Summary

기본 Murine 골격 근육 Microvascular 내 피 세포의 고립

Published: March 06, 2019
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Summary

Microvascular 내 피 세포 골격 근육 (MMEC)의 근육 모세 혈관의 안 벽을 형성 하 고 둘 다 조절 근육 조직과 혈액 사이 (면역) 세포의 마이그레이션 및 체액/분자의 교환. 기본 murine MMEC의 격리, 여기에 설명 된 대로 “myovascular 단위”의 종합 체 외 조사 수 있습니다.

Abstract

골격 근육의 모세 혈관 (근육 microvascular 내 피 세포, MMEC)의 내 피 세포 혈 류 감염에 대 한 면역 반응 뿐만 아니라 체액과 영양분의 교류를 통제 하는 골격 근육 사이 장벽을 구축합니다 면역 세포 이동 제어 하 여 대리인입니다. 이러한 기능에 대 한 MMEC 형성 기능 “myovascular 단위” (MVU), 더 세포 유형, 섬유 아 세포, pericytes 및 골격 근육 세포 등으로. 따라서, MMEC 및 MVU는의 역 기능 다양 한 myopathies에 기여 한다. 그러나, 건강과 질병에 있는 MMEC의 규제 메커니즘 충분 이해 남아 있고 그들의 설명 앞 myopathies에 대 한 좀 더 구체적인 치료. 분리와 기본 MMEC 함수는 MVU의 맥락에서의 심층 조사 이러한 프로세스의 더 나은 이해를 용이 하 게 수 있습니다.

이 문서는 골격 근육의 기본 murine MMEC 정화 및 문화 유지 보수 단계를 포함 하 여 기계 및 효소 분리 하 여 격리 프로토콜을 제공 합니다.

Introduction

혈 류를 통해 , 세포와 장기 산소, 기판 및 다른 필요한 분자와 함께 제공 됩니다. 이 교환 모 세관, 작은 혈관에서에서 일어난다. 모 세관 내부 내 피 세포 (EC) 층이 누구의 무결성 유지 혈관 내 고 중간 공간 사이의 근육 항상성의 성공적인 규제에 조건 형성 된다. 수용 성 요소와 세포의 선택적 전환할 수 있도록, EC 꽉 연결 되어 단층 및 외화 접속점 1을 구성 합니다. 영양소 또는 대사 제품에 대 한 장벽으로 서의 역할 외 EC 염증 과정에서 백혈구의 채용을 통제 한다. 염증이 나 조직 손상 접착 분자의 최대 규정 EC 표면에 발산 촉진 백혈구 첨부 파일 및 대상 조직 2로 환생의 생산 리드. 따라서, EC 비판적으로 병원 체 또는 조직 복구에 대 한 방어와 같은 염증 성 프로세스의 규칙에서 포함 된다.

EC의 장애는 직접 관련 혈관 질환, 만성 신부전, 정 맥 혈전 증 심한 병원 체 감염 된. 또한, EC는 거의 항상 당뇨병 mellitus 또는 다 발성 경화 증 3같은 기관 특정 면역에 관여 하 고. 혈 류 및 기관 사이의 장벽 기능 따라서 다른 종류의 공동된 작용에 의해 제어 됩니다. 골격 근육 microvascular 내 피 세포 (MMEC) 근육 세포와 섬유 아 세포와 pericytes 형성 기능 단위, “myovascular 단위” (MVU). 따라서,는 MVU의 부전 myopathies의 이상에서 중요 한 역할을 재생할 수 있습니다. 그러나, 이러한 규제 메커니즘에 대 한 깊은 이해는 여전히 누락 이며 현재 myopathies에 새로운, 긴급 하 게 필요한, 치료 대상의 식별을 방해.

복잡 한 생리 적 및 병 태 생리 기계 장치를 조사, 동물 모델은 일반적으로 사용 됩니다. 그러나, 생체 외에서 모델 제외 혼동 요인의 다양 한 관심 주제에 초점을 이점을 제공 합니다. 프로세스를 조사 하기 위해 생체 외에서 그것은 순수 하 고 가능한 1 차 셀을 분리 하는 데 필요한입니다. 셀 라인, 달리 1 차 셀 유전자 변형 동물에서 분리 가능 유전 수정은 체 외의 결과 조사

여기, 뒤에 자석 활성화 된 셀 정렬 기법 (MCS) 정화 기계 및 효소 분리를 사용 하 여 기본 murine MMEC를 분리 하는 방법을 설명 합니다. 이 목적을 위해 특정 표면 표식에 대 한 자석 구슬 사용 됩니다. 혈소판 내 피 성장 세포 접착 분자-1 (PECAM1, CD31)은 주로 EC에 표현 하 고이 셀 종류를 풍부 하 게 사용할 수 있습니다. 높은 셀 순도 보증 하기 위하여 원래 조 혈 모 세포 (PTPRC, CD45) 단백질 티로신 인산 가수분해 효소 수용 체 유형 C에 대 한 부정적인 선택에 의해 제외 됩니다. 또한, 품질 컨트롤, 기본 murine MMEC, 잠재적인 응용 프로그램 제한 뿐만 아니라 특별 한 고려의 재배 되 게 됩니다.

Protocol

모든 동물 실험 했다 지방 기관에 의해 승인 및 독일 동물 복지 법 (84-02.05.20.13.097) 실시. 1. 일반 발언 동물 실험에 각 기관 동물 관리의 지침에 따라 모든 마우스 실험을 수행 하 고 위원회를 사용 하 여. 마우스 및 실험실 동물 과학 협회 (FELASA)에 대 한 연맹 같은 국제 지침에 따라 표준화 된 조건에서 유지.참고: 일반적으로이 절연 기술은 마우스…

Representative Results

절연, 기본 murine MMEC 및 잔여 후에 1 일 다른 셀 대기업을 형성 하며 문화 요리 (그림 1A 주 1)의 하단을 준수 합니다. 제 7 일에,에서 평평 하 고 길쭉한 세포를 관찰할 수 있습니다. 그러나, 다른 사람, 주로 회전 타원 체 세포의 오염 여전히 표시 됩니다 (그림 1A 주 7). 따라서, CD31 긍정적인 선택을 통해 MCS가 필요의 다른 주?…

Discussion

Microvascular 내 피 세포는 모든 조직에 장벽 기능과 관련된 장기 3의 질병에 그들의 기능 장애 결과 제공합니다. 또한, microvascular EC의 기관 특정 연구 새로운 치료 전략에 대 한 방법을 포장 수 있습니다. 따라서, microvascular EC 기능 생리 및 병 태 생리 조건 하에서 깊은 이해 큰 과학적인 관심입니다. 백혈구/endothelium 상호 작용의 모듈레이션 natalizumab, 림프 구 접착을 방지 하는 항 체?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작품으로는 “다른 Kröner-Fresenius-재단”을 지원 했다 (2018_A03 TR), “혁신적인 Medizinische Forschung (IMF) Münster” (나-RU211811 TR에)와 독일 연구 재단 (DFG, INST 2105/27-1, 나 3283/5-1, 그리고 나 3283/6-1 SGM). 일러스트 이미지가 케 블 룸에서 제공 합니다.

Materials

0,25% Trypsin-EDTA Thermo Fisher 25200-056 ready to use
ACK buffer 150 mM NH4Cl, 10 mM KHCO3, 0.1 mM EDTA in water at a pH of 7.3
Anti-mouse CD31-FITC (clone MEC13.3) Biolegend 102506 Isotype control: FITC Rat IgG2a, κ Isotype Ctrl
Anti-mouse CD45-PE (clone 30-F11) Biolegend 103106 Isotype control: PE Rat IgG2b, κ Isotype Ctrl
bFGF Peprotech 100-18B Basic fibroblast growth factor
BSA Sigma Aldrich A4503
CD31 MicroBeads mouse Miltenyi Biotec 130-097-418
CD45 MicroBeads mouse Miltenyi Biotec 130-052-301
Collagenase-Dispase Roche 10269638001 Collagenase from V. alginolyticus, Dispase from B. polymyxa
Corning Costar TC-Treated Multiple 6-Well Plates Corning 3516
Cy3-conjugated anti-rat IgG antibody dianova 712-166-153
DAPI (ProLong Gold antifade reagent with DAPI) Thermo Fisher P36935
Desoxyribonuclease Sigma Aldrich D4513 Deoxyribonuclease I from bovine pancreas
Diethylpyrocarbonat treated water Thermo Fisher AM9916
DMEM, containing Glutamin Supplement and pyruvate Thermo Fisher 31966-021 warm up to 37 °C before use
dNTP Mix (10 mM) Thermo Fisher R0192 1 mL
EDTA Sigma Aldrich E5134
FACS tubes Sarstedt 551,579
Falcon 70 μm Cell Strainer Corning 352350
FC buffer 0.1% BSA, 0.2% NaN3, 2 mM EDTA
Fetal calf serum Sigma Aldrich F6178 Fetal calf serum
Fixable Viability Dye eFluor780 Thermo Fisher 65-0865-14
Forceps (serrated, straight, 12 cm) Fine Science Tools 11002-12
Forceps (serrated, straight, 12 cm) Fine Science Tools 11009-13
Insulin syringe 100 Solo 1ml (Omnifix) Braun 9161708V
large magnetiv columns (LS columns) Miltenyi Biotec 130-042-401 for CD45-MACS-step
MCS buffer 0.5% BSA, 2 mM EDTA in PBS at a pH of 7.2
Medium magnetic column (MS column) Miltenyi Biotec 130-042-201 for CD31-MACS-step
Nuclease free water Thermo Fisher R0581
PBS Sigma Aldrich Phosphate buffered saline, ready to use
PCR buffer (5x) Thermo Fisher EP0742 in a kit with the reverse transcriptase
Pecam1 rat α-mouse SantaCruz Sc-52713 100 µg/mL
Penicillin-Streptomycin Sigma Aldrich P4333
primary murine muscle cells celprogen 66066-01
Primer Cdh15 (M-Cadherin) Thermo Fisher Mm00483191_m1 FAM labeled
Primer Cldn5 (claudin-5) Thermo Fisher Mm00727012_s1 FAM labeled
Primer Ocln (occludin) Thermo Fisher Mm00500912_m1 FAM labeled
Primer Pax-7 Thermo Fisher Mm01354484_m1 FAM labeled
Primer Tjp-1 (Zonula occludens 1) Thermo Fisher Mm00493699_m1 FAM labeled
Primer 18s rRNA (Eukaryotic endogenous control) Thermo Fisher 4310893E VIC labeled
qPCR buffer (Maxima Probe/ROX qPCR Master Mix (2X) Thermo Fisher K0231 2 x 1,25 mL; for 200 reactions each
Random mixture of single-stranded primer Thermo Fisher SO142 Random Hexamer Primer
Reverse Transcriptase (200 U/μL) + PCR buffer (5x) Thermo Fisher EP0742
Rnase Inhibitor (40 U/μL) Thermo Fisher EO0381
Scissor (cutting edge 23 mm, sharp/sharp) ) Fine Science Tools 14088-10
Scissor (cutting edge 42 mm, sharp/blunt) Fine Science Tools 14001-13
Speed Coating solution PeloBiotech PB-LU-000-0002-00

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Müntefering, T., Michels, A. P., Pfeuffer, S., Meuth, S. G., Ruck, T. Isolation of Primary Murine Skeletal Muscle Microvascular Endothelial Cells. J. Vis. Exp. (145), e58901, doi:10.3791/58901 (2019).

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