Summary

Farelerde beyin sapı uyarılmış yanıt odyometrisi veri edinme ve Analizi

Published: May 10, 2019
doi:

Summary

Beyin sapı uyarılmış reaksiyon odyometrisi klinik nörofizyolojide önemli bir araçtır. Günümüzde hem farmakolojik hem de genetik hayvan modellerini içeren temel bilim ve preklinik çalışmalarda beyin sapı uyarılmış yanıt Odyometri de uygulanır. Burada işitme beyin tepkileri yanıtlarının farelerde nasıl başarıyla kaydedilip analiz edileceğini ayrıntılı bir şekilde tarif ediyoruz.

Abstract

Beyin sapı uyarılmış reaksiyon odyometrisi (BERA) klinik nörofizyolojide merkezi alaka düzeyine sahiptir. Görsel olarak uyarılan potansiyeller (VEPs) veya somatoduyusal uyarılmış potansiyeller (SEPs) gibi diğer uyarılmış potansiyel (EP) teknikleri gibi, işitsel uyarılmış potansiyeller (AEPs) aynı stimüllerin tekrarlayan sunumu ile tetiklenir, daha sonra ortalama olarak farklı pozitif (p) ve negatif (n) sapmaları ile sonuçlanan Elektroensefalografi (EEG) tepkisi. İnsanlarda, altta yatan nöronal devrelere senkronizasyon ve iletim hızı değişiklikleri karakterize etmek için her iki genlik ve bireysel dorukların gecikme kullanılabilir. Daha da önemlisi, AEPs, farmakolojik ve genetik hayvan modellerinde işitsel fonksiyonun tanımlanması ve karakterize edilmesi için temel ve preklinik bilimlere de uygulanır. Daha da fazla, farmakolojik test ile birlikte hayvan modelleri sensorineval işitme kaybı tedavisinde potansiyel faydaları araştırmak için kullanılır (örneğin, Yaş veya gürültü kaynaklı işitme açıkları). Burada, tıklama ve ton patlaması uygulamasını kullanarak farelerde işitsel beyin-uyarılmış yanıtların (ABRs) Nasıl kaydetmelerine ilişkin ayrıntılı ve entegratif bir açıklama sağlıyoruz. Bu protokolün belirli bir odak öncesi deneysel hayvan konut, anestezi, ABR kayıt, ABR filtreleme süreçleri, otomatik dalgalı bazlı genlik büyüme fonksiyon Analizi ve gecikme algılama üzerinde.

Introduction

Beyin fizyolojisinin merkezi bir yönü, öğrenme, bellek, duygusal reaksiyonlar veya motorik tepkiler gibi farklı içsel veya ekstrensek çıktıda sonuçlanan çevresel bilgileri işleme yeteneğidir. Çeşitli deneysel ve tanı yaklaşımlar, bireysel nöronal hücre türlerinin veya bir uyarıcı ile ilgili nöronal devrelerde nöronların kümeleri/toplulukların elektrofizyolojik tepkisini karakterize etmek için kullanılabilir. Bu elektrofizyolojik teknikler mikro-, meso-ve macroscale1‘ de farklı uzamsal boyutları kapsar. Mikroölçek seviyesi, örneğin, kültürlü veya akut ayrılmış nöronlar1kullanarak farklı yama-kelepçe modlarında gerilim ve akım kelepçe yaklaşımlar içerir. Bu in vitro teknikleri bireysel mevcut varlıkların karakterizasyonu ve farmakolojik modülasyon2,3için izin verir. Ancak temel bir dezavantajı, mikro ve makrodevre bilgi entegrasyonu ve işleme ile ilgili olarak sistemik bilginin eksikliği. Bu bozukluk, sadece kültürlü nöronlar değil, aynı zamanda akut beyin dilimleri4, aynı anda ekstrasellüler multielektrot kayıtları için izin multielektrot dizileri gibi mesoscale In vitro teknikleri ile kısmen üstesinden gelen, 5. mikrodevreler Beyin dilimleri içinde belirli bir ölçüde (örneğin, Hippocampus) korunmuş olabilir, uzun menzilli bağlantı genellikle6kaybolur. Sonuçta, nöronal devrelerde fonksiyonel bağlantıları incelemek için, macroscale ‘de sistemik in vivo elektrofizyolojik teknikler seçim yöntemidir7. Bu yaklaşımlar arasında, diğer şeylerin yanı sıra, yüzey (epidural) ve derin (intracerebral) EEG kayıtları hem insanlar ve hayvan modelleri1gerçekleştirilir. EEG sinyalleri ağırlıklı olarak uyarıcı giriş8genel üstünlüğü rağmen inhibitör veya uyarıcı olabilir farklı kortikal katmanlarda piramit nöronlar üzerinde senkronize sinaptik girişe dayanmaktadır. Senkronizasyon üzerine, ekstrasellüler elektrik alanlarında uyarıcı postsinaptik potansiyel tabanlı vardiya yüzey elektrotları kullanarak kafa derisi üzerinde kaydedilecek yeterli mukavemet sinyali oluşturmak için toplanır. Özellikle, bireysel bir elektrot algılanabilir bir kafa derisi kayıt piramit nöronların 10000 aktivite ve teknik cihazlar ve işleme araçları, bir amplifikatör de dahil olmak üzere karmaşık bir silah, filtreleme süreçleri (düşük pass filtre, gerektirir yüksek geçişli filtre, çentik filtre) ve özel iletken özelliklere sahip elektrotlar.

En deneysel hayvan türlerinde (yani, fareler ve fareler), insan bazlı kafa derisi EEG yaklaşımı Teknik olarak uygulanamaz, altta yatan korteks tarafından oluşturulan sinyal senkronize piramit nöronların sınırlı sayıda nedeniyle çok zayıf olduğu gibi9, 10,11. Kemirgenler, yüzey (kafa derisi) elektrotları veya subdermal elektrotlar böylece ciddi Elektrokardiyogram ve yüksek kaliteli EEG kayıtları imkansız hale ağırlıklı elektromyogram eserler tarafından kontamine olan9,11, 12., bu nedenle doğrudan epidural elektrotlar ya da derin, intraserebral yapıları yoluyla korteks gelen algılama ucu doğrudan fiziksel bağlantı sağlamak için ya da kaydetmek için zorunlu olan anestezize serbestçe hareketli fareler ve fareler kullanırken sinyal üreten nöronal hücre kümeleri için kurşun/implante elektrot. Bu EEG yaklaşımlar ya bir kısıtlayıcı gergin sistem kurulum veya nonrestraining implante EEG radyo telemetri yaklaşımı kullanarak gerçekleştirilebilir9,10,11. Her iki tekniği de onların artıları ve eksileri var ve nöbet duyarlılık/nöbet aktivitesi, sirkadiyen ritmik, uyku mimarisi, osilasyon aktivitesi ve senkronizasyon nitel ve niceliksel karakterizasyonu değerli bir yaklaşım olabilir, zaman sıklığı analizi, kaynak analizi, vb9,10,13,14,15,16,17dahil.

Gergin sistemler ve radyo telemetri kısıtlama/semirestyağmur veya kısıtsızlık koşulları altında EEG kayıtları için izin verirken, sırasıyla, ilgili deneysel koşullar ABR kayıtları için gereksinimlerle eşleşmiyor. Bir hoparlör ve deneysel hayvan ve kontrollü ses basıncı seviyeleri (SPLs) tanımlı pozisyonları ile zamanla sürekli olarak sunulan tanımlanmış akustik uyaranlara için ikinci talep. Bu durum, yasaklama koşulları altında ya da18,19. Deneysel stres azaltmak için, hayvanlar normalde ABR deney sırasında anestezize, ama anestezi ABRS ile müdahale olabilir düşünülebilir19,20.

Genel bir karakteristik olarak, EEG 50-100 μV voltaj aralığında farklı frekanslarda inşa edilmiştir. arka plan frekansları ve genlikleri güçlü deneysel hayvanın fizyolojik durumuna bağlıdır. Uyanık durumda, Beta (β) ve gama (γ) daha düşük amplitüd frekansları baskın. Hayvanlar uykuya dalarak veya uyurken, Alfa (α), teta (θ) ve Delta (δ) frekansları ortaya çıktığında, artan EEG genliği21‘ i sergiler. Bir duyusal kanal (örn., akustik yol) uyarıldığında, bilgi yayılımı periferik ve merkezi sinir sistemi aracılığıyla nöronal aktivite yoluyla aracılaşmış olur. Bu duyusal (örn. Akustik) stimülasyon, EPs veya uyarılmış tepkiler olarak adlandırılır. Özellikle, olay ile ilgili potansiyeller (ERPs) EEG daha genlik çok daha düşüktür (yani, sadece birkaç mikrovoltlar). Böylece, tek bir uyarıcı dayalı herhangi bir bireysel ERP yüksek genlik EEG arka plan karşı kaybolur. Bu nedenle, bir ERP kaydı özdeş uyaranların tekrarlayan uygulama gerektirir (örneğin, ABR kayıtları tıklamalar) ve sonraki herhangi bir EEG arka plan etkinliği ve eserler ortadan kaldırmak için Ortalama. ABR kayıtları anestezileştirilmiş hayvanlarda yapılırsa, burada subdermal elektrotlar kullanımı kolaydır.

Temelde, AEPs normalde ABRs veya BERA ile ilgili kısa gecikme EPs, ve daha sonraki başlangıç potansiyelleri gibi Orta gecikme EPs (Orta gecikme yanıt [MLR]) ve uzun gecikme EPs22içerir. Daha da önemlisi, işitsel bilgilerin bilgi işlemede rahatsızlığı genellikle Nöropsikiyatri hastalıklarının (demyelasyon hastalıkları, şizofreni vb.) merkezi bir özelliğidir ve AEP değişikliklerle ilişkilidir23,24 ,25. Davranışsal araştırmalar sadece fonksiyonel bozukluğu açığa çıkarabilecek durumda ise, AEP çalışmaları belirli nöroanatomik yapılarla ilgili işitsel disfonksiyonun kesin uzamsal analizine izin verir26.

Erken, kısa gecikmeli akustik EPs olarak ABRs normalde orta yüksek yoğun tıklama uygulaması üzerine tespit edilir ve yedi ABR zirveleri (Wı-wVII) kadar ortaya çıkabilir. En önemli dalgalar (Wı-wV) aşağıdaki nöroanatomik yapıları ile ilişkilidir: Işitme sinirine Wi (distal kısmı, iç kulak içinde); WII Cochlear çekirdeğine (işitsel sinirin proksimal kısmı, beyin sapı fesih); WIII üstün olivary KOMPLEKSI (SoC) için; WIV lateral lemniskusu için (ll); WV yan lemniskusu (ll) ‘ in alt koliculus (IC) içinde Kontralateral tarafta27 (Tamamlayıcı Şekil 1) içinde feshi. Bu WII-wV büyük olasılıkla onlara katkı artan işitsel yol birden fazla anatomik yapısına sahip olduğunu unutulmamalıdır. Özellikle, tepelerin ve işitsel sistemin altta yatan yapıların tam korelasyon hala tamamen açıklığa kavuşturulmaz.

Odyolojide, ABRS bir tarama ve tanı aracı olarak ve cerrahi izleme için28,29olarak kullanılabilir. Dysacusis, hypacusis ve anacusis (örn. yaşa bağlı işitme kaybı, gürültü kaynaklı işitme kaybı, metabolik ve konjenital işitme kaybı, asimetrik işitme kaybı ve deformiteler nedeniyle işitme açıkları veya malformasyonlar, yaralanmalar ve neoplazmlar)28. ABRs aynı zamanda hiperaktif, entelektüel Engelli çocuklar için veya geleneksel Odyometri (örneğin, DEHB, MS, otizm vb. gibi nörolojik/psikiyatrik hastalıklarda) yanıt verebilen diğer çocuklar için bir tarama testi olarak da ilgilidir.29 , 30) ve koklear implantların gelişimi ve cerrahi montaj28. Son olarak, ABRS antiepileptik31,32gibi potansiyel ototokezik yan-nöropsikoloji, etkileri içine değerli bir fikir verebilir.

Farmakolojik veya transjenik fare modellerinden insanlara elde edilen nörofizyolojik bilginin çevirisinin değeri, özellikle fareler ve fareler33işitsel paradigmalar Içinde Erps düzeyinde çok sayıda ayarlar gösterildi, 34,35. Değiştirilmiş erken AEPs ve fareler ve fareler içinde işitsel bilgi işleme ilişkili değişiklikler içine yeni anlayış bu nedenle insanlara çevrilebilir ve işitsel, nörolojik karakteristik ve endophenotyping merkezi öneme sahiptir ve gelecekte nöropsikiyatrik hastalıklar. Burada, ABRs ‘nin temel bilimsel, toksikolojik ve farmakolojik amaçlar için farelerde nasıl başarıyla kaydedilip analiz edileceğini ayrıntılı bir açıklama sağlıyoruz.

Protocol

Tüm hayvan prosedürleri Alman hayvan bakımı Konseyi yönergelerine göre yapılmıştır ve tüm protokoller, yerel kurumsal ve ulusal hayvan bakımı Komitesi tarafından onaylanmıştır (Landesamt für Natur, Umwelt, und Verbraucherschutz, State Kuzey Ren-Vestfalya ofisi, Doğa, çevre ve tüketim bölümü [LANUV NRW], Almanya). Yazarlar daha da tüm hayvan deney bakım ve laboratuar hayvanları kullanımı (NıH yayınlar No 80-23) için sağlık Kılavuzu Ulusal Enstitüleri uyarınca yürütülmüştür teyit …

Representative Results

İşitme eşiği farklılıklarını, genlik büyüme fonksiyonunu ve gecikme süresini karşılaştırmayı değerlendirmek için tıklama ve ton patlama-uyarılmış ABR kayıtları kullanılabilir. SPL artan modda tıklayın-uyarılmış ABRs kontrol için Şekil 1 ve cav3,2 T tipi voltaj-Gated CA2 + kanal (yani, CAv3,2+/- ve CA eksikliği iki örnek mutant fare hatları tasvir edilir v3,2 null mutantl…

Discussion

Bu protokol, farelerde işitsel uyarılmış beyin sapı yanıtlarının nasıl kaydetili olduğunu ayrıntılı ve bütünleştirici bir açıklama sağlar. Hayvan ön tedavisi, anestezi ve potansiyel metodolojik mantık faktörleri üzerine spesifik odaklanma verir. İkincisi dahil, diğerleri arasında, cinsiyet, fare çizgisi, yaş, ve konut koşulları. Tüm bu faktörlerin sensorineval işitme kaybı ve işitsel bilgi işleme temel yönleri üzerinde bir etkisi olabilir unutulmamalıdır. Böylece, işitsel profil …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Yazarlar Dr Christina Kolb (nörodejeneratif hastalıklar için Alman merkezi [DZNE]) ve Dr Robert Stark (DZNE) hayvan ıslahı ve hayvan sağlık bakım onların yardım için teşekkür etmek istiyorum. Bu çalışma, Federal Ilaçlar ve Tıbbi aygıtlar Enstitüsü (Bundesınstitut für Arzneimittel und Medizinprodukte, BfArM, Bonn, Almanya) tarafından mali olarak destekleniyordu.

Materials

AEP/OAE Software for RZ6 (BioSigRZ software) Tucker-Davis Technologies (TDT) BioSigRZ
Binocular surgical magnification microscope Zeiss Stemi 2000 0000001003877, 4355400000000, 0000001063306, 4170530000000, 4170959255000, 4551820000000, 4170959040000, 4170959050000
Cages (Macrolon) Techniplast 1264C, 1290D
Carprox vet, 50mg/ml Virbac Tierarzneimittel GmbH PZN 11149509
Cold light source Schott KL2500 LCD 9.705 202
Cotton tip applicators (sterile) Carl Roth EH12.1
Custom made meshed metal Faraday cage (stainless steel, 2 mm thickness, 1 cm mesh size) custom made custom made
5% Dexpanthenole (Bepanthen eye and nose creme) Bayer Vital GmbH PZN: 01578681
Disposable Subdermal stainless steel Needle
electrodes, 27GA, 12mm
Rochester Electro-Medical, Inc. S03366-18
Surgical drape sheets (sterile) Hartmann PZN 0366787
Ethanol, 70% Carl Roth 9065.5
1/4'' Free Field Measure Calibration Mic Kit Tucker-Davis Technologies (TDT) PCB-378C0
Gloves (sterile) Unigloves 1570
Graefe Forceps-curved, serrated FST 11052-10
GraphPad Prism 6 Software, V6.07 GraphPad Prism Software, Inc. https://www.graphpad.com/
Heat-based surgical instrument sterilizer FST 18000-50
Homeothermic
heating blanked
ThermoLux 461265 / -67
Ketanest S (Ketamine), 25mg/ml Pfizer PZN 08707288
Ringer’s solution (sterile) B.Braun PZN 01471434
Matlab software MathWorks, Inc. https://de.mathworks.com/products/matlab.html
Medusa 4-Channel Low Imped. Headstage Tucker-Davis Technologies (TDT) RA4LI
Medusa 4-Channel Pre-Amp/Digitizer Tucker-Davis Technologies (TDT) RA4PA
Microphone PCB Pieztronics 378C01
Multi Field Speaker- Stereo Tucker-Davis Technologies (TDT) MF1-S
Oscilloscope Tektronix DPO3012
Optical PC1 express card for Optibit Interface) Tucker-Davis Systems (TDT) PO5e
Askina Braucel pads (cellulose absorbet pads) B.Braun PZN 8473637
Preamplifier PCB Pieztronics 480C02
RZ6 Multi I/O Processor system (BioSigRZ) Tucker-Davis Technologies (TDT) RZ6-A-PI
0.9% saline (NaCl, sterile) B.Braun PZN:8609255
SigGenRZ software Tucker-Davis Technologies (TDT) https://www.tdt.com/
Software R (version 3.2.1) + Reshape 2 (Version 1.4.1) + ggplot 2 (version 1.0.1) + datatable (version 1.9.4), + gdata (version 2.13.3), + pastecs (version 1.3.18), + waveslim (version 1.7.5), + MassSpecWavelet (version 1.30.0) The R Foundation, R Core Team 2015 Open Source Software (freely distributable)
Sound attenuating cubicle Med Associates Inc. ENV-018V
Standard Pattern Forceps, 12cm and 14.5 cm length FST 11000-12, 11000-14
Leukosilk tape BSN medical GmbH & Co. KG PZN 00397109
Tissue Forceps- 1×2 Teeth 12 cm FST 11021-12
Uniprotect ventilated cabinet Bioscape THF3378
Ventilated cabinet Tecniplast 9AV125P
Xylazine (Rompun), 2% Bayer Vital GmbH PZN 1320422

Riferimenti

  1. Sporns, O., Tononi, G., Kotter, R. The human connectome: A structural description of the human brain. PLOS Computational Biology. 1 (4), e42 (2005).
  2. Bebarova, M. Advances in patch clamp technique: towards higher quality and quantity. General Physiology and Biophysics. 31 (2), 131-140 (2012).
  3. Kornreich, B. G. The patch clamp technique: principles and technical considerations. Journal of Veterinary Cardiology. 9 (1), 25-37 (2007).
  4. Spira, M. E., Hai, A. Multi-electrode array technologies for neuroscience and cardiology. Nature Nanotechnology. 8 (2), 83-94 (2013).
  5. Obien, M. E., Deligkaris, K., Bullmann, T., Bakkum, D. J., Frey, U. Revealing neuronal function through microelectrode array recordings. Frontiers in Neuroscience. 8, 423 (2014).
  6. Heuschkel, M. O., Fejtl, M., Raggenbass, M., Bertrand, D., Renaud, P. A three-dimensional multi-electrode array for multi-site stimulation and recording in acute brain slices. Journal of Neuroscience Methods. 114 (2), 135-148 (2002).
  7. Kimiskidis, V. K. Transcranial magnetic stimulation (TMS) coupled with electroencephalography (EEG): Biomarker of the future. Reviews in Neurology. 172 (2), 123-126 (2016).
  8. Nunez, P. L. Toward a quantitative description of large-scale neocortical dynamic function and EEG. Behavioral Brain Science. 23 (3), 371-437 (2000).
  9. Lundt, A., et al. EEG Radiotelemetry in Small Laboratory Rodents: A Powerful State-of-the Art Approach in Neuropsychiatric, Neurodegenerative, and Epilepsy Research. Neural Plasticity. 2016, 8213878 (2016).
  10. Papazoglou, A., et al. Non-restraining EEG Radiotelemetry: Epidural and Deep Intracerebral Stereotaxic EEG Electrode Placement. Journal of Visualized Experiments. 112 (112), e54216 (2016).
  11. Weiergraber, M., Henry, M., Hescheler, J., Smyth, N., Schneider, T. Electrocorticographic and deep intracerebral EEG recording in mice using a telemetry system. Brain Research Brain Research Protocols. 14 (3), 154-164 (2005).
  12. Kallstrand, J., Nehlstedt, S. F., Skold, M. L., Nielzen, S. Lateral asymmetry and reduced forward masking effect in early brainstem auditory evoked responses in schizophrenia. Psychiatry Research. 196 (2-3), 188-193 (2012).
  13. Muller, R., et al. Automatic Detection of Highly Organized Theta Oscillations in the Murine EEG. Journal of Visualized Experiments. (121), e55089 (2017).
  14. Papazoglou, A., et al. Gender specific hippocampal whole genome transcriptome data from mice lacking the Cav2.3 R-type or Cav3.2 T-type voltage-gated calcium channel. Data in Brief. 12, 81-86 (2017).
  15. Papazoglou, A., et al. Gender-Specific Hippocampal Dysrhythmia and Aberrant Hippocampal and Cortical Excitability in the APPswePS1dE9 Model of Alzheimer’s Disease. Neural Plasticity. 2016, 7167358 (2016).
  16. Papazoglou, A., et al. Motor Cortex Theta and Gamma Architecture in Young Adult APPswePS1dE9 Alzheimer Mice. PLOS ONE. 12 (1), e0169654 (2017).
  17. Siwek, M. E., et al. Altered theta oscillations and aberrant cortical excitatory activity in the 5XFAD model of Alzheimer’s disease. Neural Plasticity. , 781731 (2015).
  18. Welch, T. M., Church, M. W., Shucard, D. W. A method for chronically recording brain-stem and cortical auditory evoked potentials from unanesthetized mice. Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 60 (1), 78-83 (1985).
  19. Church, M. W., Gritzke, R. Effects of ketamine anesthesia on the rat brain-stem auditory evoked potential as a function of dose and stimulus intensity. Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 67 (6), 570-583 (1987).
  20. van Looij, M. A., et al. Impact of conventional anesthesia on auditory brainstem responses in mice. Hearing Research. 193 (1-2), 75-82 (2004).
  21. Schomer, D. L., da Silva, F. L. . Niedermeyer’s Electroencephalography: Basic Principles, Clinical Applications, and Related Fields. , (2011).
  22. De Cosmo, G., Aceto, P., Clemente, A., Congedo, E. Auditory evoked potentials. Minerva Anestesiology. 70 (5), 293-297 (2004).
  23. Rosburg, T. Auditory N100 gating in patients with schizophrenia: A systematic meta-analysis. Clinical Neurophysiology. 129 (10), 2099-2111 (2018).
  24. DiLalla, L. F., McCrary, M., Diaz, E. A review of endophenotypes in schizophrenia and autism: The next phase for understanding genetic etiologies. American Journal of Medical Genetics Part C Seminar in Medical Genetics. 175 (3), 354-361 (2017).
  25. Walsh, P., Kane, N., Butler, S. The clinical role of evoked potentials. Journal of Neurology, Neurosurgery and Psychiatry. 76 Suppl 2, ii16-ii22 (2005).
  26. Opgen-Rhein, C., Neuhaus, A., Urbanek, C., Dettling, M. New strategies in schizophrenia: impact of endophentotypes. Psychiatrische Praxis. 31 Suppl 2, S194-S199 (2004).
  27. Knipper, M., Van Dijk, P., Nunes, I., Ruttiger, L., Zimmermann, U. Advances in the neurobiology of hearing disorders: recent developments regarding the basis of tinnitus and hyperacusis. Progress in Neurobiology. 111, 17-33 (2013).
  28. Miller, C. A., Brown, C. J., Abbas, P. J., Chi, S. L. The clinical application of potentials evoked from the peripheral auditory system. Hearing Research. 242 (1-2), 184-197 (2008).
  29. Manouilenko, I., Humble, M. B., Georgieva, J., Bejerot, S. Brainstem Auditory Evoked Potentials for diagnosing Autism Spectrum Disorder, ADHD and Schizophrenia Spectrum Disorders in adults. A blinded study. Psychiatry Research. 257, 21-26 (2017).
  30. Talge, N. M., Tudor, B. M., Kileny, P. R. Click-evoked auditory brainstem responses and autism spectrum disorder: A meta-analytic review. Autism Research. 11 (6), 916-927 (2018).
  31. Hamed, S. A. The auditory and vestibular toxicities induced by antiepileptic drugs. Expert Opinion in Drug Safety. 16 (11), 1281-1294 (2017).
  32. Ismi, O., et al. The Effect of Methylphenidate on the Hearing of Children with Attention Deficit Hyperactivity Disorder. International Archive in Otorhinolaryngology. 22 (3), 220-224 (2018).
  33. Michna, M., et al. Cav1.3 (alpha1D) Ca2+ currents in neonatal outer hair cells of mice. Journal of Physiology. 553 (Pt 3), 747-758 (2003).
  34. Platzer, J., et al. Congenital deafness and sinoatrial node dysfunction in mice lacking class D L-type Ca2+ channels. Cell. 102 (1), 89-97 (2000).
  35. Willaredt, M. A., Ebbers, L., Nothwang, H. G. Central auditory function of deafness genes. Hearing Research. 312, 9-20 (2014).
  36. Yee, B. K., Singer, P. A conceptual and practical guide to the behavioural evaluation of animal models of the symptomatology and therapy of schizophrenia. Cell Tissue Research. 354 (1), 221-246 (2013).
  37. Fahey, J. R., Katoh, H., Malcolm, R., Perez, A. V. The case for genetic monitoring of mice and rats used in biomedical research. Mammalian Genome. 24 (3-4), 89-94 (2013).
  38. Hunsaker, M. R. Comprehensive neurocognitive endophenotyping strategies for mouse models of genetic disorders. Progress in Neurobiology. 96 (2), 220-241 (2012).
  39. Turner, J. G., Parrish, J. L., Hughes, L. F., Toth, L. A., Caspary, D. M. Hearing in laboratory animals: strain differences and nonauditory effects of noise. Computational Medicine. 55 (1), 12-23 (2005).
  40. Neumann, P. E., Collins, R. L. Genetic dissection of susceptibility to audiogenic seizures in inbred mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 88 (12), 5408-5412 (1991).
  41. Meier, S., Groeben, H., Mitzner, W., Brown, R. H. Genetic variability of induction and emergence times for inhalational anaesthetics. European Journal of Anaesthesiology. 25 (2), 113-117 (2008).
  42. Majewski-Tiedeken, C. R., Rabin, C. R., Siegel, S. J. Ketamine exposure in adult mice leads to increased cell death in C3H, DBA2 and FVB inbred mouse strains. Drug Alcohol Dependence. 92 (1-3), 217-227 (2008).
  43. Bonthuis, P. J., et al. Of mice and rats: key species variations in the sexual differentiation of brain and behavior. Frontiers in Neuroendocrinology. 31 (3), 341-358 (2010).
  44. Buckmaster, P. S., Haney, M. M. Factors affecting outcomes of pilocarpine treatment in a mouse model of temporal lobe epilepsy. Epilepsy Research. 102 (3), 153-159 (2012).
  45. Jonasson, Z. Meta-analysis of sex differences in rodent models of learning and memory: a review of behavioral and biological data. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 28 (8), 811-825 (2005).
  46. Prendergast, B. J., Onishi, K. G., Zucker, I. Female mice liberated for inclusion in neuroscience and biomedical research. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 40, 1-5 (2014).
  47. Ingham, N. J., Pearson, S., Steel, K. P. Using the Auditory Brainstem Response (ABR) to Determine Sensitivity of Hearing in Mutant Mice. Current Protocols in Mouse Biology. 1 (2), 279-287 (2011).
  48. . SigGenRZ Manual Available from: https://www.tdt.com/files/manuals/SigGenRZ_Manual.pdf (2012)
  49. Bogaerts, S., Clements, J. D., Sullivan, J. M., Oleskevich, S. Automated threshold detection for auditory brainstem responses: comparison with visual estimation in a stem cell transplantation study. BMC Neuroscience. 10, 104 (2009).
  50. Probst, F. J., et al. A point mutation in the gene for asparagine-linked glycosylation 10B (Alg10b) causes nonsyndromic hearing impairment in mice (Mus musculus). PLOS ONE. 8 (11), e80408 (2013).
  51. Alvarado, J. C., Fuentes-Santamaria, V., Gabaldon-Ull, M. C., Blanco, J. L., Juiz, J. M. Wistar rats: a forgotten model of age-related hearing loss. Frontiers in Aging Neuroscience. 6, 29 (2014).
  52. Du, P., Kibbe, W. A., Lin, S. M. Improved peak detection in mass spectrum by incorporating continuous wavelet transform-based pattern matching. Bioinformatics. 22 (17), 2059-2065 (2006).
  53. Daubechies, I. . Ten lectures on wavelets. , (1992).
  54. Pearson, J. D., et al. Gender differences in a longitudinal study of age-associated hearing loss. Journal of the Acoustical Society of America. 97 (2), 1196-1205 (1995).
  55. Murphy, M. P., Gates, G. A. Hearing Loss: Does Gender Play a Role?. Medscape Womens Health. 2 (10), 2 (1997).
  56. Henry, K. R. Males lose hearing earlier in mouse models of late-onset age-related hearing loss; females lose hearing earlier in mouse models of early-onset hearing loss. Hearing Research. 190 (1-2), 141-148 (2004).
  57. Ison, J. R., Allen, P. D., O’Neill, W. E. Age-related hearing loss in C57BL/6J mice has both frequency-specific and non-frequency-specific components that produce a hyperacusis-like exaggeration of the acoustic startle reflex. Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 8 (4), 539-550 (2007).
  58. Zheng, Q. Y., Johnson, K. R., Erway, L. C. Assessment of hearing in 80 inbred strains of mice by ABR threshold analyses. Hearing Research. 130 (1-2), 94-107 (1999).
  59. Zhou, X., Jen, P. H., Seburn, K. L., Frankel, W. N., Zheng, Q. Y. Auditory brainstem responses in 10 inbred strains of mice. Brain Research. 1091 (1), 16-26 (2006).
  60. Lundt, A., et al. Cav3.2 T-Type Calcium Channels Are Physiologically Mandatory For The Auditory System. Neuroscienze. , (2019).

Play Video

Citazione di questo articolo
Lundt, A., Soos, J., Henseler, C., Arshaad, M. I., Müller, R., Ehninger, D., Hescheler, J., Sachinidis, A., Broich, K., Wormuth, C., Papazoglou, A., Weiergräber, M. Data Acquisition and Analysis In Brainstem Evoked Response Audiometry In Mice. J. Vis. Exp. (147), e59200, doi:10.3791/59200 (2019).

View Video