Deze ijzerrorox speciatie methode is gebaseerd op capillaire elektroforese-inductief gekoppeld plasma massaspectrometrie met monster stapelen in combinatie met korte analyse in een run. De methode analyseert en biedt snel lage limieten van kwantificering voor ijzerredoxsoorten in een breed scala van weefsels en biofluïde monsters.
Dyshomeostase van ijzermetabolisme wordt verantwoord in het pathofysiologische kader van tal van ziekten, waaronder kanker en verschillende neurodegeneratieve aandoeningen. Overmatig ijzer resulteert in vrije redox-actieve Fe(II) en kan verwoestende effecten in de cel veroorzaken, zoals oxidatieve stress (OS) en de dood door lipideperoxidatie bekend als ferroptose (FPT). Daarom zijn kwantitatieve metingen van ferro (Fe(II)) en ferric (Fe(III)) ijzer in plaats van totale Fe-bepaling de sleutel voor een beter inzicht in deze schadelijke processen. Aangezien fe(II)/(III)-bepalingen kunnen worden belemmerd door snelle redox-toestandsverschuivingen en lage concentraties in relevante monsters, zoals hersenvocht (CSF), moeten methoden beschikbaar zijn die snel analyseren en lage limieten van kwantificering (LOQ) bieden. Capillaire elektroforese (CE) biedt het voordeel van snelle Fe(II)/Fe(III) scheiding en werkt zonder een stationaire fase, die de redoxbalans zou kunnen verstoren of analyt steken kan veroorzaken. CE in combinatie met inductief gekoppelde plasmamassaspectrometrie (ICP-MS) als detector biedt verdere verbetering van de detectiegevoeligheid en selectiviteit. De gepresenteerde methode gebruikt 20 mM HCl als achtergrondelektrolyt en een spanning van +25 kV. Piekvormen en concentratiedetectielimieten worden verbeterd door geleidbaarheids-pH-stapeling. Voor reductie van 56[ArO]+werd ICP-MS in de dynamic reaction cell (DRC) modus met NH3 als reactiegas gebruikt. De methode bereikt een detectielimiet (LOD) van 3 μg/L. Door stapeling waren hogere injectievolumes mogelijk zonder de scheiding te belemmeren, maar de LOD te verbeteren. De kalibraties met betrekking tot het piekgebied waren lineair tot 150 μg/L. De meetprecisie was 2,2% (Fe(III)) tot 3,5% (Fe(II)). Migratietijd precisie was <3% voor beide soorten, bepaald in 1:2 verdunde lysates van menselijke neuroblastoom (SH-SY5Y) cellen. Herstelexperimenten met standaardtoevoe ment toonden nauwkeurigheid van 97% Fe(III) en 105 % Fe(II). In real-life bio-samples zoals CSF kan de migratietijd variëren afhankelijk van verschillende geleidbaarheid (d.w.z. zoutgehalte). Zo wordt piekidentificatie bevestigd door standaardtoevoege.
Vandaag de dag is het duidelijkst dat ijzergemedieerde oxidatieve stress (OS) een cruciale rol speelt bij meerdere aandoeningen specifiek bij neurodegeneratieve hersenaandoeningen, zoals de ziekte van Alzheimer en de ziekte van Parkinson en bij kanker1,2,,3,4. OS is nauw verwant aan de staat en het evenwicht van het redox-koppel Fe(II)/Fe(III). Terwijl Fe(III) redox-inactief is, genereert Fe(II) krachtig reactieve zuurstofsoorten (ROS) door de afbraak van H2O2 te katalyseren, gevolgd door hydroxylradicale productie en membraanlipideperoxidatie5,6. Op moleculair niveau zijn Fe(II)-gegenereerde ROS en peroxidized fosfolipiden een sterke aanval op de integriteit van eiwitten, lipiden en DNA7,8. Een dergelijke schadelijke cellulaire disfunctie werd aangetoond dat mitochondriale disfunctie met verminderde ATP-inhoud9 induceren en kan zelfs leiden tot een geprogrammeerde necrotische cel dood, bekend als ferroptose (FPT)10,11. Daarom is kwantitatieve Fe(II)/(III) redox speciatie van eminent belang in een breed spectrum van redoxgerelateerde aandoeningen.
Chemische speciatie is een goed opgezet instrument voor de studie van spoorelementen biologische rol en metabolisme in het algemeen7,8 en in neurodegeneratieve aandoeningen12,13,14,15,16,17. Methoden voor Fe-redox speciatie gevonden in de literatuur zijn meestal gebaseerd op vloeibare chromatografie (LC) scheiding. Sommige van de literatuur gebruiken inductief gekoppelde plasmamassaspectrometrie (ICP-MS) als elementselectieve detector. Echter, in routine LC werk, overmatige zuivering tijden nodig waren tussen de runs. Nog problematischer, batch-to-batch variatie van LC kolommen gedwongen re-optimalisatie van de elutie voorwaarden na elke kolom te veranderen. Deze problemen belemmeren de hoge doorvoer. Extra tijd is nodig om aanvaardbare betrouwbaarheid te krijgen en de methode opnieuw grondig te evalueren.
Om deze nadelen te omzeilen, wordt hier een methode gepresenteerd voor Fe(II)/Fe(III) redox speciatie op basis van capillaire elektroforese inductief gekoppelde plasmamassaspectrometrie (CE-ICP-MS). CE biedt verschillende voordelen ten opzichte van LC18. Haarvaten hebben geen stationaire fase en zijn dus (bijna) niet afhankelijk van de identiteit van de partij. Wanneer ze verouderd of geblokkeerd zijn, worden ze snel vervangen, met meestal ongewijzigde prestaties. De zuiverings- en reinigingsstappen tussen de monsters zijn effectief en kort en de analysetijd per monster is ook kort.
De gepresenteerde methode is betrouwbaar met goede cijfers van verdienste. Als een proof-of-principle, de methode wordt toegepast op menselijke dopaminerge neuroblastoom (SH-SY5Y) cellysaat, een monster type belangrijk in neurodegeneratie evenals kankeronderzoek19.
Aangezien ijzer een prominente rol speelt in osprogressie, waardoor mitochondriale disfunctie of FTP wordt vergemakkelijkt, wordt in dit artikel een veelzijdige op CE-ICP-MS gebaseerde kwantitatieve methode voor gelijktijdige Fe(II)/Fe(III) speciatie gepresenteerd en wordt de toepassing ervan voorbeeldig aangetoond in cellysates. De methode die korte analysetijd en de cijfers van verdienste (LOQ, precisie, herstel) zijn geschikt voor monsters die relevant zijn voor ijzer redox speciatie specifiek in neurodegeneratief en kankeronderzoek. In vergelijking met eerdere methoden op basis van LC is deze OP DE CE gebaseerde methode vrijwel onafhankelijk van kolombatches en eerder waargenomen reproduceerbaarheidsproblemen na de wijziging van de LC-kolom. Capillaire voorbereiding voor elke run is <4 minuten en analysetijd per monster met een matig zoutgehalte tot 3 min. Afgezien van molecuul lading en grootte, migratie tijd in CZE is afhankelijk van geleidbaarheid bij de steekproef plug, die migratie tijd variatie of verschuivingen veroorzaakt wanneer monsters zelf beïnvloedingsgedrag aanzienlijk. Dergelijke verschuivingen in migratietijd zijn bekend bij capillaire elektroforese. Dit is een CZE-immanent probleem, bekend uit literatuur21,22. Normen en SH-SY5Y cellysates hadden matige en homogene geleidbaarheid. De migratietijden lieten dan ook weinig met goede precisie zien. Voor monsters met een hoge geleidbaarheid kunnen echter langere migratietijden tot 5 min worden waargenomen. Daarom worden standaardtoevoelingen aanbevolen voor een duidelijke identificatie van soorten.
Een kritiek punt bij de speciatie van ijzerredox is de stabiliteit van de soort (d.w.z. het behoud van Fe(II)/(III) evenwichten tijdens monsterbereiding8,13. Ongeschikte pH- of chelaatvormige chemicaliën en ongeschikte opslagomstandigheden zoals zuurstof (lucht) in contact met het monster of een onderbreking in diepgevroren opslag kunnen de Fe(II)/(III)-balans gemakkelijk veranderen. Daarom werd voor de bereiding van SH-SY5Y-cellysates gekozen voor een lysebuffer zonder enige chelaatvormige chemicaliën, fysiologische pH, maar inert gasoverlay tijdens de monsterbereiding, in monstercontainers en onmiddellijke diepvriezen werd voor deze monsters toegepast.
In de literatuur vindt men semi-kwantitatieve benaderingen om Fe(II) te monitoren. Voor een beter begrip van de rol van ijzer in oxidatieve stress ontwikkelden verschillende onderzoeksgroepen Fe(II)-specifieke sondes om de afwijkende hoogte van ferroijzer in vitro semi-kwantitatief te monitoren en te visualiseren. Echter, belangrijk om op te merken, dergelijke sondes niet rekening houden met Fe(III) en niet kwantificeren, maar verslag gewoon “meer” of “minder” Fe(II)). Tot op heden zijn slechts enkele biomarkers beschikbaar om OS en FPT te bepalen, omdat er geen betrouwbare methoden zijn om tegelijkertijd de Fe(II)/Fe(III) redoxsoorten23,24te kwantificeren . Met dit in gedachten kan de gepresenteerde methode – het vergemakkelijken van een snelle kwantificering van beide, Fe(III) en Fe(II) in één keer – een veelbelovend instrument worden om het inzicht in ijzerafhankelijke moleculaire processen te verdiepen.
The authors have nothing to disclose.
VV werd gesteund door de intramurale onderzoekstoelage (Forschungsförderung) van het Universitair Medisch Centrum Göttingen en het else Kröner onderzoeksprogramma van Else Kröner-Fresenius-Stiftung.
CE capillary | CS-Chromatographie Service, Langerwehe, Germany | 105180-25 | |
CE system | PrinCe technolgies | 0005.263 | model PrinCe 760 |
Conical Superclear Tubes 15 ml | Analytics-shop.com by Altmann Analytik | PEN0777704 | |
Conical Superclear Tubes 50 ml | Analytics-shop.com by Altmann Analytik | PEN0777694 | |
FeCl2 * 4H2O | Merck | 103861 | |
FeCl3 | Merck | 803945 | |
Fluidflex Silikon HG-Schlauch | ProLiquid | 4001106HG | |
Fused silica capillary OD 360 µm, ID 50 µm | Chromatographie Service GmbH | 105180-25 | |
hydrochloric acid, 1 M | Merck | 1101652500 | corrosive |
ICP-MS | Perkin Elmer | N814003 | |
Luer, 3-way female | BioRad | 7318229 | |
Luer, cone male | neoLab Migge | 2-1895 | |
Luer, male | neoLab Migge | 2-1880 | |
Peakfit peak evaluation software | Systat | PeakFit 4.12 | |
Pt-wire | Carl Roth | 0737.1 | |
PVC tube | ProLiquid | 6000002 | |
RIPA buffer | Abcam | ab156034 | |
Tetramethylammoniumhydroxide, 25 % | Merck | 814748 | corrosive |
TYGON-tube R-3607 | ProLiquid | 3700203A |