Мы предоставляем протокол для создания фармакологических DYT/PARK-ATP1A3 дистония мыши модели через имплантацию канюли в базальных ганглиев и мозжечка подключены к осмотических насосов. Мы описываем индукцию дистонии, как движения с помощью применения двигательного вызова и характеристики фенотипа с помощью поведенческих систем скоринга.
Генетически модифицированные модели мышей сталкиваются с ограничениями, особенно при изучении двигательных расстройств, где большинство доступных трансгенных моделей грызунов не представляют моторный фенотип, напоминающий клинические аспекты болезни человека. Фармакологические модели мышей позволяют более непосредственно изучать патомеханизмы и их влияние на поведенческий фенотип. Осмотические насосы, подключенные к канюли мозга, открывают возможность создания фармакологических моделей мышей с помощью местных и хронических лекарств. Для наследственного расстройства движения быстрого начала дистонии-паркинсонизма, потеря функции мутации в No 3-субъединицыNaq/K-ATPase может быть смоделирована весьма специфической блокады через гликозид уабаин. Для того, чтобы локально блокировать No 3-субъединит в базальных ганглиев и мозжечка, которые являются двумя структурами мозга, как полагают, активно участвует в патогенеза быстрого начала дистонии-паркинсонизма, двусторонняя канюля стереотаксис имплантируется в стриатум и дополнительные одной канюли вводится в мозжечок. Каннулы соединены через виниловые трубки с двумя осмотическими насосами, которые подкожно имплантируются на спину животных и позволяют хронические и точные поставки уабаина. Фармакологическая модель мыши для быстрого начала дистонии-паркинсонизма несет в себе дополнительное преимущество повторения клинических и патологических особенностей азимптоматических и симптоматических носителей мутаций. Так же, как носители мутации быстрого начала дистонии паркинсонизма, уабаин проникнуты мышей развивать дистония, как движения только после дополнительного воздействия стресса. Мы демонстрируем мягкую парадигму стресса и внедряем две модифицированные системы скоринга для оценки фенотипа двигателя.
Преимущества непрерывной доставки препарата непосредственно в мозг многочисленны. Повторяющиеся и частые инъекции, которые представляют собой ненужный фактор стресса для животных, можно избежать и более постоянная внутримозговая концентрация препарата может быть достигнута. Это особенно актуально, когда системно вводимые препараты не могут легко проникнуть в геммоугефалический барьер. Кроме того, хроническая доставка лекарств с помощью осмотических насосов позволяет локализовать доставку субстратов, которые в противном случае были бы системно-широкими побочными эффектами. Препараты могут быть доставлены в целенаправленной образом желаемых структур мозга, в результате эффект может быть непосредственно прослеживается. Это может быть использовано для целого ряда приложений, таких как изучение терапевтических эффектов, а также изучение патомеханизмов. Последнее приложение было использовано в проекте в настоящем для того, чтобы создать фармакологическую модель мыши для дистонии.
Анализ и понимание дистонических синдромов, которые представляют собой третье наиболее распространенное расстройство движения, были сильно ограничены тем фактом, что генетические модели животных в значительной степени не в состоянии воспроизвести фенотип болезни, найденный у больного человека, а также патофизиологии. Этот вопрос не ограничивается дистоническими синдромами, но на самом деле касается многих трансгенных моделей грызуновв области нарушений движения 1,,2. Причина отсутствия фенотипа в трансгенных моделях грызунов может быть основана на высокоэффективных компенсационных механизмах3. В случае дистонии, болезнь характеризуется непроизвольными сокращениями мышц, вызывая скручивание движений и ненормальные позы4. Изучение вторичных причин (т.е. черепно-мозговой травмы) дистонических симптомов, помогло определить структуры, участвующие в проявлении этих двигательных аномалий, таких как базальныеганглии 5. Исследования изображений мозга наследственных форм дистонии показали функциональные аномалии почти во всех областях мозга, ответственных за контроль двигателя и сенсорнойинтеграции 6,7. Тем не менее, модели грызунов по-прежнему необходимы для углубления понимания нервных дисфункций на молекулярном и крупномасштабном сетевом уровне, а также для разработки терапевтических вариантов. Именно здесь фармакологические модели мышей предлагают возможность более точной репликации клинических и патологических особенностей заболевания.
Быстрый дистония-паркинсонизм (DYT/PARK-ATP1A3; RDP; DYT12) является одной из наследственных форм дистонии. Это вызвано потерей функциональных мутаций в гене АТФ1-3, который кодирует для 3-субъединитNaq/K-ATPase8. Кроме того, признается, что носители генных мутаций могут быть свободны от симптомов в течение многих лет, прежде чем остро развивается постоянная обобщенная дистония и паркинсонизм после воздействия стрессового события. Действительно, penetrance DYT/PARK-ATP1A3 является неполным и стрессовых событий, действующих в качестве триггера диапазоне от физического перенапряжения и экстремальных температур чрезмерного потребления алкоголяи инфекций 9,10. Для того, чтобы изучить DYT/PARK-ATP1A3 и найти потенциальные терапевтические вмешательства, он был опробован много раз, чтобы имитировать стресс-зависимого развития болезни в моделях грызунов. Однако, помимо одной существующей генетической модели мыши DYT/PARK-ATP1A3, где переходные ненормальные и судороги, как движения были вызваны переохлаждением, все опубликованные генетические модели мыши для DYT/PARK-ATP1A3 не смогли произвести дистонические симптомы1,11,12. Кальдерон и др. ранее продемонстрировали, что блокирование No 3-субъединит на двусторонней основе в базальных ганглиев и мозжечка через сердечный гликозид уабаин в диких мышей типа приводит к мягкой походкенарушения 13. Дополнительное воздействие электрошоков в теплой среде привело к дистонической и брадикинетической фенотип, тем самым продемонстрировав, что хроническая и целевая перфузия уабаина с последующим стрессом успешно имитирует фенотип DYT/PARK-ATP1A3.
Тем не менее, подвергая животных электрическим током ног в теплой среде 38-40 градусов по Цельсию в течение двух часов-период вызывает боль и беспокойство у животных, которые представляют собой смешанные факторы, особенно для оценки изменений в системе катехоламинов, связанных с развитием дистонии. Таким образом, мы описываем другой вид стресса парадигмы с высокой трансляционной стоимости, которая относится к тому, что легкой до умеренной упражнения были описаны как триггеры в DYT/ PARK-ATP1A3пациентов 9. Кроме того, повторяющиеся упражнения является известным триггером для очаговой дистонии14. Мыши неоднократно подвергались сложным моторным задачам, состоящим из трех спусков деревянного столба (“полюс-тест”) и трех пробежек на аппарате Ротарода (“Тест производительности Ротарода”). Размещение животных на вершине 50-сантиметрового деревянного столба было использовано для принуждения животных к спуску, аппарат Ротарода использовался для принудительной деятельности мышей, помещая их на вращающийся стержень.
Характеристика моторного фенотипа мышиной модели для дистонии является особенно сложной из-за отсутствия предопределенных тестов и оценок. Тем не менее, один вариант оценки двигательной инвалидности неоднократно использовался в течение последних лет для того, чтобы оценить тяжесть и распределение дистонии, как движенияу грызунов 13,15,16. Настоящим мы представляем модифицированную версию рейтинговой шкалы дистонии, которая доказала свою эффективность в оценке фенотипа животных, похожего на дистонию, при наблюдении в течение четырех минут. В качестве второго метода оценки дистонии, как движения, мы представляем недавно разработанную систему скоринга для оценки ненормальных движений во время теста подвески хвоста. Это позволяет оценить частоту и продолжительность дистонии, как движения и позы передних конечностей, задних конечностей, а также туловища.
Эта фармакологическая модель мыши DYT/PARK-ATP1A3 позволяет детально анализ внутримозговых структурных и нейрохимических изменений, вызванных исключительно ингибированием ионного насоса натрия и калия в базальных ганглиях и мозжечках, а также изменениями, связанными со стрессовым воздействием. В случае мышей, максимум два осмотических насосов могут быть подкожно имплантированы. В настоящем настоящем мы представляем метод, подробно описывающий хроническую доставку лекарств в несколько структур мозга путем реализации двойной канюли, подключенной к адаптеру бифуркации в дополнение к одной канюле. Эта методология может быть использована для любого приложения, требующего нескольких структур мозга, которые будут проникнуты одновременно и хронически.
Мы представляем модель мыши редкого расстройства движения, где у пациентов развиваются постоянные симптомы после воздействия стресса. Это предполагаемое генно-экологическое взаимодействие до сих пор не изучено, но может представлять собой один из ключевых патомеханизмов в развитии DYT/PARK-ATP1A3. Различные методы подвергая мышей стресс были опубликованы в прошлом и включают в себя электрическим током ноги, сдерживание, холодная или теплая окружающая среда и воздействиеразличных запахов 11,12,13. В попытке подвергать мышей мягкому стресс-фактору с трансляционным значением, мы описываем повторяющееся субъективим мышей сложным моторным задачам. Для полюса тест, ouabain перфузных животных показали непроизвольные гиперэкстензии передних конечностей и задних конечностей. Эти движения были очень похожи на дистонии, как движения, наблюдаемые во время 4-минутной видеозаписи животных, а также хвост подвески испытания. Применение легкого стресса в виде сложных двигательных задач может оказаться полезным в других моделях мыши, показывающих двигательные симптомы или нейродегенерацию, где генно-экологические взаимодействия массово влияют на степень прогрессирования заболевания.
Существует общее отсутствие предопределенных поведенческих задач, а также рейтинговых шкал для классификации аномальных движений и поз у мышей. Большинство доступных двигательных задач выявить неспецифические аномалии, такие как задняя сжимая, который является известным явлением во многих моделях мыши двигательных расстройств с нейродегенерации18,19. Для правильной характеристики фенотипа, однако, необходимо проанализировать, является ли модель мыши резюмирует основные особенности заболевания. В этом случае мы представляем модифицированную версию шкалы рейтинга дистонии, используемую ранее для оценки двигательной инвалидности в моделяхмышей дистонии 15,,16. Мы дополнительно разработали систему оценки на основе наблюдателей для теста на подвеску хвоста, которая была создана по аналогии с клиническими рейтинговыми шкалами дистонии человека. Обе шкалы рейтинга показывают значительно более высокий балл в ouabain-perfused, подчеркнул мышей по сравнению с ouabain перфектом, не подчеркнул животных, а также транспортных средств проникнуты животных. Недостатками любой системы подсчета очков на основе наблюдателей являются необходимая подготовка тарифов для обеспечения последовательного скоринга и уменьшения изменчивости наблюдателей, а также опасность возможного смещения тарифера, если он не будет полностью ослеплен анализируемой группой. Тем не менее, системы оценки на основе наблюдателей по-прежнему представляют можно легкодоступный метод характеристики фенотипа и могут быть адаптированы к модели мыши проанализированы, как это делается в настоящем проекте для оценки дистонии, как движения. Для обеспечения последовательного скоринга среди различных тарифов, учебные видео должны быть доступны. Чтобы уменьшить любые потенциальные предубеждения, рекомендуется, чтобы различные тарифы оценка же видеоклипы и что отдельные баллы усредняться. Обе системы скоринга, упомянутые в этой работе, записывают наличие дистонии, как движения у животных. Шкалы рейтинга могут быть адаптированы в соответствии с конкретными требованиями в рамках проекта, как это было сделано ранее Ip et al., где исключительно задние конечности были забиты для дистонии, как движения в мышиной модели для дистонии 1 (DYT-TOR1A)20. Рейтинговые шкалы могут быть дополнены другими ранее опубликованными системами скоринга, оценивая, например, степень брадикинезии у грызунов, как это делается с оценкой инвалидности передвижения Calderon et al.13.
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана Федеральным министерством образования и научных исследований (BMBF DysTract to C.W.I.) и Междисциплинарным центром клинических исследований при Университете Вюрцбурга (No2-CSP3 в Лос-Анджелесе). Авторы благодарят Луизу Фриш, Кеали Рём, Веронику Сенгер и Хайко Менцеля, а также Хельгу Брюннер за заботу о животных.
0.9% saline | Fresenius Kabi | PZN06178437 | |
Alzet osmotic pumps | Durect | 4317 | model 1002, flowrate 0.25 μL/h |
Anchor Screws | AgnTho's | MCS1x2 | 2 mm long with a thread of 1mm O.D. |
Bulldog Clamps | Agntho's | 13-320-035 | straight, 3.5 cm |
Bupivacain 0.25% Jenapharm | mibe GmbH Arzneimittel | ||
Cannula and Minipump Holder | Stoelting | 51636 | designed to hold 3.4 mm cannula heads |
Cannula Bifurcation | Plastics One | 21Y | custom made |
Cannula tubing | Plastics One | C312VT/PKG | vinyl, 0.69 mm x 1.14 mm |
Dumont #5SF forceps | Fine Science Tools | 11252-00 | fine forceps |
eye cream Bepanthen | Bayer Vital GmbH | ||
Gas Anesthesia Mask for Stereotaxic, Mouse | Stoelting | 56109M | |
Hardened fine scissors | Fine Science Tools | 14090-09 | |
High Speed Rotary Micromotor Kit | Foredom | K.1070-2 | |
Isoflurane CP 1 mL/mL, 250 mL | cp-pharma | 1214 | prescription needed |
Isoflurane System Dräger Vapor 19.3 | Dr. Wilfried Müller GmbH | ||
Kallocryl A/C | Speiko | 1615 | dental cement, liquid |
Kallocryl CPGM rot | Speiko | 1692 | dental cement, red powder |
Mouse and neonates adaptor | Stoelting Co. | 51625 | adaptor for mice for a traditional U-frame |
needle holder | KLS Martin Group | 20-526-14 | |
Non-Rupture Ear Bars and Rubber Tips f/ Mouse Stereotaxic | Stoelting Co. | 51649 | |
Octenisept | Schülke | 118211 | |
Osmotic Pump Connector Cannula for Mice, double | Plastics One | 3280PD-3.0/SPC | 28 Gauge, length 4.0 mm, c/c distance 3.0 mm |
Osmotic Pump Connector Cannula for Mice, single | Plastics One | 3280PM/SPC | 28, Gauge, custom length 3.0 mm |
Ouabain octahydrate 250 mg | Sigma-Aldrich | 03125-250MG | CAUTION: toxic |
Precision balance | Kern & Sohn | PFB 6000-1 | |
Rectal Thermal Probe | Stoelting | 50304 | |
Rimadyl 50 mg/mL, injectable | Zoetis | Carprofen, prescription needed | |
Rodent Warmer X1 with Mouse Heating Pad | Stoelting | 53800M | |
RotaRod Advanced | TSE Systems | ||
screw driver set | Agntho's | 30090-6 | |
Stainless Steel Burrs | Agntho's | HM71009 | 0.9 mm Ø burr |
Stainless Steel Burrs | Agntho's | HM71014 | 1.4 mm Ø burr |
StereoDrive | Neurostar | software | |
Stereotaxic instrument | Stoelting Co. | custom made by Neurostar | |
Stereotaxic robot | Neurostar | ||
suture: coated vicryl, polyglatin 910 | Ethicon | V797D | |
ThermoMixer C | Eppendorf AG | 5382000015 |