我们提出了一种用于分离和冷冻压裂来自癌性尿路上皮细胞的细胞外囊泡(EV)的方案。冷冻断裂技术揭示了EV的直径和形状,并且作为一个独特的特征 ,EV膜的内部组织。这些对于了解电动汽车如何与受体膜相互作用非常重要。
细胞外囊泡(EV)是从细胞释放到细胞外空间的膜限制结构,与细胞间通讯有关。EV由三个囊泡种群组成,即微囊泡(MV),外泌体和凋亡体。EV的限制膜与受体细胞的相互作用至关重要,这可能导致生物活性分子转移到受体细胞,从而影响它们的行为。冷冻-断裂电子显微镜技术用于研究生物膜的内部组织。在这里,我们提出了一种从培养的癌性尿路上皮细胞中分离MV的方案,以及通过快速冷冻,断裂,制造和清洁复制品的步骤以及MV的冷冻断裂,并用透射电子显微镜分析它们。结果表明,分离方案产生均匀的EV群体,其对应于MV的形状和大小,膜内颗粒主要存在于限制膜的原生质面中。因此,冷冻断裂是表征MV的直径,形状和膜蛋白分布的首选技术。所介绍的协议适用于其他电动汽车群体。
细胞外囊泡(EV)是从细胞释放到细胞外空间的膜受限囊泡。EV的三个主要群体是外泌体,微囊泡(MV)和凋亡体,它们的起源,大小和分子组成不同1,2,3。EV的组成反映了供体细胞的分子谱及其生理状态(即健康或患病)4,5。这使得电动汽车在人类疾病的诊断,预后和治疗方面具有巨大的潜力,并且它们在个性化医疗中具有广阔的医疗应用6,7,8。
电动汽车是细胞间通信的介质。它们含有生物活性蛋白,脂质和RNA,它们干扰受体细胞中的生物过程并可以改变其行为9,10。然而,EV限制膜的组成对于与受体细胞膜的相互作用至关重要。
电动汽车的来源是体液和条件培养基。为了隔离EV群体,必须使用合适的隔离技术。例如,在10,000×g下离心产生以MV为单位富集的分数,而离心力为≥100,000×g 产生在外泌体中富集的分数11,12。电动汽车的分离部分必须在纯度,尺寸和形状方面进行验证。为此,国际细胞外囊泡学会2018推荐了三类高分辨率成像技术:电子显微镜,原子力显微镜和基于光学显微镜的超分辨率显微镜13。这些技术都不能提供有关EV膜内部的信息。
冻裂电子显微镜是一种打破冷冻标本以揭示其内部结构的技术,特别是提供膜内部的视图。样品制备的步骤是(1)快速冷冻,(2)压裂,(3)制作复制品,和(4)清洗复制品14。在步骤1中,样品(可选地)化学固定,用甘油冷冻保护,并在液体氟利昂中冷冻。在步骤2中,冷冻试样在冷冻断裂单元中断裂,该单元暴露膜双层的内部。在步骤3中,暴露的断裂面被铂(Pt)和碳(C)遮蔽以产生复制品。在步骤4中,有机材料被除去。在透射电子显微镜(TEM)中分析复制品。为了准确解释显微照片,必须遵循其正确方向的指南14,15。简而言之,显微照片中阴影的方向是参考,用于定位显微照片(即确定Pt阴影的方向),从而确定凸形和凹形(图1)。通过冷冻压裂膜分裂膜可以看到两个称为膜双层断裂面的内部视图:原生质面(P面)和外质面(E面)。P面代表与细胞原生质相邻的膜小叶,而E面代表与细胞外空间相邻的膜小叶。整体膜蛋白及其关联被视为突出的膜内颗粒14,15。
在这里,目标是应用冷冻断裂技术来表征MV的尺寸,形状和限制膜的结构。在这里,我们提出了一种用于分离和冷冻压裂来自人类浸润性膀胱癌性尿路上皮细胞的MV的方案。
在开始下游分析(如“组学”研究或功能研究)之前,MV或任何其他孤立的EV群体的表征至关重要11,18。本文通过离心分离来自人浸润性膀胱癌尿路上皮T24细胞的EV,并按照提供的冷冻骨折电子显微镜分析方案,我们证明分离的部分富集在MVs11,13中。MV的分离没有细胞碎片或细胞器,证实了成功的分离和纯化方案。
化学固定和冷冻的结合是协议的关键步骤,保留了EV12的球形。但是,在通过冻结压裂17评估EV直径时需要采取预防措施。由于裂缝随机穿过样品,因此中压膜被分成赤道平面和非赤道平面。为了提供一种分析冻结断裂和阴影标本图像的严格方法,Hallett等人表明,平均囊泡直径是图像17上水泡直径实际大小的4/π倍。考虑到这一点,来自T24电池的EV的直径为304 nm,这符合MV的理论尺寸分布范围100-1000 nm19。
冷冻压裂可以补充负染色,这是用于可视化EV的最广泛使用的TEM技术。通过负染色,样品通常被化学固定,干燥并附着在TEM网格上,并与铀酰溶液形成对比。如果没有支持媒体,电动汽车往往会崩溃,这使它们具有杯形外观。通过冷冻压裂,我们表明MV是球体,它在细胞外空间和体液中反映了它们的形状12。因此,我们的结果也与冷冻超薄部分20中对EV的观察结果一致。
冷冻断裂技术的一个关键优势是它能够解决限制膜的内部组织,这是了解EV如何靶向受体膜并与受体膜相互作用的关键因素。在这里,我们分析了MV的膜,但冷冻压裂可以揭示任何其他EV群体的膜组织。MV由质膜萌芽形成;因此,质膜蛋白和蛋白簇有望在MV膜中发现。我们的结果支持来自T24细胞的MV含有膜内颗粒,呈现完整的膜蛋白。基于E面和P面之间的颗粒分布,可以合理地期望在MV中观察到的颗粒是跨膜蛋白尿素蛋白,其是尿路上皮细胞特异性21,24。观察到的颗粒是稀疏的,这与先前的研究报告在尿路上皮癌变过程中尿素减少21,22,23一致。然而,为了进一步研究MV膜的蛋白质组成,建议使用冷冻骨折复制免疫标记(FRIL)技术。FRIL是所提出的冷冻断裂技术的升级,致力于通过抗体识别24,25揭示复制品中蛋白质的身份。综上所述,冷冻断裂技术是一种电子显微镜技术,适用于表征EV限制膜,以及分离的EV级分的形状,尺寸和纯度。所提出的方案也可用于评估其他孤立的EV人群;因此,冷冻压裂技术值得纳入国际细胞外囊泡学会指南,用于探索EV限制膜组织的研究。
The authors have nothing to disclose.
这项研究由斯洛文尼亚研究机构资助(研究核心资金没有。P3-0108 和项目 J7-2594)和 MRIC UL IP-0510 基础设施计划。这项工作有助于成本行动CA17116将围产期衍生物研究转化为治疗方法的国际网络(SPRINT),由COST(欧洲科学和技术合作)支持。作者要感谢琳达·斯特鲁斯、桑贾·恰布拉哈、娜达·帕夫利卡·杜巴里奇和萨宾娜·泽列兹尼克在细胞培养和制备样本方面的技术支持,并感谢马尔科·沃格林克、奥塔·谢尔卡·罗斯和内杰克·德贝维克为准备视频提供的技术帮助。
A-DMEM | ThermoFisher Scientific, USA | 12491015 | |
Balzers freeze-fracture device | Balzers AG, Liechtenstein | Balzers BAF 200 | |
Centrifuge | Eppendorf, Germany | model 5810R | |
CO2 incubator HeraCell | Heraues, Germany | ||
Copper carriers | Balzers | BB 113 142-2 | 100+ mesh |
Copper grids | SPI, United States | 2010C | |
Culture flask T75 | TPP, Switzerland | growing surface 75 cm2 | |
F12 (HAM) | Sigma-Aldrich, Germany | 21765029 | |
FBS | Gibco, Life Technologies, USA | 10500064 | |
Glazed Porcelain Plate 6 Well | Fischer Sientific, United States | 50-949-072 | |
Glycerol | Kemika, Croatia | 711901 | final concentration 30 % (v/v) |
Glutaradehyde | Serva, Germany | 23114.01 | final concentration 2.5 % (v/v) |
GlutaMAX | Gibco, Life Technologies | 35050-079 | final concentration 4 mM |
Penicillin | Gibco, Life Technologies | 15140163 | final concentration 100 U/ml |
Phase-contast inverted microscope | Nikon, Japan | model Eclipse | |
Rotor | Eppendorf, Germany | A 4-44 | |
Rotor | Eppendorf, Germany | F-34-6-38 | |
Serological pipetts | TPP, Switzerland | 50mL volume | |
Sodium hypochloride solution in water | Carlo Erba, Italy | 481181 | |
Stereomicroscope | Leica, Germany | ||
Streptomycin | Gibco, Life Technologies | 35050038 | final concentration 100 mg/mL |
Transmission electron microscope | Philips, The Netherlands | model CM100 | working at 80 kV |
Tweezers | SPI, United States |