In diesem Protokoll zeigen wir und erläutern, wie man humaninduzierte pluripotente Stammzellen zur Kardiomyozytendifferenzierung und -reinigung verwendet und weiter, wie die Transplantationseffizienz mit dem Rho-assoziierten Proteinkinase-Inhibitor verbessert werden kann. Vorbehandlung in einem Maus-Myokardinfarktmodell.
Ein entscheidender Faktor bei der Verbesserung der Wirksamkeit der Zelltherapie bei der Myokardregeneration ist die sichere und effiziente Erhöhung der Zellentransplantationsrate. Y-27632 ist ein hochwirksamer Inhibitor der Rho-assoziierten, coiled-coil-haltigen Proteinkinase (RhoA/ROCK) und wird verwendet, um Dissoziations-induzierte Zellapoptose (Anoikis) zu verhindern. Wir zeigen, dass die Y-27632-Vorbehandlung für humaninduzierte pluripotente Stammzell-abgeleitete Kardiomyozyten (hiPSC-CMs+RI) vor der Implantation zu einer Verbesserung der Zellengraftmentrate in einem Mausmodell des akuten Myokardinfarkts (MI) führt. Hier beschreiben wir ein komplettes Verfahren der HiPSC-CMs-Differenzierung, -Reinigung und -Zellvorbehandlung mit Y-27632 sowie die daraus resultierende Zellkontraktion, Kalziumtransientenmessungen und Transplantation in Maus-MI-Modelle. Die vorgeschlagene Methode bietet eine einfache, sichere, effektive und kostengünstige Methode, die die Zellentransplantationsrate deutlich erhöht. Diese Methode kann nicht nur in Verbindung mit anderen Methoden zur weiteren Verbesserung der Zelltransplantationseffizienz eingesetzt werden, sondern bietet auch eine günstige Grundlage für die Untersuchung der Mechanismen anderer Herzerkrankungen.
Stammzellbasierte Therapien haben ein erhebliches Potenzial als Behandlung von Herzschäden durch MI1gezeigt. Die Verwendung differenzierter HiPSCs bietet eine unerschöpfliche Quelle für hiPSC-CMs2 und öffnet die Tür für die schnelle Entwicklung bahnbrechender Behandlungen. Es gibt jedoch noch viele Einschränkungen bei der therapeutischen Übersetzung, einschließlich der Herausforderung der stark niedrigen Transplantationsrate implantierter Zellen.
Dissoziierende Zellen mit Trypsin löst Anoikis3, die erst beschleunigt wird, wenn diese Zellen in raue Umgebungen wie das ischämische Myokard injiziert werden, wo die hypoxische Umgebung den Kurs in Richtung Zelltod beschleunigt. Von den verbleibenden Zellen wird ein großer Teil von der Implantationsstelle in den Blutkreislauf ausgewaschen und in der Peripherie verteilt. Einer der wichtigsten apoptotischen Pfade ist der RhoA/ROCK-Weg4. Basierend auf früheren Forschungen reguliert der RhoA/ROCK-Signalweg die aktin zytoskelettale Organisation5,6, die für Zellfunktionsstörungen verantwortlich ist7,8. Der ROCK-Hemmer Y-27632 wird häufig bei der somatischen und Stammzelldissoziation und Passaging verwendet, um die Zelladhäsion zu erhöhen und die Zellapoptose9,10,11zu reduzieren. In dieser Studie wird Y-27632 zur Behandlung von HiPSC-CMs vor der Transplantation verwendet, um die Zellengraftmentrate zu erhöhen.
Es wurden mehrere Methoden zur Verbesserung der Zellentransplantationsrate etabliert, wie Hitzeschock und Kellermembranmatrixbeschichtung12. Abgesehen von diesen Methoden kann die Gentechnologie auch die Proliferation von Kardiomyozyten13 oder die Umkehrung nichtmyokardischer Zellen in Kardiomyozyten14fördern. Aus bioengineering-Sicht werden Kardiomyozyten auf ein Biomaterialgerüst gesetzt, um die Transplantationseffizienz zu verbessern15. Leider sind die meisten dieser Methoden kompliziert und kostspielig. Im Gegenteil, die hier vorgeschlagene Methode ist einfach, kosteneffizient und effektiv, und sie kann als Basalbehandlung vor der Transplantation sowie in der Konjugation mit anderen Technologien eingesetzt werden.
Zu den wichtigsten Schritten dieser Studie gehören die Erlangung reiner HiPSC-CMs, die Verbesserung der Aktivität von HiPSC-CMs durch Y-27632-Vorbehandlung und schließlich die Transplantation einer genauen Menge an HiPSC-CMs in ein Maus-MI-Modell.
Die wichtigsten Themen, die hier angesprochen wurden, waren, dass wir zunächst die glukosefreien Reinigungsmethoden19 optimiert und ein neuartiges effizientes Reinigungssystem etabliert haben. Das Systemverfahren umfasste …
The authors have nothing to disclose.
Die Autoren danken Dr. Joseph C. Wu (Stanford University) für die freundliche Bereitstellung des Fluc-GFP-Konstrukts und Dr. Yanwen Liu für die hervorragende technische Unterstützung. Diese Studie wird von den National Institutes of Health RO1 Grants HL95077, HL114120, HL131017, HL138023, UO1 HL134764 (zu J.Z.) und HL121206A1 (zu L.Z.) und einem R56-Stipendium HL142627 (zu W.Z.) unterstützt, einem American Heart Scientist 16SDG30410018 und die University of Alabama at Birmingham Faculty Development Grant (zu W.Z.).
Reagent | |||
Accutase (stem cell detachment solution) | STEMCELL Technologies | #07920 | |
B27 minus insulin | Fisher Scientific | A1895601 | |
B27 Supplement | Fisher Scientific | 17-504-044 | |
CHIR99021 | Stem Cell Technologies | 72054 | |
DMEM (1x), high glucose, HEPES, no phenol red | Thermofisher | 20163029 | |
Fetal bovine serum | Atlanta Biologicals | S11150 | |
Fluo-4 AM (calcium indicator) | Invitrogen/Thermofisher | F14201 | |
Glucose-free RPMI 1640 | Fisher Scientific | 11879020 | |
IWR1 | Stem Cell Technologies | 72562 | |
Matrigel (extracellular matrix ) | Fisher Scientific | CB-40230C | |
mTeSR (human pluripotent stem cells medium) | STEMCELL Technologies | 85850 | |
Pen-strep antibiotic | Fisher Scientific | 15-140-122 | |
Pluronic F-127 (surfactant polyol) | Sigma-Aldrich | P2443 | |
Rho activator II | Cytoskeleton | CN03 | |
RPMI1640 | Fisher Scientific | 11875119 | |
Sodium DL-lactate | Sigma-Aldrich | L4263 | |
TrypLE (cell-dissociation enzymes) | Fisher Scientific | 12-605-010 | |
Verapamil | Sigma-Aldrich | V4629 | |
Y-27632 | STEMCELL Technologies | 72304 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Equipment and Supplies | |||
IVIS Lumina III Bioluminescence Instruments | PerkinElmer | CLS136334 | |
15 mm Coverslips | Warner | CS-15R15 | |
Centrifuge | Eppendorf | 5415R | |
Confocal Microscope | Olympus | IX81 | |
Cryostat | Thermo Scientific | NX50 | |
Dual Automatic Temperature Controller | Warner Instruments | TC-344B | |
Electrophoresis Power Supply | BIO-RAD | 1645050 | |
Fluoresence Microscope | Olympus | IX83 | |
High Speed Camera | pco | 1200 s | |
Laser Scan Head | Olympus | FV-1000 | |
Low Profile Open Bath Chamber (mounts into above microincubation system) | Warner Instruments | RC-42LP | |
Microincubation System | Warner Instruments | DH-40iL | |
Minivent Mouse Ventilator | Harvard Apparatus | 845 | |
NOD/SCID mice | Jackson Laboratory | 001303 | |
Precast Protein Gels | BIO-RAD | 4561033 | |
PVDF Transfer Packs | BIO-RAD | 1704156 | |
Trans-Blot System | BIO-RAD | Trans-Blot Turbo | |
Hot bead sterilizer | Fine Science Tools | 18000-45 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Antibody | |||
Anti-human Nucleolin (Alexa Fluor 647) | Abcam | ab198580 | |
Cardiac Troponin T | R&D Systems | MAB1874 | |
Cardiac Troponin C | Abcam | ab137130 | |
Cardiac Troponin I | Abcam | ab47003 | |
Cy5-donkey anti-mouse | Jackson ImmunoResearch Laboratory | 715-175-150 | |
Cy3-donkey anti-rabbit | Jackson ImmunoResearch Laboratory | 711-165-152 | |
Fitc-donkey anti-mouse | Jackson ImmunoResearch Laboratory | 715-095-150 | |
GAPDH | Abcam | ab22555 | |
Human Cardiac Troponin T | Abcam | ab91605 | |
Integrin β1 | Abcam | ab24693 | |
Ki67 | EMD Millipore | ab9260 | |
N-cadherin | Abcam | ab18203 | |
Phospho-Myosin Light Chain 2 | Cell Signaling Technology | 3671s | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Software | |||
Matlab | MathWorks | R2016A | |
Image J | NIH | 1.52g |