Здесь представлен протокол для временного открытия гематоэнцефалического барьера (ГЭБ) либо фокально, либо по всему мозгу мыши для доставки флуоресцентно меченых антител и активации микроглии. Также представлен метод обнаружения доставки антител и активации микроглии с помощью гистологии.
Только небольшая часть терапевтических антител, нацеленных на заболевания головного мозга, поглощается мозгом. Сфокусированный ультразвук дает возможность увеличить поглощение антител и взаимодействие через преходящее открытие гематоэнцефалического барьера (ГЭБ). В нашей лаборатории мы разрабатываем терапевтические подходы для нейродегенеративных заболеваний, при которых антитело в различных форматах доставляется через ГЭБ с использованием микропузырьков, сопутствующих целенаправленному ультразвуковому применению через череп, нацеленный на несколько пятен, подход, который мы называем сканирующим ультразвуком (SUS). Механическое воздействие микропузырьков и ультразвука на кровеносные сосуды увеличивает параклеточный транспорт через ГЭБ путем временного разделения плотных соединений и усиливает везикоопосредованный трансцитоз, позволяя антителам и терапевтическим агентам эффективно пересекаться. Кроме того, ультразвук также облегчает поглощение антител из интерстициального мозга в клетки мозга, такие как нейроны, где антитело распределяется по всему телу клетки и даже в невритические процессы. В наших исследованиях флуоресцентно меченые антитела готовят, смешивают с подготовленными внутри компании микропузырьками на основе липидов и вводят мышам непосредственно перед нанесением SUS на мозг. Затем увеличивается концентрация антител в мозге. Чтобы учесть изменения в нормальном гомеостазе мозга, микроглиальный фагоцитоз может быть использован в качестве клеточного маркера. Полученные данные свидетельствуют о том, что ультразвуковая доставка антител является привлекательным подходом к лечению нейродегенеративных заболеваний.
Терапевтический ультразвук – это новая технология, направленная на лечение заболеваний головного мозга неинвазивным способом, в частности путем облегчения доступа терапевтических агентов к мозгу1,2,3. Поскольку только небольшая часть терапевтических антител, нацеленных на заболевания головного мозга, поглощается и удерживается в мозге4, терапевтический ультразвук дает возможность увеличить их поглощение и целевое вовлечение5,6.
В нашей лаборатории мы разрабатываем терапевтические подходы к нейродегенеративным заболеваниям, при которых антитело в различных форматах доставляется через гематоэнцефалический барьер (ГЭБ) с помощью микропузырьков. Чтобы достичь этого, ультразвук применяется через череп в мозг в нескольких местах с использованием режима сканирования, который мы называем сканирующим ультразвуком (SUS)7. Механическое взаимодействие между ультразвуковой энергией, внутривенно вводимыми микропузырьками и сосудистой системой мозга временно разделяет плотные соединения ГЭБ в заданном объеме ультразвука, позволяя антителам и другим грузам, включая терапевтические агенты, эффективно преодолевать этот барьер7,8,9 . Кроме того, было показано, что ультразвук облегчает поглощение антител из интерстициального мозга в клетки мозга, такие как нейроны, где антитело распространяется по всему телу клетки и даже в невритические процессы5,10.
Болезнь Альцгеймера характеризуется амилоидно-β и тау-патологией11, и доступно множество животных моделей для вскрытия патогенных механизмов и проверки терапевтических стратегий. Подход SUS, при котором ультразвук применяется последовательно по всему мозгу при повторении в течение нескольких сеансов лечения, может уменьшить патологию амилоидных бляшек в мозге амилоидно-β мутантных мышей-предшественников амилоида (APP) и активировать микроглию, которая поглощает амилоид, что приводит к улучшению когнитивной функции7. Открытие ГЭБ с ультразвуком и микропузырьками также уменьшает патологию тау у pR5, K3 и rTg4510 тау трансгенных мышей5,12,13. Важно отметить, что в то время как микроглия удаляет внеклеточные белковые отложения, одним из основных механизмов клиренса для внутринейрональных патологий, индуцированных SUS, является активация нейрональной аутофагии12.
Здесь мы описываем экспериментальный процесс, с помощью которого получают флуоресцентно меченые антитела, а затем смешивают с собственными микропузырьками на основе липидов с последующей ретроорбитальной инъекцией анестезированным мышам. Ретроорбитальная инъекция является альтернативой инъекции в хвостовую вену, которая, как мы обнаружили, одинаково эффективна и проста в многократном выполнении. За этим сразу же следует применение SUS к мозгу. Чтобы определить поглощение терапевтических антител, мышей приносят в жертву, а затем количественно оценивают повышенную концентрацию антител в мозге. Как прокси изменения гомеостаза мозга, фагоцитарная активность микроглии определяется гистологией и объемной 3D-реконструкцией.
Полученные данные свидетельствуют о том, что ультразвуковая доставка антител является потенциально привлекательным подходом к лечению нейродегенеративных заболеваний. Протокол может быть аналогичным образом применен к другим кандидатам в лекарства, а также к модельным грузам, таким как флуоресцентно меченый декстранс определенных размеров14.
Флуоресцентно меченые антитела могут быть доставлены в мозг с помощью сфокусированного ультразвука вместе с микропузырьками, нанесенными в режиме сканирования. Доставка антител, морфология микроглии и лизосомное увеличение могут быть обнаружены с помощью флуоресцентной микроскопи?…
The authors have nothing to disclose.
Мы признаем поддержку со стороны Поместья д-ра Клема Джонса AO, Национального совета по здравоохранению и медицинским исследованиям Австралии [GNT1145580, GNT1176326], Металлического фонда и правительства штата Квинсленд (DSITI, Департамент науки, информационных технологий и инноваций).
1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphocholine | Avanti | 850365C | |
1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-[amino(polyethyleneglycol)-2000] | Avanti | 880128C | |
AlexaFluor 647 antibody labeling kit | Thermo Fisher | A20186 | |
CD68 antibody | AbD Serotec | MCA1957GA | Use 1:1000 dilution |
Chloroform | Sigma-Aldrich | 372978 | |
Coulter Counter (Multisizer 4e) | |||
Glycerol | Sigma-Aldrich | G5516 | |
Goat anti-rabbit IgG, Alexa Fluor 488 | Thermo FIsher | A-11008 | Use 1:500 dilution |
Goat anti-rabbit IgG, Alexa Fluor 488 | Thermo Fisher | A-11077 | Use 1:500 dilution |
head holder (model SG-4N, Narishige Japan) | |||
Iba1 antibody | Wako | 019-19741 | Use 1:1000 dilution |
Image analysis software | Beckman Coulter | #8547008 | |
Isoflow flow solution | Beckman Coulter | B43905 | |
Near infrared imaging system Odyssey Fc | Licor | 2800-03 | |
Octafluoropropane | Arcadophta | 0229NC | |
Propylene Glycol | Sigma-Aldrich | P4347 | |
TIPS (Therapy Imaging Probe System) | Philips Research | TIPS_007 | |
Bitplane |