ヒト臍帯組織から間葉系幹細胞を単離し、骨格筋系統に分化させるためのプロトコルについて説明する。
間葉系幹細胞の治療可能性を探ることは、単離の容易さ、分化に対する効力、および供給源の信頼性と堅牢性にかかっています。ここでは、ヒト臍帯組織(uMSC)から間葉系幹細胞を単離するための段階的なプロトコール、それらの免疫表現型決定、およびいくつかの継代にわたるそのような培養物の増殖について記述する。この手順では、酵素消化がないためuMSCsの生存率は高い。さらに、臍帯動脈および静脈を含む血管の除去は、内皮起源の細胞の汚染がないことを確実にする。フローサイトメトリーを用いて、単離時のuMSCはCD45−CD34−であり、造血系統からの細胞の不在を示す。重要なことに、それらは重要な表面マーカー、CD105、CD90、およびCD73を表現します。培養物の樹立に際し、本稿では、これらのuMSCを骨格筋系統に分化誘導する効率的な方法を記載する。分化したuMSCにおける筋原性進行の詳細な分析により、uMSCは分化の初期段階において筋原性前駆細胞のマーカーであるPax7を発現し、続いてMyoDおよびMyf5の発現、そして最後に終末分化マーカーであるミオシン重鎖(MyHC)を発現することが明らかになった。
ヒト臍帯は、間葉系幹細胞の堅牢な貯蔵庫を有すると信じられており、それらは、その堅牢な増殖および分化速度、免疫調節特性、および3つの胚葉すべてから細胞を生成する能力のために、現在再生療法のために探求されている1。臍帯組織は、臍帯血、臍帯静脈下内皮、ウォートンゼリー(WJ)などの複数の区画からなり、それ自体が血管周囲ゾーン、血管間ゾーン、および羊膜下またはコードライニング(CL)2の3つの不明瞭な領域を包含する。uMSCはこれらすべての異なる領域から単離され、主要なMSCマーカーを広く発現することができるが、これらのコンパートメントが同じ集団のuMSCを含むのか、それともそれらの分化能に違いを示すのかについては明確ではない3。したがって、uMSCの単離のためのプロトコルは、その分離のモードおよび領域におけるより高い精度、分化電位の堅牢な特性評価、および最後に、コードの異なる区画からの比較分析を必要とする。
この文脈において、コードの異なる部分間のuMSC増殖性および分化電位の違いを実証した研究はほとんどない。これらのうち、CL領域およびWJ領域から単離されたuMSC間の比較分析は、CL由来uMSCs3,4においてより大きな増殖能を明らかにした。別の研究では、WJ由来のuMSCは、血管周囲細胞(HUCPV)と比較して増殖アッセイにおいてより優れた性能を発揮しました5。臍帯血由来uMSCと血管汚染を欠く臍帯組織由来uMSCの違いを調べる際に、2つのコンパートメント間で主要なMSCマーカーの差異発現が報告され、臍帯組織由来uMSCsの増殖速度が増加した6。
骨形成、脂肪原性、軟骨形成性系統などの中胚葉系譜の組織へのuMSCの分化能を調べたいくつかの研究のうち、筋原性分化およびその後の特徴付けのための詳細なプロトコル、ならびに様々なコードコンパートメント間の比較分析を提供した研究はほとんどない。この文脈で、我々は堅牢な筋肉分化プロトコルを開発し、臍帯組織由来uMSCsが臍帯血と比較して優れた筋原性分化能力を示すことを観察した6。ここでは、血管系に関連する細胞を欠いている臍帯組織全体からのuMSCの単離、それらの特徴付け、および筋原性系統への分化について、段階的なプロトコールが詳述されている。
重要なステップ
このプロトコルの重要なステップは、送達時から無菌培養物の維持まで、増殖の全期間にわたって、無菌条件下での組織の収集である。コード収集中は、コードが滅菌されていない表面に触れず、抗生物質を添加したPBSを含むチューブに収集する前に70%エタノールで外部から拭き取ることが不可欠です。uMSC単離のために、コード収集と組織の処理との間の時間…
The authors have nothing to disclose.
撮影とビデオ制作に協力してくれたOjas Tikoo氏に感謝します。我々はまた、GARBH-Ini(Advanced Research and Birth Outcome-DBT India)のスタッフ、看護師、上級研究官、及びPallavi Kshetrapal博士から物流に関する支援を受けたことを認識する。この研究は、インドのバイオテクノロジー省からSuchitra Gopinathに授与された助成金によって支援されました(BT/09/IYBA/2015;BT/PR29599/PFN/20/1393/2018)。
4',6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) | Thermo Fisher Scientific | D1306 | |
Amphotericin B | Sigma Aldrich | A2411 | |
Antibiotic solution 100x Liquid, endotoxin tested (10,000 U Penicillin and 10 mg Streptomycin/mL in 0.9% normal saline) | HiMedia | A001A-50mL | |
Anti-GAPDH antibody | Sigma Aldrich | G8795 | |
Anti-MyHC antibody (My32) | Novus Biologicals | NBP2-50401AF647 | |
Anti-MyoD antibody (5.8A) | Novus Biologicals | NB100-56511 | |
Anti-Myogenin antibody (Clone F5D) | Novus Biologicals | NBP2-34616AF594 | |
Anti-Pax7 antibody | DSHB | DSHB-C1-576 | |
APC Mouse anti-human CD90 clone 5E10 | BD Biosciences | 559869 | |
Collagen Type 1 | Merck | C8919 | |
D (+) Glucose | Sigma Aldrich | G7021 | |
Dexamethasone | SIGMA | D4902 | |
FACSCanto II or FACSAria III | BD Biosciences | ||
Fetal Bovine Serum, qualified Brazil | GIBCO | 10270106 | not to be heat-inactivated |
FITC Mouse anti-human CD106 clone 51-10C9 | BD Biosciences | 551146 | |
FITC Mouse anti-human CD14 clone M5E2 | BD Biosciences | 557153 | |
FITC Mouse anti-human CD31 clone WM59 | BD Biosciences | 557508 | |
FITC Mouse anti-human CD34 clone 581 | BD Biosciences | 555821 | |
FITC Mouse anti-human CD45 clone HI30 | BD Biosciences | 555482 | |
FITC Mouse anti-human CD49D clone 9F10 | BD Biosciences | 560840 | |
FITC Mouse anti-human CD90 clone 5E10 | BD Biosciences | 555595 | |
FITC Mouse anti-human HLA-A,B,C clone G46-2.6 | BD Biosciences | 557348 | |
FITC Mouse anti-human IgG clone G18-145 | BD Biosciences | 555786 | |
FlowJo software | BD Biosciences | ||
Gentamicin | Sigma Aldrich | G1264 | |
Horse serum | HiMedia | RM1239 | |
Hydrocortisone | Merck | H4001 | |
Laminin | Merck | L2020 | |
MEM Alpha Modification without L-glutamine, ribo- and deoxyribonucleosides | Hyclone | SH30568.FS | Basal medium for uMSCs |
PE Mouse anti-human CD105 clone 266 | BD Biosciences | 560839 | |
PE Mouse anti-human CD44 clone 515 | BD Biosciences | 550989 | |
PE Mouse anti-human CD49E clone llA1 | BD Biosciences | 555617 | |
PE Mouse anti-human IgG clone G18-145 | BD Biosciences | 555787 | |
PE-Cy7 Mouse anti-human CD73 CLONE AD2 | BD Biosciences | 561258 | |
Phosphate buffered saline (PBS), pH=7.4 | HiMedia | M1866 | |
Trypsin/EDTA solution (1x 0.25% Trypsin and 0.02% EDTA in Hanks Balanced Salt Solution (HBSS) | HiMedia | TCL049-100mL |