הפרוטוקול מדגים כי על ידי ביצוע מיקרו-טרנספלנטציה של ממברנות סינפטיות לתוך ביציות קסנופוס לאוויס , ניתן לרשום תגובות עקביות ואמינות של α-אמינו-3-הידרוקסי-5-מתיל-4-איזוקסזולפרופיונית וחומצה γ-אמינו-בוטירית.
קולטנים יונוטרופיים מעוררים ומעכבים הם השערים העיקריים של שטפי יונים הקובעים את פעילות הסינפסות במהלך תקשורת עצבית פיזיולוגית. לכן, שינויים בשפע, בתפקודם ובקשריהם עם אלמנטים סינפטיים אחרים נצפו כמתאם עיקרי של שינויים בתפקוד המוח ופגיעה קוגניטיבית במחלות נוירודגנרטיביות והפרעות נפשיות. הבנת האופן שבו הפונקציה של קולטנים סינפטיים מעוררים ומעכבים משתנה על ידי מחלה היא בעלת חשיבות קריטית לפיתוח טיפולים יעילים. כדי לקבל מידע רלוונטי למחלה, חשוב לתעד את הפעילות החשמלית של קולטני נוירוטרנסמיטר שנותרים מתפקדים במוח האנושי החולה. עד כה זוהי הגישה הקרובה ביותר להערכת שינויים פתולוגיים בתפקוד הקולטנים. בעבודה זו מוצגת מתודולוגיה לביצוע מיקרו-טרנספלנטציה של ממברנות סינפטיות, המורכבת מהפעלה מחדש של ממברנות סינפטיות מרקמת מוח אנושית קפואה המכילה קולטנים אנושיים, על ידי הזרקתה ואיחוי אחורי לתוך הממברנה של ביציות Xenopus laevis . הפרוטוקול מספק גם את האסטרטגיה המתודולוגית להשגת תגובות עקביות ואמינות של α-אמינו-3-הידרוקסי-5-מתיל-4-איזוקסזולפרופיונית (AMPA) וקולטני חומצה γ-אמינו-בוטירית (GABA), כמו גם שיטות מפורטות חדשניות המשמשות לנורמליזציה ולניתוח נתונים קפדני.
הפרעות נוירודגנרטיביות משפיעות על אחוז גדול מהאוכלוסייה. למרות שתוצאותיהם ההרסניות ידועות היטב, הקשר בין השינויים התפקודיים של קולטני נוירוטרנסמיטר, שהם קריטיים לתפקוד המוח, והסימפטומטולוגיה שלהם עדיין לא מובן היטב. שונות בין-אישית, האופי הכרוני של המחלה והתפרצות חתרנית של תסמינים הם רק חלק מהסיבות שעיכבו את ההבנה של הפרעות המוח הרבות שבהן חוסר האיזון הכימי מתועד היטב 1,2. מודלים של בעלי חיים יצרו מידע שלא יסולא בפז והרחיבו את הידע שלנו על המנגנונים העומדים בבסיס הפיזיולוגיה והפתופיזיולוגיה במערכות משומרות אבולוציוניות; עם זאת, מספר הבדלים בין-מיניים בין מכרסמים לבני אדם מונעים אקסטרפולציה ישירה של תפקוד הקולטנים ממודלים של בעלי חיים למוח האנושי3. לפיכך, המאמצים הראשוניים לחקור קולטנים אנושיים מקומיים פותחו על ידי מעבדתו של ריקרדו מילדי באמצעות רקמות שהוסרו בניתוח ודגימות קפואות. ניסויים ראשוניים אלה השתמשו בממברנות שלמות הכוללות קולטנים סינפטיים עצביים וסינפטיים נוספים, כמו גם קולטני נוירוטרנסמיטר שאינם עצביים, ולמרות שהם מספקים מידע חשוב על מצבים חולים, קיים חשש שתמהיל הקולטנים מסבך את הפרשנות של נתונים 4,5,6,7. חשוב לציין, סינפסות הן המטרה העיקרית בהפרעות נוירודגנרטיביות רבות 8,9; לכן, מבחנים לבדיקת התכונות התפקודיות של סינפסות מושפעות הם בסיסיים כדי לקבל מידע על שינויים רלוונטיים למחלה המשפיעים על התקשורת הסינפטית. כאן מתואר שינוי של השיטה המקורית: מיקרו-טרנספלנטציה של ממברנות סינפטיות (MSM), המתמקדת באפיון פיזיולוגי של תכשירי חלבונים סינפטיים מועשרים ויושמה בהצלחה בחקר חולדות וסינפטוסומים אנושיים 10,11,12,13,14,15 . בעזרת מתודולוגיה זו, ניתן להשתיל קולטנים סינפטיים שפעם עבדו במוח האנושי, משובצים בשומנים המקומיים שלהם ועם קבוצת חלבונים נלווים משלהם. יתר על כן, מכיוון שנתוני MSM הם כמותיים, ניתן להשתמש בנתונים אלה כדי להשתלב עם מערכי נתונים פרוטאומיים או רצף גדולים10.
חשוב לציין כי ניתוחים פרמקולוגיים וביופיזיים רבים של קולטנים סינפטיים נעשים על חלבונים רקומביננטיים16,17. בעוד שגישה זו מספקת תובנה טובה יותר לגבי יחסי מבנה-תפקוד של קולטנים, היא אינה יכולה לספק מידע על קומפלקסים מורכבים של קולטנים רב-מתכתיים המצויים בתאי עצב ועל השינויים שלהם במחלות. לכן, שילוב של חלבונים מקומיים ורקומביננטיים צריך לספק ניתוח מקיף יותר של קולטנים סינפטיים.
ישנן שיטות רבות להכנת סינפטוזומים 10,11,12,13,14,15 אשר ניתן להתאים לדרישות המעבדה. הפרוטוקול מתחיל בהנחה שתכשירים מועשרים סינפטוזומליים בודדו ומוכנים לעיבוד לניסויים במיקרו-טרנספלנטציה. במעבדה, נעשה שימוש בשיטת Syn-Per בהתאם להוראות היצרן. זה נעשה בגלל יכולת שכפול גבוהה בניסויים אלקטרופיזיולוגיים10,11. יש גם ספרות בשפע המסביר כיצד לבודד את ביציות קסנופוס 18,19, אשר ניתן לרכוש גם מוכן להזרקה20.
ניתוח של קומפלקסים חלבוניים מקומיים ממוחות אנושיים נחוץ כדי להבין תהליכים הומאוסטטיים ופתולוגיים בהפרעות מוחיות ולפתח אסטרטגיות טיפוליות למניעה או לטיפול במחלות. לפיכך, בנקי מוח המכילים דגימות קפואות הצמדה הם מקור שלא יסולא בפז לעושר גדול ובעיקר לא מנוצל של מידע פיזיולוגי29,30</…
The authors have nothing to disclose.
עבודה זו נתמכה על ידי מענקי NIA/NIH R01AG070255 ו-R01AG073133 ל-AL. אנו מודים גם למרכז לחקר מחלת האלצהיימר של אוניברסיטת קליפורניה אירווין (UCI-ADRC) על שסיפק את הרקמה האנושית המוצגת בכתב יד זה. UCI-ADRC ממומן על ידי מענק NIH / NIA P30 AG066519.
For Microinjection | |||
3.5" Glass Capillaries | Drummond | 3-000-203-G/X | |
24 well, flat bottom Tissue Culture Plate | Thermofisher | FB012929 | |
Flaming/Brown type micropipette puller | Sutter | P-1000 | |
Injection Dish | Thermofisher | 08-772B | |
Microcentrifuge Tubes | Thermofisher | 02-682-002 | |
Mineral Oil | Thermofisher | O121-1 | |
Nanoject II | Drummond | 3-000-204 | |
Nylon mesh | Industrial Netting | WN0800 | |
Parafilm | Thermofisher | S37440 | |
Stereoscope | Fisher Scientific | 03-000-037 | |
Syringe | Thermofisher | 14-841-31 | |
Ultrasonic cleaning bath | Thermofisher | FS20D | |
Xenopus laevis frogs | Xenopus 1 | 4217 | |
For Two Electrode Voltage clamp | |||
15 cm long fire polished borosilicate glass capillaries | Sutter | B200-116-15 | |
Any PC computer or laptop | |||
Low-pass Bessel Filter | Warner Instruments | LPF-8 | |
Stereoscope | Fisher Scientific | 03-000-037 | |
Two electrode voltage clamp workstation | Warner Instruments | TEV-700 | |
ValveLink 8.2 Perfusion Controller | Automate Scientific | SKU:01-18 | |
WInEDR Free software | University of Strathclyde Glasgow | https://spider.science.strath.ac.uk/sipbs/software_ses.htm | |
X Series Multifunction DAQ | National Instruments | NI USB-6341 | |
Reagents | |||
Calcium dichloride | Thermofisher | C79 | |
Calcium nitrate tetrahydrate | Thermofisher | C109 | |
Collagenase | Sigma-Aldrich | C0130 | |
GABA | Sigma-Aldrich | A2129 | |
HEPES (4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic acid) | Thermofisher | BP310 | |
Kainic acid | Tocris | 0222 | |
Magnesium sulfate heptahydrate | Thermofisher | M63 | |
Potassium chloride | Thermofisher | P217 | |
Sodium bicarbonate | Thermofisher | S233 | |
Sodium chloride | Thermofisher | S271-1 | |
Ultrafree-0.1 µm MC filter, | Amicon |