Summary

Isolering af spyt Epiteliale celler fra humane spytkirtler til in vitro-vækst som Salisfærer eller Monolayers

Published: July 15, 2019
doi:

Summary

Vi præsenterer en metode til isolering og dyrkning af primære menneskelige spytkirtel-afledte epiteliale celler. Disse celler udviser genekspressions mønstre i overensstemmelse med dem, der er af spyt epitelial oprindelse og kan dyrkes som salisfærer på kælder membran matricer afledt af Engelbreth-Holm-sværm tumorceller eller som monolag på behandlede kultur retter.

Abstract

Spytkirtlerne er et sted af betydelig interesse for forskere, der er interesseret i flere aspekter af sygdomme hos mennesker. Et mål for forskere er at genoprette funktionen af kirtler beskadiget af stråling behandlinger eller på grund af patologier forbundet med Sjögrens syndrom. Et andet mål for forskere er at definere de mekanismer, hvormed vira replikere inden for glandulær væv, hvor de kan derefter få adgang til spyt væsker vigtigt for horisontal transmission. Disse mål fremhæver behovet for en robust og tilgængelig in vitro spytkirtel model, der kan udnyttes af forskere interesseret i ovennævnte samt relaterede forskningsområder. Her diskuterer vi en simpel protokol for at isolere epiteliale celler fra menneskelige spytkirtler og udbrede dem in vitro. Vores protokol kan optimeres yderligere for at imødekomme behovene i de enkelte undersøgelser. Kort sagt er spyt vævet mekanisk og enzymatisk adskilt for at isolere enkeltceller eller små klynger af celler. Udvælgelse til epiteliale celler sker ved plating på en kælder membran matrix i nærværelse af medier optimeret til at fremme epitel cellevækst. Disse resulterende kulturer kan opretholdes som tredimensionelle klynger, kaldet “salisfærer”, eller dyrkes som en enkeltlags på behandlede plastik væv kultur retter. Denne protokol resulterer i en udvækst af en heterogene population af hovedsageligt epiteliale celler, der kan overføres til 5-8 passager (15-20 population doublings) før undergår cellulære senescens.

Introduction

I pattedyr spytkirtlerne er organiseret i 3 par store spytkirtler: den parotid, submandibulær, og sublinguale kirtler. Der findes også en række mindre kirtler placeret på tungen og spredt over hele mundhulen1. De vigtigste kirtler er ansvarlige for bulk volumen af spyt produceret2. Ud over at give antimikrobiel beskyttelse gennem udskillede faktorer, spyt er vigtigt i processen med at tygge og smøre fødevarer, som det passerer gennem spiserøret2. Som sådan, spytkirtel dysfunktion repræsenterer en medicinsk problem, hvor syge, der er i stand til at producere nok spyt er mere tilbøjelige til at udvikle maladies såsom dental kaviteter eller oral candidiasis3. Desuden, reduceret spyt resulterer i større problemer med at spise og fordøje fødevarer har en betydelig indvirkning på livskvalitet.

Spytkirtel dysfunktion findes primært hos patienter, der lider af Sjögrens syndrom, en autoimmunsygdom eller hos patienter med hoved-og nakke kræft, som har gennemgået strålebehandling3,4,5, 6. Beskadigede sekretoriske acini inden for kirtler som følge af autoimmunitet eller strålebehandling ikke undergår selvfornyelse, hvilket resulterer i en patient, der lever med uoprettelige skader6. Studiet af spytkirtler har også høstet opmærksomhed eller forskere interesseret i mekanismer af viral patogenese. Nogle patogener, såsom humant Cytomegalovirus (HCMV), vedholdende replikere inden for spytkirtlerne, som derefter giver mulighed for overførsel af spirende virus til en ny vært via spyt7,8. Således er der en uopfyldt behov for at udvikle robuste og reproducerbare in vitro-modeller af spytkirtel væv til at tackle og forstå en bred vifte af medicinske problemer.

Flere modeller af murine spytkirtel system har været brugt som udgangspunkt for at forstå og karakterisere de forskellige epiteliale celler, der danner spytkirtlerne9,10. Der findes indlysende og store forskelle mellem menneskelige og murine spytkirtler11. Især den menneskelige parotideale kirtel er større i forhold til submandibulær kirtel, mens musens submandibulære og parotideale er meget ens i størrelse1,2,11. Mens udødeliggjort menneskelige submandibulære cellelinjer findes, der er store bekymringer, at de udødeliggjort celler ikke præcist vedligeholde Fænotypen af det primære væv og sekundære bekymringer, at de udødelige celler ikke rent faktisk stammer fra spyt epitelet12. Af disse grunde er der en interesse og et behov for at studere primære spyt væv fra mennesker.

Her beskriver vi en protokol for at isolere primære epiteliale celler fra menneskelige spytkirtler til vævskultur. Vores protokol er baseret på værker af Pringle et al. og Tran et al. med ændringer, der generelt forenkler deres procedurer13,14. For det første, mens Tran et al. ‘s protokol kræver en lang femtimers inkubation for enzymatisk at fordøje spyt vævet, har vores modificerede protokol været vellykket med så lidt som en times inkubation, svarende til den i Pringle et al. For det andet bruger vi forskellige enzymer til vævs fordøjelse, især vi bruger ikke trypsin som bruges i den oprindelige Tran et al. protokol, men i stedet bruge en blanding af dispase og kollagenase. Vi foretrækker at undgå trypsin i de indledende fordøjelsestrin, da en nylig undersøgelse antydede, at den initiale fordøjelse af spyt vævet ved trypsin resulterer i nedsat cellelevedygtighed, muligvis ved tab af en sjælden stamcelle population15. Endelig kultur de salisfærer på overfladen af kælderen membran matrix (BMM) ved hjælp af en kommercielt tilgængelige medier oprindeligt formuleret til formering af bronkiale epitelceller. Vores protokol kan bruges til at isolere spyt celler fra parotid, submandibulær og sublinguale kirtler. Disse celler udtrykker spyt amylase og andre spyt specifikke gener, der indikerer, at de opretholder en fænotype svarende til spyt acinic epiteliale celler7. Vi har med succes genereret spyt kulturer fra > 50 primære humane vævsprøver ved hjælp af denne metode. Desuden kan de primære spyt celler nemt kryopreserveres til brug på et senere tidspunkt.

Protocol

Disse protokoller og undersøgelser er blevet gennemgået og godkendt af den institutionelle revisions bestyrelse på University of Cincinnati (Federal-dækkende Assurance #00003152, IRB-protokol 2016-4183). Spyt vævet er almindeligt genbrugt i mange hoved og hals kirurgiske procedurer og er normalt ikke involveret af den maligne proces. Typisk, frisk redesignet spytkirtel væv anvendes inden for 2-4 h efter fjernelse fra patienten (figur 1a). 1. klargøring af rea…

Representative Results

To-tre dage efter plating celler fra fordøjet væv på BMM, vil cellerne let danne små klynger, der vil fortsætte med at ekspandere i størrelse op til 15-20 celler per klynge (figur 2a). Cellulære rester og fritliggende døde celler ses typisk og bør fjernes ved at aspirere og fylde med friske medier. Cellerne vil fortsætte med at formere sig som saliskugler i ca. 3-10 dage, eller så længe BMM-laget forbliver intakt. Lejlighedsvis, på grund af delvi…

Discussion

Spyt dysfunktion repræsenterer en bekymring for livskvaliteten for dem, der lider af Sjögrens syndrom samt dem, der gennemgår strålebehandling for kræft ved siden af spytkirtlerne3,4,5, 16. En foreslået terapi til behandling af disse patienter er at dyrke funktionelle spyt celler eller organoider in vitro, som derefter kan indsættes i beskadigede spytkirtel til at erstatte angrebne væv…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gerne takke James P. Bridges for at give en betydelig vejledning om de metoder, der er involveret i dyrkning af primære celler. Matthew J. Beucler blev støttet af nationale institutter for sundhedsuddannelse Grant T32-ES007250. Dette arbejde blev også støttet af nationale institutter for sundhedstilskud R01-AI121028 og R21-DE026267 tildelt William E. Miller.

Materials

100 mm culture dishes Thermo Scientific 172931
15 mL conical tubes Thermo Scientific 339651
50 mL conical tubes Thermo Scientific 339653
Bronchial Epithelial Cell Growth Media Lonza CC-3171 Add bullet kit as per manufacturer's instructions. Supplement with 20 mL of charcoal stripped serum.
Cell strainer 70 µm nylon mesh Fisher 22-363-548
Charcoal stripped fetal bovine serum Gibco 12676-029
Collagenase type III Worthington LS004182 Store at 4 °C.
Cryogenic Tube Fisher 5000-0020
Dispase Cell Applications 07923 Dissolve collagenase to make a 0.15% (w/v) stock. Filter sterilize then store at -20 °C.
Dissecting scissors Fisher 08-940
Dulbecco phosphate buffered saline Corning 55-031-PC
General Chemicals Sigma
PathClear Basement membrane extract Cultrex 3432-005-01 Thaw at 4 °C at least 24 hr prior to use. Always handle on ice.
Six-well culture dishes Falcon 353046
Surgical forceps Fisher 22-079-742
Trypsin-EDTA solution Corning 25-052-CI

Riferimenti

  1. Kessler, A. T., Bhatt, A. A. Review of the Major and Minor Salivary Glands, Part 1: Anatomy, Infectious, and Inflammatory Processes. Journal of Clinical Imaging Science. 8, 47 (2018).
  2. Holmberg, K. V., Hoffman, M. P., Ligtenberg, A. J. M., Veerman, E. C. I. Anatomy, Biogenesis and Regeneration of Salivary Glands. Monographs in Oral Science. 24, 1-13 (2014).
  3. Vissink, A., et al. Prevention and Treatment of the Consequences of Head and Neck Radiotherapy. Critical Reviews in Oral Biology & Medicine. 14, 213-225 (2003).
  4. Gualtierotti, R., Marzano, A., Spadari, F., Cugno, M. Main Oral Manifestations in Immune-Mediated and Inflammatory Rheumatic Diseases. Journal of Clinical Medicine. 8, 21 (2018).
  5. Tsukamoto, M., Suzuki, K., Takeuchi, T. Ten-year observation of patients with primary Sjögren’s syndrome: Initial presenting characteristics and the associated outcomes. International Journal of Rheumatology. Dis. , (2018).
  6. Dirix, P., Nuyts, S., Van den Bogaert, W. Radiation-induced xerostomia in patients with head and neck cancer: A literature review. Cancer. 107, 2525-2534 (2006).
  7. Morrison, K. M., et al. Development of a primary human cell model for the study of human cytomegalovirus replication and spread within salivary epithelium. Journal of Virology. , (2018).
  8. Pomeroy, C., Englund, J. A. Cytomegalovirus: epidemiology and infection control. American Journal of Infection Control. 15, 107-119 (1987).
  9. Maimets, M., et al. Long-Term In Vitro Expansion of Salivary Gland Stem Cells Driven by Wnt Signals. Stem Cell Reports. 6, 150-162 (2016).
  10. Varghese, J. J., et al. Salivary gland cell aggregates are derived from self-organization of acinar lineage cells. Archives of Oral Biology. 97, 122-130 (2019).
  11. Maruyama, C., Monroe, M., Hunt, J., Buchmann, L., Baker, O. Comparing human and mouse salivary glands: A practice guide for salivary researchers. Oral Diseases. , (2018).
  12. Lin, L. C., et al. Cross-contamination of the human salivary gland HSG cell line with HeLa cells: A STR analysis study. Oral Diseases. 24, 1477-1483 (2018).
  13. Tran, S. D., et al. Primary Culture of Polarized Human Salivary Epithelial Cells for Use in Developing an Artificial Salivary Gland. Tissue Engineering. 11, 172-181 (2005).
  14. Pringle, S., et al. Isolation of Mouse Salivary Gland Stem Cells. Journal of Visualized Experiments. , (2011).
  15. Nam, H., et al. Characterization of Primary Epithelial Cells Derived from Human Salivary Gland Contributing to in vivo Formation of Acini-like Structures. Molecules and Cells. 41, 515-522 (2018).
  16. Vissink, A., Jansma, J., Spijkervet, F. K. L., Burlage, F. R., Coppes, R. P. Oral Sequelae of Head and Neck Radiotherapy. Critical Reviews in Oral Biology & Medicine. 14, 199-212 (2003).
  17. Cannon, M. J., et al. Repeated measures study of weekly and daily cytomegalovirus shedding patterns in saliva and urine of healthy cytomegalovirus-seropositive children. BMC Infect. Dis. 14, (2014).
  18. Pringle, S., et al. Human Salivary Gland Stem Cells Functionally Restore Radiation Damaged Salivary Glands: Hyposalivation Cell Therapy. STEM CELLS. 34, 640-652 (2016).
  19. Maria, O. M., Maria, O., Liu, Y., Komarova, S. V., Tran, S. D. Matrigel improves functional properties of human submandibular salivary gland cell line. International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 43, 622-631 (2011).
  20. Srinivasan, P. P., et al. Primary Salivary Human Stem/Progenitor Cells Undergo Microenvironment-Driven Acinar-Like Differentiation in Hyaluronate Hydrogel Culture: Differentiation of Salivary Stem/Progenitor Cells. STEM CELLS Translational Medicine. 6, 110-120 (2017).
  21. Foraida, Z. I., et al. Elastin-PLGA hybrid electrospun nanofiber scaffolds for salivary epithelial cell self-organization and polarization. Acta Biomaterialia. 62, 116-127 (2017).

Play Video

Citazione di questo articolo
Beucler, M. J., Miller, W. E. Isolation of Salivary Epithelial Cells from Human Salivary Glands for In Vitro Growth as Salispheres or Monolayers. J. Vis. Exp. (149), e59868, doi:10.3791/59868 (2019).

View Video