Summary

Utilización de electroporación postnatal in vivo para estudiar la morfología de la neurona del gránulo cerebeloso y el desarrollo de la sinapsis

Published: June 09, 2021
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Summary

Aquí describimos un método para visualizar la sinaptogénesis de las neuronas granulares en el cerebelo del ratón durante el curso del desarrollo cerebral postnatal cuando estas células refinan sus estructuras sinápticas y forman sinapsis para integrarse en el circuito cerebral general.

Abstract

Las neuronas experimentan cambios dinámicos en su estructura y función durante el desarrollo del cerebro para formar conexiones apropiadas con otras células. El cerebelo de roedores es un sistema ideal para rastrear el desarrollo y la morfogénesis de un solo tipo de célula, la neurona granulosa cerebelosa (CGN), a través del tiempo. Aquí, la electroporación in vivo de progenitores de neuronas granulares en el cerebelo de ratón en desarrollo se empleó para etiquetar escasamente las células para análisis morfológicos posteriores. La eficacia de esta técnica se demuestra en su capacidad para mostrar las etapas clave del desarrollo de la maduración de CGN, con un enfoque específico en la formación de garras dendríticas, que son estructuras especializadas donde estas células reciben la mayoría de sus entradas sinápticas. Además de proporcionar instantáneas de las estructuras sinápticas de CGN a lo largo del desarrollo cerebeloso, esta técnica se puede adaptar para manipular genéticamente las neuronas granulares de manera autónoma celular para estudiar el papel de cualquier gen de interés y su efecto en la morfología de CGN, el desarrollo de garras y la sinaptogénesis.

Introduction

El desarrollo del cerebro es un proceso prolongado que se extiende desde la embriogénesis hasta la vida postnatal. Durante este tiempo, el cerebro integra una combinación de estímulos intrínsecos y extrínsecos que esculpen el cableado de las sinapsis entre las dendritas y los axones para guiar finalmente el comportamiento. El cerebelo de roedores es un sistema modelo ideal para estudiar cómo se desarrollan las sinapsis porque el desarrollo de un solo tipo de neurona, la neurona granular cerebelosa (CGN), se puede rastrear a medida que pasa de una célula progenitora a una neurona madura. Esto se debe, en parte, al hecho de que la mayoría de la corteza cerebelosa se desarrolla postnatalmente, lo que permite una fácil manipulación genética y etiquetado celular después del nacimiento1.

En los mamíferos, la diferenciación de CGN comienza al final del desarrollo embrionario cuando un subconjunto de células proliferativas en el cerebro posterior migra sobre el labio rómbico para formar una zona germinal secundaria en la superficie del cerebelo 2,3,4. Aunque están totalmente comprometidas con una identidad progenitora de neuronas granulares (GNP), estas células continúan proliferando dentro de la porción externa de la capa granular externa (EGL) hasta el día postnatal 14 (P14). La proliferación de esta capa resulta en una expansión masiva del cerebelo ya que estas células dan lugar exclusivamente a CGNs5. Una vez que las CGN recién nacidas salen del ciclo celular en el EGL, migran hacia el interior hacia la capa granular interna (IGL), dejando atrás un axón que se bifurcará y viajará en la capa molecular del cerebelo, formando fibras paralelas que hacen sinapsis en las células de Purkinje6. La posición de estas fibras dentro de la capa molecular depende del momento de la salida del ciclo celular.

Las CGN que se diferencian primero dejan sus fibras paralelas hacia la parte inferior de la capa molecular, mientras que los axones de CGN que se diferencian más tarde se agrupan en la parte superior 7,8. Una vez que los cuerpos celulares CGN alcanzan el IGL, comienzan a elaborar dendritas y forman sinapsis con neuronas inhibitorias y excitatorias cercanas. El árbol dendrítico maduro de un CGN exhibe una arquitectura estereotipada con cuatro procesos principales. En el transcurso de la maduración de CGN, las estructuras al final de estas dendritas forman una garra que se enriquece con proteínas postsinápticas 9,10. Estas estructuras especializadas, llamadas garras dendríticas, contienen la mayoría de las sinapsis en las neuronas granulares y son importantes para recibir tanto entradas excitatorias de inervaciones de fibras musgosas que se originan en la protuberancia, como entradas inhibitorias de células locales de Golgi. Una vez configuradas completamente, las conexiones sinápticas de las CGN permiten que estas células transmitan entradas desde los núcleos precerebelosos a las células de Purkinje, que se proyectan desde la corteza cerebelosa hacia los núcleos cerebelosos profundos.

La electroporación postnatal in vivo de los PNB es ventajosa sobre otros métodos basados en el etiquetado, como la infección viral y la generación de líneas de ratón transgénico, porque la expresión de las construcciones deseadas se puede lograr en una línea de tiempo rápida, y el método se dirige a una pequeña población de células, útil para estudiar los efectos autónomos celulares. Este método se ha utilizado en estudios previos para estudiar el desarrollo morfológico de las CGN; Sin embargo, estos estudios se han centrado en un solo punto de tiempo o en una ventana corta de tiempo 9,10,11,12,13. Este método de etiquetado se combinó con el análisis de imágenes para documentar los cambios en la morfología de CGN que ocurren a lo largo de todo el curso de tiempo de la diferenciación de CGN durante las primeras tres semanas de vida postnatal. Estos datos revelan la dinámica del desarrollo de las dendritas CGN que subyacen a la construcción de los circuitos cerebelosos.

Protocol

NOTA: Todos los procedimientos se realizaron bajo protocolos aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad de Duke (IACUC). 1. Preparación del ADN para electroporación in vivo o IVE (1 día antes de la cirugía) Reúna los siguientes materiales: ADN purificado (0.5-25 μg por animal), acetato de sodio 3 M, etanol, colorante verde rápido, agua destilada ultrapura, solución tampón de fosfato (PBS) (consulte la Tabla de materiales</st…

Representative Results

Figura 4: Análisis de la morfología de las neuronas granulares durante el desarrollo cerebeloso. (A) Imágenes de proyección máxima de CGN electroporadas de 3-DPI a 14-DPI (edad postnatal P10 a P21), núcleos (azul) y GFP (verde); Las puntas de flecha indican dendritas individuales, y la barra de escala es de 10 μm. (B) Número promedio de dendritas. (…

Discussion

Las neuronas granulares cerebelosas son las neuronas más abundantes en el cerebro de los mamíferos, constituyendo casi el 60-70% de la población total de neuronas en el cerebro de roedores 1,14. El cerebelo ha sido ampliamente utilizado para dilucidar los mecanismos de proliferación celular, migración, formación de dendritas y desarrollo de sinapsis 6,9,10,11,15,16,17,18,19,20 <sup class=…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

El trabajo fue apoyado por las subvenciones de los NIH R01NS098804 (A.E.W.), F31NS113394 (U.C.) y el Programa de Neurociencia de Verano (DG) de la Universidad de Duke.

Materials

Betadine Purdue Production 67618-150-17
Cemented 10 µL needle Hamilton 1701SN (80008) 33 gauge, 1.27 cm (0.5 in), 4 point style
Chicken anti-GFP Millipore Sigma AB16901 Our lab uses this antibody at a 1:1000 concentration
Cotton-tip applicator
Donkey anti-chicken Cy2 Jackson ImmunoResearch 703-225-155 Our lab uses this antibody at a 1:500 concentration
Ethanol (200 proof) Koptec V1016
Electroporator ECM 830 BTX Harvard Apparatus 45-0052
Fast Green FCF Sigma F7252-5G
FUGW plasmid Addgene 14883
Glass slides VWR 48311-703 Superfrost plus
Glycerol Sigma-Aldrich G5516
Heating pad Softheat
Hoescht 33342 fluorescent dye Invitrogen 62249
Imaris Bitplane
Isoflurane Patterson Veterinary 07-893-1389
Micro cover glass VWR 48382-138
Nail polish Sally Hansen Color 109
Normal goat serum Gibco 16210064
O.C.T. embedding compound Tissue-Tek 4583
Olympus MVX10 Dissecting Scope Olympus MVX10
P200 pipette reach tip Fisherbrand 02-707-138 Used for needle spacer
Parafilm Bemis PM-996
PBS pH 7.4 (10x) Gibco 70011-044
Simple Neurite Tracer FIJI https://imagej.net/Simple_Neurite_Tracer:_Basic_
Instructions
Sucrose Sigma S0389
Surgical tools RWD Life Science Small scissors and tweezers
Triton X-100 Roche 11332481001 non-ionic detergent
Tweezertrodes BTX Harvard Apparatus 45-0489 5 mm, platinum plated tweezer-type electrodes
Ultrapure distilled water Invitrogen 10977-015
Vectashield mounting media Vectashield H1000
Vetbond tissue adhesive 3M 1469SB
Zeiss 780 Upright Confocal Zeiss 780

Riferimenti

  1. Altman, J., Bayer, S. A. . Development of the cerebellar system : in relation to its evolution, structure, and functions. , (1997).
  2. Rahimi-Balaei, M., Bergen, H., Kong, J., Marzban, H. Neuronal migration during development of the cerebellum. Frontiers in Cellular Neuroscience. 12, 484 (2018).
  3. Alder, J., Cho, N. K., Hatten, M. E. Embryonic precursor cells from the rhombic lip are specified to a cerebellar granule neuron identity. Neuron. 17 (3), 389-399 (1996).
  4. Hatten, M. E., Heintz, N. Mechanisms of neural patterning and specification in the developing cerebellum. Annual Review of Neuroscience. 18, 385-408 (1995).
  5. Ben-Arie, N., et al. Math1 is essential for genesis of cerebellar granule neurons. Nature. 390 (6656), 169-172 (1997).
  6. Borghesani, P. R., et al. BDNF stimulates migration of cerebellar granule cells. Development. 129 (6), 1435-1442 (2002).
  7. Espinosa, J. S., Luo, L. Timing neurogenesis and differentiation: insights from quantitative clonal analyses of cerebellar granule cells. Journal of Neuroscience. 28 (10), 2301-2312 (2008).
  8. Markwalter, K. H., Yang, Y., Holy, T. E., Bonni, A. Sensorimotor coding of vermal granule neurons in the developing mammalian cerebellum. Journal of Neuroscience. 39 (34), 6626-6643 (2019).
  9. Shalizi, A., et al. PIASx is a MEF2 SUMO E3 ligase that promotes postsynaptic dendritic morphogenesis. Journal of Neuroscience. 27 (37), 10037-10046 (2007).
  10. Shalizi, A., et al. A Calcium-regulated MEF2 sumoylation switch controls poststynaptic differentiation. Science. 311 (5763), 1012-1017 (2006).
  11. Konishi, Y., Stegmuller, J., Matsuda, T., Bonni, S., Bonni, A. Cdh1-APC controls axonal growth and patterning in the mammalian brain. Science. 303 (5660), 1026-1030 (2004).
  12. Holubowska, A., Mukherjee, C., Vadhvani, M., Stegmuller, J. Genetic manipulation of cerebellar granule neurons in vitro and in vivo to study neuronal morphology and migration. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (85), e51070 (2014).
  13. Yang, Y., et al. Chromatin remodeling inactivates activity genes and regulates neural coding. Science. 353 (6296), 300-305 (2016).
  14. Herculano-Houzel, S. Coordinated scaling of cortical and cerebellar numbers of neurons. Frontiers in Neuroanatomy. 4, 12 (2010).
  15. Wilson, P. M., Fryer, R. H., Fang, Y., Hatten, M. E. Astn2, a novel member of the astrotactin gene family, regulates the trafficking of ASTN1 during glial-guided neuronal migration. Journal of Neuroscience. 30 (25), 8529-8540 (2010).
  16. Kokubo, M., et al. BDNF-mediated cerebellar granule cell development is impaired in mice null for CaMKK2 or CaMKIV. Journal of Neuroscience. 29 (28), 8901-8913 (2009).
  17. Schwartz, P. M., Borghesani, P. R., Levy, R. L., Pomeroy, S. L., Segal, R. A. Abnormal cerebellar development and foliation in BDNF-/- mice reveals a role for neurotrophins in CNS patterning. Neuron. 19 (2), 269-281 (1997).
  18. Segal, R. A., Pomeroy, S. L., Stiles, C. D. Axonal growth and fasciculation linked to differential expression of BDNF and NT3 receptors in developing cerebellar granule cells. Journal of Neuroscience. 15 (7), 4970-4981 (1995).
  19. Zhou, P., et al. Polarized signaling endosomes coordinate BDNF-induced chemotaxis of cerebellar precursors. Neuron. 55 (1), 53-68 (2007).
  20. Dhar, M., Hantman, A. W., Nishiyama, H. Developmental pattern and structural factors of dendritic survival in cerebellar granule cells in vivo. Scientific Reports. 8 (1), 17561 (2018).
  21. Ito, M. Synaptic plasticity in the cerebellar cortex and its role in motor learning. Canadian Journal of Neurological Sciences. 20, 70-74 (1993).
  22. Jorntell, H., Hansel, C. Synaptic memories upside down: bidirectional plasticity at cerebellar parallel fiber-Purkinje cell synapses. Neuron. 52 (2), 227-238 (2006).
  23. Nakanishi, S. Genetic manipulation study of information processing in the cerebellum. Neuroscienze. 162 (3), 723-731 (2009).
  24. Chang, C. H., et al. Atoh1 controls primary cilia formation to allow for SHH-triggered granule neuron progenitor proliferation. Developmental Cell. 48 (2), 184-199 (2019).

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Citazione di questo articolo
Chan, U., Gautam, D., West, A. E. Utilizing In Vivo Postnatal Electroporation to Study Cerebellar Granule Neuron Morphology and Synapse Development. J. Vis. Exp. (172), e62568, doi:10.3791/62568 (2021).

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