer blitt utviklet for Drosophila lokomotoriske deteksjonsstrategier, for eksempel testing med høy gjennomstrømning i grupperte fluer9,10 og måling av bevegelse i sanntid11,12. En slik konvensjonell tilnærming er rapid interactive negative geotaxis (RING), også kalt klatreanalysen, som inkluderer flere kanaler som gjør det mulig å inneholde en stor fluepopulasjon med samme kjønn og alder, noe som reduserer variasjonen mens data samlerinn 9,13. En annen pre-testing metode for å analysere lokomotorisk oppførsel er TriKinetics Drosophila aktivitet monitor (DAM), en enhet som bruker flere stråler for å oppdage fly aktivitet bevegelse i et tynt glassrør 14. Enheten registrerer posisjon kontinuerlig, noe som representerer automatisert bevegelse ved å beregne stråleovergangene for å studere aktiviteten og døgnrytmen til fluer over en lengre periode15. Selv om disse metodene har blitt mye brukt i å analysere atferdsdefekter i fruktfluer for å bestemme endringer i atferdsbevegelse, krever de alltid spesielt testutstyr eller komplekse analyseprosesser, og begrenser deres anvendelse i noen modeller med en begrenset, enkel enhet. Gruppebaserte strategier for testing av den voksne Drosophila, som FlyGrAM11 og Drosophila-øyanalysen 10, implementerer sosial rekruttering og individuell sporing i et forhåndsdefinert område. Likevel kan sosial individuell begrensning i trossede områder ha en negativ effekt på identifikasjoner i bildene, forårsaket av kollisjon eller overlapping av fluer. Selv om noen åpen kildekode-materialbaserte metoder, som TRex16, MARGO 12 og FlyPi17, har en nødsituasjon, kan de spore fluene raskt med fleksibel bruk i atferdstesting. Disse testmetodene er knyttet til forseggjorte eksperimentelle apparatinstallasjoner, spesielle programvarekrav eller profesjonelle dataspråk. For larver er måling av total tilbakelagt avstand over antall gittergrenselinjer per tidsenhet18, eller grovtelling av kroppsveggkontraksjonene for individer manuelt19, de dominerende metodene for å vurdere deres lokomotoriske evne. På grunn av mangel på presisjon i utstyr eller enheter og analysemetoder, kan noen atferdsbevegelse av larver unnslippe deteksjon, noe som gjør det vanskelig å nøyaktig vurdere atferdsbevegelse, spesielt fin bevegelse15.

Den nåværende utviklede metoden benytter AnimalTracker applikasjonsprogrammeringsgrensesnitt (API), kompatibelt med Fiji (ImageJ) bildebehandlingsprogram, for systematisk å evaluere den lokomotoriske aktiviteten til både voksne og larvefluer ved å analysere deres sporingsadferd fra HD-videoer (HD). Fiji er en åpen kildekode-programvare ImageJ-distribusjon som kan kombinere robuste programvarebiblioteker med mange skriptspråk, noe som resulterer i rask prototyping av bildebehandlingsalgoritmer, noe som gjør den populær blant biologer for sine bildeanalysemuligheter20. I den nåværende tilnærmingen utnyttes Fijis integrering i AnimalTracker API til å utvikle en unik Drosophila-atferdsanalyse med personlig algoritmeinnsetting, og gir et nyttig trinn for detaljert dokumentasjon og opplæringsprogrammer for å støtte robuste analytiske evner for lokomotorisk oppførsel (figur 1). For å omgå komplikasjonen av objektive identifikasjoner i bildene forårsaket av kollisjon eller overlapping av fluer, er hver arena begrenset til å være vert for bare en flue. Ved vurdering av sporingspresisjonen til tilnærmingen ble det implementert for å spore og kvantifisere de lokomotoriske bevegelsene til Drosophila som ble administrert med det giftige stoffet rotenon, som vanligvis brukes til dyremodeller av Parkinsons sykdom, og til slutt oppdaget bevegelsessvikt i narkotikabehandlingen21. Denne metoden, som benytter åpen kildekode og fri programvare, krever ikke høykostinstrumentering, og kan nøyaktig og reproduserbart analysere Drosophila atferdsbevegelse.

Protocol

W1118 voksne fluer og tredje instar larver ble brukt til denne studien. 1. Eksperimentell forberedelse MERK: En åpen arena for Drosophila bevegelsessporing er laget medacolorless og luktfri silikagel. Bland reagens A og reagens B i forholdet 1:10, i henhold til produsentens instruksjoner for silikasettet (se materialfortegnelse). Sørg for at natriumbikarbonat tilsettes til blandingen ved omr?…

Representative Results

I denne studien ble lokomotoriske underskudd hos voksne fluer og tredje instar larver behandlet med rotenon undersøkt og sammenlignet i motorisk aktivitet med en kontrollflue matet med medikamentet løsningsmidlet dimetylsulfoksid (DMSO). Behandling med rotenon i Drosophila har vist seg å forårsake dopaminergt nevrontap i hjernen22 og føre til betydelige lokomotoriske utfall23. Som vist i figur 11 og figur 12 har voksne fluer og tr…

Discussion

Vi har utviklet en metode, basert på open source-materialet AnimalTracker API som er kompatibelt med Fijis bildebehandlingsprogram, som kan gjøre det mulig for forskere å systematisk evaluere bevegelsesaktivitet ved å spore både voksne og individuelle larvefluer. AnimalTracke er et verktøy skrevet i Java som enkelt kan integreres i eksisterende databaser eller andre verktøy for å lette analysen av applikasjonsdesignet dyresporingsadferd24. Ved en ramme-for-ramme-analyse v…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av et spesielt lanseringsfond fra Soochow University og National Science Foundation of China (NSFC) (82171414). Vi takker professor Chunfeng Lius laboratoriemedlemmer for deres diskusjon og kommentarer.

Materials

Animal tracker Hungarian Brain Research Program version: 1.7 pfficial website: http://animaltracker.elte.hu/main/downloads
Camera software Microsoft version: 2021.105.10.0 built-in windows 10 system
Computer DELL Vostro-14-5480 a comupter running win 10 system is available
Drosophila carbon dioxide anesthesia workstation Wu han Yihong technology #YHDFPCO2-018 official website: http://www.yhkjwh.com/
Fiji software Fiji team version: 1.53v official website: https://fiji.sc/
Format factory software Pcfreetime version: X64 5.4.5 official website: http://www.pcfreetime.com/formatfactory/CN/index.html
Graph pad prism GraphPad Software version: 8.0.2 official website: https://www.graphpad-prism.cn
Hight definition camera TTQ Jingwang2 (HD1080P F1.6 6-60mm) official website: http://www.ttq100.com/product_show.php?id=35
Office software Microsoft version: office 2019 official website: https://www.microsoftstore.com.cn/software/office
Petri dish Bkman 110301003 size: 60 mm
Silica gel DOW SYLGARD 184 Silicone Elastomer Kit Mix well according to the instructions
Sodium bicarbonate Macklin #144-55-8 Mix well with silica gel

Riferimenti

  1. Ham, S. J., et al. Loss of UCHL1 rescues the defects related to Parkinson’s disease by suppressing glycolysis. Science Advances. 7 (28), (2021).
  2. Algarve, T. D., Assmann, C. E., Aigaki, T., da Cruz, I. B. M. Parental and preimaginal exposure to methylmercury disrupts locomotor activity and circadian rhythm of adult Drosophila melanogaster. Drug and Chemical Toxicology. 43 (3), 255-265 (2020).
  3. Jones, M. A., Grotewiel, M. Drosophila as a model for age-related impairment in locomotor and other behaviors. Experimental Gerontology. 46 (5), 320-325 (2011).
  4. Yamaguchi, M., Yoshida, H. Drosophila as a model organism. Advances in Experimental Medicine and Biology. 1076, 1-10 (2018).
  5. Rothenfluh, A., Heberlein, U. Drugs, files, and videotape: the effects of ethanol and cocaine on Drosophila locomotion. Current Opinion in Neurobiology. 12 (6), 639-645 (2002).
  6. Tsuda, L., Lim, Y. M. Alzheimer’s disease model system using Drosophila. Advances in Experimental Medicine and Biology. 1076, 25-40 (2018).
  7. Dung, V. M., Thao, D. T. P. Parkinson’s disease model. Advances in Experimental Medicine and Biology. 1076, 41-61 (2018).
  8. Liguori, F., Amadio, S., Volonte, C. Fly for ALS: Drosophila modeling on the route to amyotrophic lateral sclerosis modifiers. Cellular and Molecular Life Sciences. 78 (17-18), 6143-6160 (2021).
  9. Cao, W., et al. An automated rapid iterative negative geotaxis assay for analyzing adult climbing behavior in a Drosophila model of neurodegeneration. Journal of Visualized Experiments. (127), 56507 (2017).
  10. Eidhof, I., et al. High-throughput analysis of locomotor behavior in the Drosophila island assay. Journal of Visualized Experiments. (129), 55892 (2017).
  11. Scaplen, K. M., et al. Automated real-time quantification of group locomotor activity in Drosophila melanogaster. Scientific Reports. 9 (1), 4427 (2019).
  12. Werkhoven, Z., Rohrsen, C., Qin, C., Brembs, B., de Bivort, B. MARGO (Massively Automated Real-time GUI for Object-tracking), a platform for high-throughput ethology. PLoS One. 14 (11), e0224243 (2019).
  13. Gargano, J. W., Martin, I., Bhandari, P., Grotewiel, M. S. Rapid iterative negative geotaxis (RING): a new method for assessing age-related locomotor decline in Drosophila. Experimental Gerontology. 40 (5), 386-395 (2005).
  14. Cichewicz, K., Hirsh, J. ShinyR-DAM: a program analyzing Drosophila activity, sleep and circadian rhythms. Communications Biology. 1, 25 (2018).
  15. McParland, A. L., Follansbee, T. L., Ganter, G. K. Measurement of larval activity in the Drosophila activity monitor. Journal of Visualized Experiments. 98, e52684 (2015).
  16. Walter, T., Couzin, I. D. TRex, a fast multi-animal tracking system with markerless identification, and 2D estimation of posture and visual fields. eLife. 10, (2021).
  17. Maia Chagas, A., Prieto-Godino, L. L., Arrenberg, A. B., Baden, T. The €100 lab: A 3D-printable open-source platform for fluorescence microscopy, optogenetics, and accurate temperature control during behaviour of zebrafish, Drosophila, and Caenorhabditis elegans. PLoS Biology. 15 (7), e2002702 (2017).
  18. Nichols, C. D., Becnel, J., Pandey, U. B. Methods to assay Drosophila behavior. Journal of Visualized Experiments. (61), (2012).
  19. Xiao, G. Methods to assay the behavior of Drosophila melanogaster for toxicity study. Methods in Molecular Biology. 2326, 47-54 (2021).
  20. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  21. Johnson, M. E., Bobrovskaya, L. An update on the rotenone models of Parkinson’s disease: their ability to reproduce the features of clinical disease and model gene-environment interactions. Neurotoxicology. 46, 101-116 (2015).
  22. Coulom, H., Birman, S. Chronic exposure to rotenone models sporadic Parkinson’s disease in Drosophila melanogaster. The Journal of Neuroscience. 24 (48), 10993-10998 (2004).
  23. Kumar, P. P., Bawani, S. S., Anandhi, D. U., Prashanth, K. V. H. Rotenone mediated developmental toxicity in Drosophila melanogaster. Environmental Toxicology and Pharmacology. 93, 103892 (2022).
  24. Gulyas, M., Bencsik, N., Pusztai, S., Liliom, H., Schlett, K. AnimalTracker: an ImageJ-based tracking API to create a customized behaviour analyser program. Neuroinformatics. 14 (4), 479-481 (2016).
  25. Qu, S. EasyFlyTracker: a simple video tracking Python package for analyzing adult Drosophila locomotor and sleep activity to facilitate revealing the effect of psychiatric drugs. Frontiers in Behavioral Neuroscience. 15, 809665 (2022).
  26. Yarwais, Z. H., Najmalddin, H. O., Omar, Z. J., Mohammed, S. A. Automated data collection of Drosophila movement behaviour assays using computer vision in Python. International Journal of Innovative Approaches in Science Research. 4 (1), 15-22 (2020).
check_url/it/65092?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Long, X., Du, H., Jiang, M., Meng, H. A Simple Technique to Assay Locomotor Activity in Drosophila. J. Vis. Exp. (192), e65092, doi:10.3791/65092 (2023).

View Video