Describimos el procedimiento para la diferenciación in vitro de células madre embrionarias de ratón en células neuronales utilizando el método de la gota colgante. Además, realizamos un análisis fenotípico exhaustivo a través de RT-qPCR, inmunofluorescencia, ARN-seq y citometría de flujo.
Describimos el procedimiento paso a paso para cultivar y diferenciar las células madre embrionarias de ratón en linajes neuronales, seguido de una serie de ensayos para caracterizar las células diferenciadas. Las células madre embrionarias de ratón E14 se utilizaron para formar cuerpos embrionarios a través del método de la gota colgante, y luego se indujeron a diferenciarse en células progenitoras neurales por ácido retinoico, y finalmente se diferenciaron en neuronas. Los experimentos cuantitativos de reacción en cadena de la polimerasa de transcripción inversa (RT-qPCR) e inmunofluorescencia revelaron que los progenitores neurales y las neuronas exhiben marcadores correspondientes (nestina para los progenitores neurales y neurofilamento para las neuronas) en los días 8 y 12 después de la diferenciación, respectivamente. Los experimentos de citometría de flujo en una línea E14 que expresan un informador de GFP impulsado por el promotor Sox1 mostraron que aproximadamente el 60% de las células en el día 8 son GFP positivas, lo que indica la diferenciación exitosa de las células progenitoras neurales en esta etapa. Finalmente, se utilizó el análisis RNA-seq para perfilar los cambios transcriptómicos globales. Estos métodos son útiles para analizar la participación de genes y vías específicas en la regulación de la transición de la identidad celular durante la diferenciación neuronal.
Desde su primera derivación de la masa celular interna de los blastocistos de ratón en desarrollo1,2,las células madre embrionarias de ratón (mESC) se han utilizado como herramientas poderosas para estudiar la autorrenovación y diferenciación de las células madre3. Además, el estudio de la diferenciación mESC conduce a una tremenda comprensión de los mecanismos moleculares que pueden mejorar la eficiencia y la seguridad en la terapia basada en células madre en el tratamiento de enfermedades como los trastornos neurodegenerativos4. En comparación con los modelos animales, este sistema in vitro proporciona muchas ventajas, incluida la simplicidad en la práctica y la evaluación, el bajo costo en el mantenimiento de las líneas celulares en contraste con los animales y la relativa facilidad en las manipulaciones genéticas. Sin embargo, la eficiencia y la calidad de los tipos de células diferenciadas a menudo se ven afectadas por diferentes líneas de mESCs, así como por los métodos de diferenciación5,6. Además, los ensayos tradicionales para evaluar la eficiencia de la diferenciación se basan en el examen cualitativo de genes marcadores seleccionados que carecen de robustez y, por lo tanto, no logran comprender los cambios globales en la expresión génica.
Aquí pretendemos utilizar una batería de ensayos para la evaluación sistemática de la diferenciación neuronal. Utilizando tanto análisis tradicionales in vitro en marcadores seleccionados como ARN-seq, establecemos una plataforma para medir la eficiencia de diferenciación, así como los cambios transcriptómicos durante este proceso. Basándonos en un protocolo previamente establecido7,generamos cuerpos embrioides (EB) a través de la técnica de gota colgante, seguida de la inducción utilizando cantidad suprafisiológica de ácido retinoico (AR) para generar células progenitoras neurales (NPC), que posteriormente se diferenciaron a neuronas con medio de inducción neural. Para examinar la eficiencia de la diferenciación, además de los ensayos tradicionales de RT-qPCR e inmunofluorescencia (IF), se realizó citometría de flujo y ARN-seq. Estos análisis proporcionan una medición exhaustiva de la progresión de la diferenciación específica de la etapa.
El método para la diferenciación neuronal de las células madre embrionarias de ratón se ha establecido durante décadas y los investigadores han seguido modificando los protocolos anteriores o creando otros nuevos para diversos fines7,10,11. Utilizamos una serie de ensayos para analizar exhaustivamente la eficiencia y el progreso de las etapas de diferenciación de las mESCs a las neuronas, que pueden usarse en el análisis …
The authors have nothing to disclose.
Este trabajo fue apoyado por una subvención del NIH (1R35GM133496-01) a Z. Gao. Nos gustaría agradecer al Dr. Ryan Hobbs por la asistencia en la sección. Agradecemos las instalaciones centrales de Penn State College of Medicine, incluidas las Ciencias del Genoma y la Bioinformática, las Imágenes Avanzadas de Microscopía de Luz y la Citometría de Flujo. También agradecemos a la Dra. Yuka Imamura por la asistencia en el análisis de ARN-seq.
0.05% Trypsin + 0.53mM EDTA 1X | Corning | 25-052-CV | |
0.1% Gelatin | Sigma | G1890-100G | Prepared in de-ionized water |
16% Paraformaldehyde | Thermo Scientific | 28908 | Diluted in 1X PBS |
40-μm cell strainer | Falcon | 352340 | |
Albumax | Thermo Fisher Scientific | 11020021 | |
AlexaFluor 488 goat anti-mouse IgG (H+L) | Invitrogen | A11001 | Antibody was diluted at 1:500 for IF |
Alkaline Phosphatase Staining Kit II | Stemgent | 00-0055 | |
AzuraQuant Green Fast qPCR Mix LoRox | Azura Genomics | AZ-2105 | |
B27 supplement | Thermo Fisher Scientific | 17504044 | |
BD FACSCanto | BD | 657338 | |
bFGF | Sigma | 11123149001 | |
BioAnalyzer High Sensitivity DNA Kit | Agilent | 5067-4626 | |
Chir99021 | Cayman Chemicals | 13122 | |
Chloroform | C298-500 | Fisher Chemical | |
DAPI | Invitrogen | R37606 | |
DMEM | Corning | 10-017-CM | |
DMEM/F12 medium | Thermo Fisher Scientific | 11320033 | |
EB buffer | Qiagen | 19086 | |
Ethanol | 111000200 | Pharmco | Diluted in de-ionized water |
Fetal bovine serum | Atlanta Biologicals | S10250 | |
Fisherbrand Superfrost Plus Microscope Slides | Fisher Scientific | 12-550-15 | |
HiSeq 2500 Sequencing System | Illumina | SY-401-2501 | |
Isopropanol | BDH1133-4LG | BDH VWR Analytical | Diluted in de-ionized water |
L-glutamine | Thermo Fisher Scientific | 25030024 | |
LIF | N/A | N/A | Collected from MEF supernatant |
m18srRNA primers | IDTDNA | N/A | 5'-GCAATTATTCCCCATGAACG-3' 5'-GGCCTCACTAAACCATCCAA-3' |
MEM Non-essential amino acids | Corning | 25-025-Cl | |
mNanog primers | IDTDNA | N/A | 5'-AGGCTTTGGAGACAGTGAGGTG-3' 5'-TGGGTAAGGGTGTTCAAGCACT-3' |
mNes primers | IDTDNA | N/A | 5'-AGTGCCCAGTTCTAGTGGTGTCC-3' 5'-CCTCTAAAATAGAGTGGTGAGGGTTG-3' |
mNeuroD1 primers | IDTDNA | N/A | 5'-CGAGTCATGAGTGCCCAGCTTA-3' 5'-CCGGGAATAGTGAAACTGACGTG-3' |
mOct4 primers | IDTDNA | N/A | 5'-AGATCACTCACATCGCCAATCA-3' 5'-CGCCGGTTACAGAACCATACTC-3' |
mPax6 primers | IDTDNA | N/A | 5'-CTTGGGAAATCCGAGACAGA-3' 5'-CTAGCCAGGTTGCGAAGAAC-3' |
N2 supplement | Thermo Fisher Scientific | 17502048 | |
Nestin primary antibody | Millipore | MAB5326 | Antibody was diluted at 1:200 for IF |
Neural basal | Thermo Fisher Scientific | 21103049 | |
Neurofilament primary antibody | DSHB | 2H3 | |
NEXTflex Illumina Rapid Directional RNA-Seq Library Prep Kit | BioO Scientific | NOVA-5138-07 | |
PD0325901 | Cayman Chemicals | 13034 | |
Penicillin/streptomycin | Corning | 30-002-Cl | |
Phosphate-buffered saline (PBS) | N/A | N/A | Prepared in de-ionized water |
– Potassium chloride | P217-500G | VWR | |
– Potassium phosphate monobasic anhydrous | 0781-500G | VWR | |
– Sodium chloride | BP358-10 | Fisher Bioreagents | |
– Sodium phosphate, dibasic, heptahydrate | SX0715-1 | Milipore | |
Random hexamer primer | Thermo Scientific | SO142 | |
Retinoic acid | Sigma | R2625 | Prepared in DMSO |
Sodium pyruvate | Corning | 25-000-Cl | |
Sucrose | Sigma | 84097 | Diluted in 1X PBS |
SuperScript III Reverse Transcriptase | Invitrogen | 18064022 | |
Tissue-Tek O.C.T. compound | Sakura | 4583 | |
TriPure Isolation Reagent | Sigma-Aldrich | 11667165001 | |
TruSeq Rapid | Illumina | 20020616 | |
β-mercaptoethanol | Fisher BioReagents | BP176-100 |