Uma técnica rápida e confiável é proposta para controlar as oscilações de forma de uma única bolha acústica aprisionada que é baseada na técnica de coalescência entre duas bolhas. As oscilações em forma de bolhas controladas por simetria em estado estacionário permitem a análise do fluxo de fluido gerado nas proximidades da interface de bolhas.
Quando localizadas próximas a barreiras biológicas, microbolhas oscilantes podem aumentar a permeabilidade da membrana celular, permitindo a internalização de fármacos e genes. Observações experimentais sugerem que a permeabilização temporária dessas barreiras pode ser devida ao estresse de cisalhamento que é exercido sobre os tecidos celulares por cavitação microstreaming. Microstreaming de cavitação é a geração de fluxos de vórtice que surgem em torno de microbolhas de ultrassom oscilantes. Para produzir tais fluxos de líquidos, as oscilações de bolhas devem desviar-se de oscilações puramente esféricas e incluir uma instabilidade translacional ou modos de forma. Estudos experimentais de escoamentos induzidos por bolhas e tensões de cisalhamento em superfícies próximas são frequentemente restritos em seu escopo devido à dificuldade de capturar deformações de forma de microbolhas de forma estável e controlável. Descrevemos o projeto de uma câmara de levitação acústica para o estudo de oscilações não esféricas controladas por simetria. Esse controle é realizado utilizando-se a técnica de coalescência entre duas bolhas que se aproximam em um campo de ultrassom suficientemente intenso. O controle de oscilações não esféricas abre caminho para um microfluxo de cavitação controlado de uma microbolha livre de superfície oscilante. Câmeras de alta taxa de quadros permitem investigar quase simultaneamente a dinâmica de bolhas não esféricas na escala de tempo acústica e o fluxo de líquido em uma escala de tempo mais baixa. Mostra-se que uma grande variedade de padrões de fluidos pode ser obtida e que eles estão correlacionados com o conteúdo modal da interface de bolhas. Demonstramos que mesmo os modos de forma de alta ordem podem criar padrões de fluidos de grande distância se a dinâmica da interface contiver vários modos, destacando o potencial de oscilações não esféricas para liberação de fármacos direcionados e localizados.
Na medicina, um medicamento administrado deve penetrar em muitos obstáculos no sistema vivo antes de atingir os alvos desejados. No entanto, a maioria das drogas são rapidamente limpas longe da corrente sanguínea. A eficiência do direcionamento é baixa e eles não podem atravessar facilmente as membranas celulares, levando à entrega ineficaz de drogas. Atualmente, o uso de microbolhas em combinação com o ultrassom tem sido proposto como um método inovador para a liberação não invasiva, precisa e direcionada de fármacos e genes para tecidos e célulaspatológicas1. Nesta abordagem, as microbolhas podem desempenhar um papel como transportadores onde as drogas livres são co-injetadas com uma suspensão de bolha de gás ou carregadas em sua superfície. As microbolhas também podem atuar como um vetor local para redirecionar a energia do ultrassom, a fim de interagir com as células. Basicamente, sob exposição ao ultrassom, as bolhas se comprimem e se expandem de forma estável, um regime chamado cavitação estável que gera fluxos de líquido e, portanto, estresse de cisalhamento em objetos próximos. As microbolhas também podem oscilar de forma não linear e expandir-se até o colapso, em regime de cavitação inercial, produzindo ondas de choque que se propagam radialmente a partir do local do colapso2. Tem sido demonstrado que a cavitação, estável ou inercial, aumenta a permeabilização das membranas celulares e, assim, aumenta a internalização de fármacos na célula3.
Em aplicações terapêuticas, entender o mecanismo da interação célula-bolha é muito importante, mas existem várias barreiras, tanto do lado científico quanto técnico, que impedem que nosso conhecimento avance. Primeiro, capturar a dinâmica das células em resposta a estímulos mecânicos induzidos por bolhas é muitodifícil4. Na escala de tempo acústica, as oscilações de microbolhas de primeira ordem podem levar à ativação de canais de membrana, facilitando a passagem molecular através de interfaces biológicas. Isso ocorre por meio da oscilação direta da membrana celular, também chamada de “massagem celular”5. A ativação do canal após estresse mecânico direto foi evidenciada usando técnicas de patch-clamp que mediram as propriedades eletrofisiológicas das membranas celulares durante e após a exposição ao ultrassom6. A medição da dinâmica celular induzida por bolhas (ou seja, o campo completo de deformação da membrana celular) na escala de tempo acústica também forneceria informações sobre o limiar de expansão da área da membrana Δ A/A necessário para induzir poros na membrana celular7. A segunda barreira é controlar o regime de bolhas em colapso para evitar a lise celular induzida por microbolhas. Colapsos de bolhas e microjatos induzidos têm sido identificados como mecanismo pelo qual ocorre perfuração da membrana 8,9. Uma vez permeabilizada, a membrana celular se repara através do auto-selamento das bicamadas lipídicas com cálcio e fusão das vesículas intracelulares9. A ocorrência de colapsos de bolhas também pode causar danos letais à célula e induzir efeitos colaterais desnecessários nas vizinhas. Em aplicações sensíveis, como a abertura da barreira hematoencefálica mediada por ultrassom, é geralmente aceito que colapsos de bolhas inerciais devem ser evitados10.
Portanto, grandes esforços são atualmente dedicados ao projeto de sequências de emissão de ultrassom, juntamente com o monitoramento e controle passivo da cavitação, a fim de garantir oscilações estáveis dasmicrobolhas11. Nesse regime estável, foi levantada a hipótese de que bolhas oscilantes estáveis desempenham um forte papel no desencadeamento da permeabilização da membrana, promovendo tensões de cisalhamento espacialmente direcionadas na membrana celular7. A tensão de cisalhamento resulta dos fluxos de líquidos criados nas proximidades das bolhas oscilantes. Esses fluxos líquidos são chamados de cavitation microstreaming, e, como mencionado acima, são um dos vários mecanismos possíveis responsáveis pelo aumento da captação de moléculas extracelulares. Quando se trata de suspensão de bolhas ou células, como ensaios de transfecção biológica in vitro12, a permeabilização por microstreaming pode ser muito mais eficiente do que a permeabilização por colapso de bolhas. Isso pode ser demonstrado por uma simples consideração geométrica. Em suspensões celulares, a sonoporação será eficiente se a maioria das células em suspensão for submetida a efeitos mecânicos suficientemente grandes (levando à permeabilização da membrana). Sabe-se que os colapsos de bolhas são direcionados na direção da quebra de simetria isotrópica, como o eixo parede-bolhas13 ou a linhagem bolha-bolha e célula-bolha unindo seu centro de massa14. O microjato produzido é, portanto, um fenômeno espacialmente localizado ao longo de um número finito de linhas que unem os centros celulares e de bolhas. Dependendo da concentração celular e de bolhas, bem como da distância célula-bolha, esse efeito pode não ser o mais eficiente para permeabilizar todo o número de células em suspensão. Em contraste, o microfluxo de cavitação é um fenômeno que ocorre em uma escala de tempo lenta, com uma grande expansão espacial em comparação com o raio da bolha. Além disso, o fluxo de líquido é distribuído por toda a bolha, podendo, portanto, impactar um número maior de células, em um intervalo muito longo. Portanto, entender o microfluxo de cavitação gerado em torno de uma bolha oscilante é um pré-requisito para controlar e quantificar a tensão de cisalhamento induzida por bolhas que é aplicada às células.
Para tanto, uma etapa preliminar consiste em controlar as oscilações esféricas e não esféricas de uma bolha impulsionada por ultrassom, uma vez que os fluxos líquidos gerados são induzidos pelo movimento da interface da bolha15,16. Em particular, as oscilações de forma das microbolhas devem ser acionadas e mantidas estáveis. Além disso, a orientação das oscilações da forma da bolha deve ser controlada para analisar adequadamente a correlação entre a dinâmica da interface da bolha e o padrão de microstreaming induzido. Ao resumir a literatura existente, é óbvio que resultados experimentais detalhados de microfluxo induzido por cavitação estão disponíveis apenas para bolhas presas a uma superfície. Microbolhas acopladas à parede são comumente usadas para avaliar a dinâmica precisa da interface e interações celulares na escala micrométrica sob um sistema de microscopia ultrarrápida. Essa configuração é terapeuticamente relevante quando se considera microbolhas vibratórias localizadas na membrana celular17,18,19. O estudo da bolha acoplada ao substrato pode, no entanto, tornar a análise da dinâmica das bolhas mais complicada, em parte devido à natureza complexa da dinâmica das linhas de contato20 e ao desencadeamento de modos de forma assimétricos21. Em aplicações médicas e biológicas, bolhas que não estão presas a uma parede são comumente encontradas em geometrias confinadas, como pequenos vasos. Isso afeta significativamente a dinâmica das bolhas e as instabilidades de forma. Particularmente, a presença de uma parede próxima desloca o limiar de pressão para o acionamento do modo de forma para valores de pressão mais baixos, dependendo do número do modo de forma e do tamanho da bolha22. A parede também afeta o microfluxo induzido por bolhas com possivelmente maior intensidade para o fluxo produzido23.
Entre todos os cenários possíveis que as microbolhas podem experimentar (livres ou presas, próximas a uma parede, colapsando ou oscilando de forma estável), propomos investigar a dinâmica não esférica de uma única bolha longe de qualquer fronteira. O arranjo experimental é baseado em um sistema de levitação acústica24 no qual uma onda de ultrassom estacionária é usada para aprisionar a bolha. Esse cenário é consistente com aplicações médicas em que uma coleção de bolhas e células suspensas coexistem em uma câmara de sonotransfecção, por exemplo. Na medida em que bolhas e células não estão muito próximas, supõe-se que a presença de uma célula não afeta a dinâmica da interface de bolhas. Quando as células seguem as trajetórias em loop do microfluxo induzido por cavitação, elas estão ciclicamente se aproximando e repelindo do local da bolha e podemos supor que a presença celular não impacta nem o padrão de fluxo nem sua velocidade média. Além disso, a dinâmica não esférica e o microfluxo induzido a partir de bolhas únicas longe da fronteira são bem conhecidos do ponto de vista teórico. Para ligar o fluxo de líquido induzido por bolhas à dinâmica do contorno de bolhas, é necessário caracterizar com precisão a dinâmica da interface de bolhas. Para tanto, é preferível adaptar a escala espaço-temporal em estudos experimentais em relação àquelas utilizadas na terapêutica para que a aquisição com câmeras comuns de alta velocidade (abaixo de 1 milhão de frames/segundo) seja possível utilizando grandes bolhas excitadas em frequências mais baixas. Ao considerar bolhas não revestidas, a autofrequência ω n de um dado modo n está relacionada ao tamanho da bolha como 25. Essa relação rádio-autofreqüência é ligeiramente modificada quando se consideram bolhas descascadas26, mas a ordem de grandeza da autofreqüência ωn permanece a mesma. Assim, investigar bolhas com raios de equilíbrio ~50μm em um campo de ultrassom de 30 kHz é semelhante ao estudo de bolhas revestidas de raios ~3μm em um campo de 1,7 MHz, como proposto por Dollet et al.27. Números de modo de forma semelhantes e, portanto, padrões de microstreaming são, portanto, esperados.
Para desencadear oscilações não esféricas da interface de bolhas, é necessário exceder um determinado limiar de pressão que é dependente do raio, como mostrado na Figura 1. As técnicas experimentais existentes baseiam-se no aumento da pressão acústica para desencadear modos de superfície (ilustrado pelo caminho (1) na Figura 1), seja pelo aumento passo a passo da pressão28 ou pela excitação de amplitude modulada responsável pelo início periódico e extinção dos modos de superfície29. As principais desvantagens dessas técnicas são (i) uma orientação aleatória do eixo de simetria das oscilações da superfície que não pode ser controlada para estar no plano da imagem, (ii) uma curta vida útil das oscilações da forma da bolha que dificulta a análise dos fluxos de líquido induzidos em escalas de tempo maiores, e (iii) o desencadeamento frequente de modos de forma instáveis. Propomos uma técnica alternativa para cruzar o limiar de pressão a uma pressão acústica constante no mapa de raio/pressão, como ilustrado pelo caminho (2) na Figura 1. Para isso, é necessário aumentar o tamanho da bolha de forma que ela fique na zona de instabilidade. Tal aumento é realizado por uma técnica de coalescência de bolhas. A coalescência de duas microbolhas, inicialmente oscilantes esfericamente, é explorada para criar uma única bolha deformada. Se a pressão acústica e o tamanho da bolha coalescida estiverem na zona de instabilidade, os modos de superfície serão acionados. Também evidenciamos que a técnica de coalescência induz oscilações de forma estáveis em regime de estado estacionário, bem como um eixo de simetria controlado definido pelo movimento retilíneo das duas bolhas que se aproximam. Como uma oscilação de forma estável é garantida ao longo de minutos, a análise do fluxo de fluido induzido por bolhas é possível semeando o meio líquido com micropartículas fluorescentes, iluminadas por uma fina folha de laser. O registro do movimento das micropartículas sólidas nas proximidades da interface de bolhas permite identificar o padrão do fluxo de fluido induzido30. O princípio geral do desencadeamento de oscilações em forma de bolha, levando a um fluxo de fluido estável no tempo, é ilustrado na Figura 2.
No protocolo a seguir, descrevemos os passos necessários para criar oscilações estáveis em forma de bolhas através da técnica de coalescência e descrevemos as medidas de fluxo de fluido. Isso inclui o projeto do sistema de levitação acústica, a calibração acústica, a nucleação de bolhas e a técnica de coalescência, a medição da dinâmica da interface de bolhas e do fluxo de fluido circundante e o processamento de imagens.
O procedimento apresentado consiste em utilizar coalescência de bolhas para desencadear oscilações em forma de bolhas em estado estacionário, controladas por simetria, permitindo o estudo do fluxo de fluido de longa duração induzido por essas oscilações. O principal desafio da técnica é o controle de oscilações não esféricas para uma bolha ser aprisionada, longe de quaisquer limites.
A maioria das técnicas existentes propostas na literatura enfocou bolhas acopladas ao<sup class=…
The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi apoiado pelo LabEx CeLyA da Universidade de Lyon (ANR-10-LABX-0060 / ANR-11-IDEX-0007).
Aspherical lens | Thorlabs | AL4050 | Lens of focus 40 mm |
Continuous wave laser source | CNI | MLL6FN | DPSS laser of wavelength 532nm, energy 400 mW |
Cylindrical plano-concave lens | Thorlabs | LJ1277L1-A | lens of focus -25?4mm |
Cylindrical plano-concave lens | Thorlabs | LK1900L1 | lens of focus 250 mm |
Fluorescent particles | Duke Scientific | R700 | Red polymer fluorescent microspheres |
Function generator | Agilent | HP33120 | Generator of function feeding the ultrasound transducer |
High-speed camera | Vision Research | Phantom v12.0 | High-speed recording up to 1 Mfps |
Liquid medium | Carlo Erba | Water for analysis | Demineralized, undegassed water |
Multiphysics software | Comsol | None | Softwate for simulating the acoustic field of the levitation chamber |
Nd:Yag pulsed laser | New Wave Research | Solo III-15 | 5 ns pulse duration, λ=532 nm, 3.5 mm beam diameter, up to 50 mJ |
Plano-concave lens | Thorlabs | N-BK7 | lens of focus 125 mm |
Spherical concave lens | Thorlabs | N-SF11 | Bi-concave lens of focus -25mm |
Ultrasound transducer | SinapTec | Custom-made | Nominal frequency 31kHz, active area 35mm diameter |
Visualization software | NIH | ImageJ | Software for image processing and analysis in Java |
XY Linear stage | Newport | M-406 | Displacement stage with micrometric screw |
Z-axis linear stage | Edmund Optics | 62-299 | Vertical displacement stage with micrometric screw |