O protocolo aqui descrito destaca as principais etapas na diferenciação de células endoteliais cerebrais derivadas de células-tronco pluripotentes induzidas, na preparação de Neisseria meningitidis para infecção e na coleta de amostras para outras análises moleculares.
A meningite meningocócica é uma infecção com risco de vida que ocorre quando Neisseria meningitidis (meningococo , Nm) pode obter acesso ao sistema nervoso central (SNC) penetrando em células endoteliais cerebrais (CEBs) altamente especializadas. Como Nm é um patógeno humano-específico, a falta de sistemas modelo in vivo robustos torna o estudo das interações patógeno-hospedeiro entre Nm e CEBs desafiador e estabelece a necessidade de um modelo baseado em humanos que imite BECs nativas. As CEBs possuem propriedades de barreira mais apertadas quando comparadas às células endoteliais periféricas, caracterizadas por tight junctions complexas e elevada resistência elétrica transendotelial (TEER). No entanto, muitos modelos in vitro , como as CEBs primárias e as CEBs imortalizadas, não possuem ou perdem rapidamente suas propriedades de barreira após a remoção do microambiente neural nativo. Avanços recentes em tecnologias de células-tronco humanas desenvolveram métodos para derivar células endoteliais cerebrais a partir de células-tronco pluripotentes induzidas (iPSCs) que melhor fenocopiam as CEBs quando comparadas a outros modelos humanos in vitro . O uso de BECs derivadas de iPSC (iPSC-BECs) para modelar a interação Nm-BEC tem o benefício de usar células humanas que possuem propriedades de barreira BEC e pode ser usado para examinar a destruição de barreira, ativação imune inata e interação bacteriana. Aqui demonstramos como derivar iPSC-BECs de iPSCs, além de preparação bacteriana, infecção e coleta de amostras para análise.
A barreira hematoencefálica (BHE) e a barreira meníngea sangue-LCR (mBCSFB) são barreiras celulares extremamente apertadas que separam a circulação do sistema nervoso central (SNC) e são compostas principalmente por células endoteliais cerebrais (CEBs) altamente especializadas1,2. Juntas, as CEBs mantêm a homeostase cerebral adequada, regulando nutrientes e resíduos dentro e fora do cérebro, enquanto excluem muitas toxinas, drogas e patógenos 1,2. A meningite bacteriana ocorre quando as bactérias transmitidas pelo sangue são capazes de interagir e penetrar na barreira formada pelas CEBs e causar inflamação. Neisseria meningitidis (Nm, meningococo) é uma bactéria Gram-negativa que coloniza a nasofaringe de 10% a 40% dos indivíduos saudáveis, mas em alguns casos pode causar doença sistêmica grave3. Nos indivíduos afetados, o Nm pode ter acesso à corrente sanguínea, onde pode causar púrpura fulminante, bem como penetrar nas CEBs que têm acesso ao SNC, causando meningite3. O Nm é uma das principais causas de meningite bacteriana em todo o mundo e, apesar dos esforços de vacinação, ainda é uma causa primária de meningite4. A intervenção médica moderna, como o tratamento com antibióticos, tem tornado essas condições sobreviventes, no entanto, aqueles afetados com meningite muitas vezes ficam com danos neurológicos permanentes 5,6.
Estudos prévios identificaram fatores bacterianos e sinalização do hospedeiro que contribuem para as interações Nm-BEC 7,8,9,10,11. As adesinas e invasinas identificadas, como a proteína de opacidade Opc e pili tipo IV, bem como receptores como CD147, têm sido conduzidas em vários modelos de BEC in vitro, porém esses modelos carecem de muitas propriedades definidoras de BHE7,9,11,12. A compreensão completa das interações Nm-BEC permanece indefinida devido parcialmente à incapacidade de utilizar modelos in vivo, proteção vacinal incompleta e falta de modelos BEC humanos robustos in vitro.
A modelagem de hBECs in vitro tem sido um desafio devido às propriedades únicas das CEBs. Comparadas às células endoteliais periféricas, as CEBs apresentam uma série de fenótipos que potencializam suas propriedades de barreira, como a alta resistência elétrica transendotelial (TEER) devido às tight junctions complexas12. Uma vez removidas do microambiente cerebral, as CEBs perdem rapidamente suas propriedades de barreira, limitando a utilidade de modelos primários ou imortalizados in vitro, que formam apenas uma barreira fraca12,13. A combinação da especificidade humana de infecções por Nm, a falta de modelos robustos in vivo e os desafios para modelar as CEBs humanas in vitro criam a necessidade de melhores modelos para entender a complexa interação patógeno-hospedeiro entre Nm e CEBs. Recentemente, utilizando tecnologias modelo de células-tronco pluripotentes induzidas por humanos (iPSC), células semelhantes a ECEC têm sido derivadas de iPSCs que melhor mimetizam as CEBs in vivo12,13,14,15. As iPSC-BECs são de origem humana, facilmente escaláveis e possuem fenótipos BEC esperados em comparação com suas contrapartes primárias ou imortalizadas12,13,14,15. Além disso, nós e outros demonstramos que as iPSC-BECs são úteis para modelar várias doenças do SNC, como interação patógeno-hospedeiro, doença de Huntington e deficiência de MCT8 que causa a síndrome de Allan-Hurndon-Dudley16,17,18,19,20,21. Aqui, demonstramos como derivar iPSC-BECs de fontes renováveis de iPSC e a infecção de iPSC-BECs com Nm levando à ativação da resposta imune inata. Acreditamos que este modelo é útil para interrogar a interação patógeno-hospedeiro que não pode ser recapitulada em outros modelos in vitro e é especialmente útil quando examinamos interações com patógenos humanos específicos, como o Nm.
A modelagem de BECs e do BBB tem tido desafios, pois as CEBs humanas primárias e imortalizadas, in vitro, tendem a carecer de fenótipos de barreira robustos. O advento das tecnologias de células-tronco humanas permitiu a geração de células BEC-like derivadas de iPSC que retêm fenótipos BBB característicos esperados, como marcadores endoteliais, expressão de tight junction, propriedades de barreira, resposta a outros tipos de células do SNC e transportadores funcionais de efluxo 12,13,14,15, <sup class…
The authors have nothing to disclose.
O L.M.E. é apoiado pelo programa de treinamento em pesquisa da DFG GRK2157 intitulado “3D Tissue Models for Studying Microbial Infections by Human Pathogens” concedido a A. S-U. B.J.K. é apoiado por uma bolsa de pós-doutorado da Fundação Alexander von Humboldt. Além disso, agradecemos a Lena Wolter por sua assistência técnica na geração dos iPSC-BECs na cultura.
Accutase (1x) | Sigma | A6964 | Enzymatic cell dissociation reagent |
Acetic acid | Sigma | A6283 | |
All-trans retinoic acid (RA) | Sigma | R2625 | |
Anti-CD31 (PECAM-1) | Thermo Scientific (Labvision) | RB-10333 | |
Anti-Claudin-5 | Invitrogen | 4C3C2 | |
Anti-Glut-1 | Thermo Scientific (Labvision) | SPM498 (MA5-11315) | |
Anti-Occludin | Invitrogen | 33-1500 | |
Anti-VE-cadherin | Santa Cruz | sc-52751 | |
Anti-ZO-1 | Invitrogen | 33-9100 | |
Bacto Proteose Peptone | BD | 211684 | |
b-Mercaptoethanol | Merck (Sigma-Aldrich) | 805740 | |
Cell culture plates and flasks | Sarstedt | ||
Centrifuge (Heraeus Megafuge 1.0R) | Thermo Scientific | ||
Class II biosafety cabinet | Nuaire | NU-437-400E | |
CO2 Incubator (DHD Autoflow CO2 Air-Jacketed Incubator) | Nuaire | ||
Collagen IV | Sigma | C5533 | |
Columbia ager + 5 % sheep blood | Biomerieux | 43049 | |
Costar Transwell polyester filters (12- or 24-well) | Corning | 3460, 3470 | |
D(+)-Glucose | Merck (Sigma-Aldrich) | G8270 | |
DAPI | Invitrogen | D1306 | |
DMEM/F12 | Gibco | 31330-038 | |
DMSO | ROTH | A994.1 | |
Dulbecco's phosphate-buffered saline (DPBS) | Gibco | 21600-069 | |
Epithelial Volt-Ohm Meter (Millicell ERS-2) with STX electrode | Merck (Millipore) | MERS00002 | |
Fe(NO3)3 | ROTH | 5632.1 | |
Fibronectin | Sigma | F1141 | |
Fluoresence microscope (Eclipse Ti) | Nikon | ||
Hemacytometer (Neubauer) | A. Hartenstein | ZK06 | |
Human basic fibroblast growth factor (bFGF) | PeproTech | 100-18B | |
Human Endothelial Serum Free Medium (hESFM) | Gibco | 11111-044 | |
Inverted microscope (Wilovert) | Hund (Will Wetzlar) | ||
iPS(IMR90)-4 cells | WiCell | ||
Kellogg's supplement | To prepare 110 ml of Kellogg's supplement, prepare 100 ml of 4 g/ml glucose, 0.1 g/ml glutamine, and 0.2 mg/ml thiamine pyrophosphate and 10 ml of 5 mg/ml Fe(NO3)3 and combine the solutions. Filter sterilize and store aliquoted at -20 °C. | ||
Knockout serum replacement (KOSR) | Gibco | 10828-028 | |
L-glutamine (GlutaMAX) | Invitrogen | 35050-038 | |
LunaScript RT SuperMix Kit | NEB | E3010L | cDNA synthesis kit |
Matrigel Matrix | Corning | 354230 | |
Methanol | ROTH | 4627.5 | |
MgCl2 | ROTH | KK36.1 | |
Micropipettes (Research Plus) | Eppendorf | ||
NaHCO3 | ROTH | 6329 | |
Nonessential amino acids (NEAA) | Gibco | 11140-035 | |
NucleoSpin RNA isolation kit | Machery-Nagel | 740955 | RNA isolation kit |
Pipette boy (Accu-Jet Pro) | Brand | ||
Platelet poor plasma-derived serum, bovine (PDS) | Fisher | 50-443-029 | |
PowerUp SYBR Green Master Mix | Applied Biosystems | A25742 | qPCR master mix |
qPCR film (MicroAmp Optical Adhesive Film) | Applied Biosystems | 4211971 | |
qPCR plates (MicroAmp Fast 96-well) | Applied Biosystems | 4346907 | |
ROCK inhibitor, Y27632 dihydrochloride | Tocris | 1254 | |
RT-PCR thermo cycler (StepOnePlus) | Applied Biosystems | 4376600 | |
Serological pipettes | Sarstedt | ||
StemFlex basal medium + 50x StemFlex supplement | Gibco | A3349401 | Stem-cell maintenance medium |
Swinging Bucket Rotor (Heraeus #2704) | Thermo Scientific | ||
Thiamine pyrophosphate | Sigma | C8754-5G | |
Trypan Blue Solution, 0.4% | Gibco | 15250061 | |
Versene | Gibco | 15040-033 | Non-enzymatic cell dissociation reagent (EDTA) |