Elaborazione batch delle schermate di lievito 2-ibrido consente di confronto diretto tra i profili di interazione delle proteine multiple esca con un insieme molto complesso di proteine di fusione di preda. Qui, descriviamo raffinati metodi, nuovi reagenti e come implementare il loro utilizzo per tali schermi.
Lo screening per le interazioni proteina-proteina usando il dosaggio di 2-ibrido del lievito è stato a lungo uno strumento efficace, ma il suo utilizzo in gran parte è stato limitato alla scoperta di interattori di alto-affinità che sono altamente arricchito nella biblioteca di candidati interagenti. In un formato tradizionale, il dosaggio di 2-ibrido del lievito può produrre troppo molte colonie per analizzare quando condotto presso stringenza dove potrebbero essere trovati Interactiani bassa affinità. Inoltre, senza un interrogatorio esaustivo e completo della stessa libreria contro esca diversi plasmidi, un’analisi comparativa non possono essere realizzata. Anche se alcuni di questi problemi possono essere risolto utilizzando librerie allinearono preda, il costo e l’infrastruttura necessaria per far funzionare questi schermi possono essere proibitivi. In alternativa, abbiamo adattato il dosaggio di 2-ibrido del lievito per scoprire contemporaneamente decine di transitori e interazioni proteina statico all’interno di un unico schermo che utilizzano una strategia definita profondo (arricchimento dinamico per la valutazione della proteina reti), che incorpora il sequenziamento del DNA di alto-rendimento e calcolo per seguire l’evoluzione di una popolazione di plasmidi che codificano interattori. Qui, descriviamo su misura reagenti e protocolli che consentono un profondo schermo per essere eseguito facilmente e a costi contenuti.
Una comprensione completa dei processi biologici delle cellule si basa sull’individuazione delle reti di interazione della proteina che sono alla base della loro meccanismi molecolari. Un approccio per identificare interazioni della proteina è il dosaggio di lievito 2-ibrido (Y2H), che funziona con l’assemblaggio di un fattore di trascrizione chimerica funzionante una volta due dominii della proteina di interesse associare ad uno altro1. Una tipica schermata di Y2H viene eseguita mediante la creazione di una popolazione di lievito che ospita sia una libreria di plasmidi che codificano le proteine interagenti fuse ad un attivatore trascrizionale (ad es., ‘preda’ proteina di fusione) e un plasmide dato ‘esca’ composta la proteina di interesse fusa a un dominio di legame del DNA (per esempio, il dominio legante il DNA di Gal4 che lega la sequenza d’attivazione Gal4-upstream). Uno dei principali vantaggi dell’approccio Y2H è che è relativamente facile e poco costoso per condurre in un tipico laboratorio attrezzato per lavoro biologico molecolare routine2. Tuttavia, quando tradizionalmente eseguita, un utente campioni diverse colonie che sorgono al momento della selezione per una positiva interazione Y2H. Questo limita fortemente il numero di cloni ‘preda’ libreria che può essere oggetto di indagine. Questo problema è aggravato quando l’abbondanza di una particolare preda interagente è molto alta rispetto alle altre, diminuendo la possibilità di rilevare l’interazione da plasmidi preda abbondanza bassa.
Una soluzione per l’utilizzo del principio di Y2H in una copertura completa del proteoma è l’uso di un approccio di matrice-formattato in cui una matrice contenente noto preda singoli plasmidi possa essere interrogata digitalmente. Tuttavia, tale approccio richiede un’infrastruttura che non è facilmente accessibile e conveniente per diversi ricercatori che sono interessati nella definizione Interactoma di un piccolo numero di proteine o domini3. Inoltre, librerie di prede molto complessa che possono codificare più frammenti di proteine interagenti sarebbero espandere le dimensioni di tali matrici matrice ai formati impraticabile. Un’alternativa consiste nell’eseguire saggi con librerie complesse in lotti e valutare la presenza di cloni interagenti mediante sequenziamento massivo di high throughput parallelo4. Questo può essere applicato per analizzare la presenza di prede plasmidi che sorgono nelle colonie multiple utilizzando un tipico Y2H formattato approccio nel quale lievito cellule alloggiamento un interagenti delle proteine di fusione sono autorizzate a crescere su una piastra5,6. Questa idea generale può essere accentuata per aumentare query di entrambi più esche e prede componenti al stesso tempo7,8.
Ancora, molte indagini richiedono che un più facile ancora più concentrati sforzo sulla proteina a pochi ‘esche’ e possono beneficiare più di una query esaustiva e semi-quantitativa di una libreria singola preda complessi. Abbiamo sviluppato e convalidato un metodo per eseguire gli studi di interazione della proteina su vasta scala utilizzando un principio di Y2H in batch formato4. Questo utilizza il tasso di espansione di un plasmide particolare preda come un proxy per la forza relativa di Y2H interazione9. Sequenziamento profondo di tutti i plasmidi all’interno di una popolazione sottoposta alla normale crescita o condizioni di crescita selettiva produce una mappa completa dei cloni che producono interazioni Y2H forti e deboli. Il repertorio di interattori possa essere ottenuto e confrontato direttamente attraverso più esca plasmidi. Il flusso di lavoro risultante definito profondo (arricchimento dinamico per la valutazione della proteina reti) quindi utilizzabile per identificare differenziale Interattomi dalle stesse librerie di preda per identificare le proteine, permettendo un confronto tra una proteina contro un altro.
Qui, noi dimostrare profondo e introdurre miglioramenti nei metodi di laboratorio che facilitano l’uso, che sono illustrati nella Figura 1. Miglioramenti significativi includono:
Generazione di popolazioni lievito preda. Uno dei requisiti chiavi di profondo sta generando popolazioni di lievito con i plasmidi di esche diverse che hanno la stessa distribuzione delle librerie preda del plasmide. Popolazioni di equivalente della linea di base della libreria plasmide preda sono essenziali per effettuare confronti accurati tra l’interattomi di diverse esche. Ciò si ottiene quando un plasmide di biblioteca occupa già una popolazione di lievito aploidi e lo spostamento di un plasmide dato esca in quella popolazione è ottenuto dall’accoppiamento per produrre un diploide. Qui, forniamo una guida chiara su come rendere tali popolazioni utilizzando librerie commerciali ospitate in lievito aploide. Anche se abbiamo trovato metodi che generano un elevato numero di diploidi, l’efficienza complessiva degli amori di questi ceppi di lievito commerciale libreria-contenente era basso. Di conseguenza, abbiamo costruito un nuovo ceppo che può ospitare la preda librerie che produce molto più diploidi per reazione di accoppiamento.
Nuovo set di plasmidi di esca. Molti plasmidi corrente che esprimono proteine di fusione ‘esca’ comprende della proteina di interesse e un dominio di legame al DNA sono basati su 2 µ, permettendo loro di amplificare il loro numero di copia. Questo numero di copia può essere abbastanza variabile nella popolazione e portare alla variabilità della risposta trascrizionale di Y2H. Questo a sua volta potrebbe inclinare la capacità di misurare la forza di un’interazione proteina data sulla base della risposta di crescita delle cellule in selezione. Questo può essere parzialmente indirizzo utilizzando un plasmide copia basso, alcuni dei quali precedentemente sono stati descritti come il pDEST32 commercialmente disponibili10. Abbiamo costruito un nuovo plasmide esca (pTEF-GBD) che produce proteine di fusione di dominio Gal4-DNA-binding all’interno di un plasmide copia basso basato su centromero TRP1 che trasporta il gene di resistenza Kanr che permette anche la clonazione di frammenti di esca sia a Monte e a valle del dominio legante il DNA di Gal4.
Libreria di frammento di nuovo ad alta densità Y2H. Abbiamo costruito un nuovo plasmide per librerie di casa Y2H preda e usato per costruire una libreria di Y2H altamente complessa composta casualmente tranciati frammenti di DNA genomico da Saccharomyces cerevisiae. Analisi di sequenza ha indicato che questa libreria ha avuto oltre 1 milione di elementi diversi, molto più complessi di lievito precedentemente descritti genomica Y2H plasmide biblioteche11. Con questa nuova libreria, siamo stati in grado di dimostrare che il flusso di lavoro profondo è abbastanza robusto per ospitare librerie complesse con molti plasmidi differenti in modo che sia affidabile e riproducibile.
Qui forniamo una guida per come eseguire le analisi di Y2H in batch utilizzando metodi ottimizzati. Ci sono pochi passaggi critici nella procedura per garantire che la popolazione di lievito che sarebbe stato posto sotto selezione è rappresentante della libreria di partenza e che basta con la popolazione di lievito partenza viene utilizzato per subire la selezione per limitare la variabilità . D’importanza, questi benchmark sono relativamente facili da realizzare a fianco di adattare i metodi e i materiali per un dosag…
The authors have nothing to disclose.
Ringraziamo il personale all’interno l’Istituto di genetica umana per il sequenziamento e preparazione di biblioteca NGS. Ringraziamo Einat Snir per la sua esperienza nella preparazione di frammenti di libreria genomica per la libreria di plasmide Y2H fatta qui. Questo lavoro è stato supportato dal National Institutes of Health: R21 NIH EB021870-01A1 e da NSF Research Project Grant: 1517110.
Illumina HiSeq 4000 | Illumina | deep sequencing platform | |
Monoclonal anti-HA antibodies | Biolegend | 901514 | Primary Antibody to detect expression of HA in pGal4AD constructs |
Polyclonal anti-myc antibodies | QED Biosciences Inc | 18826 | Primary Antibody to detect expression of MYC in pTEF-GBD constructs |
NarI | New England BioLabs | R0191S | |
EcoRI-HF | New England BioLabs | R3101S | |
BamHI-HF | New England BioLabs | R3236S | |
XhoI | New England BioLabs | R0146S | |
Polyethylene Glycol 3350, powder | J.T. Baker | U2211-08 | |
Salmon Sperm DNA | Trevigen, Inc sold by Fisher Scientific | 50-948-286 | carrier DNA for yeast transformation section 3.2.1. |
Kanamycin Monosulfate | Research Products International | K22000 | |
LE Agarose | GeneMate | E-3120-500 | used for making DNA agarose gels |
Sodium Chloride | Research Products International | S23025 | |
Tryptone | Research Products International | T60060 | |
D-Sorbitol | Research Products International | S23080 | |
Lithium Acetate Dihydrate | MP Biomedicals | 155256 | |
Calcium Chloride | ThermoFisher | C79 | |
EDTA Sodium Salt | Research Products International | E57020 | |
Yeast Extract Powder | Research Products International | Y20020 | |
Yeast Nitrogen Base (ammonium sulfate) w/o amino acids | Research Products International | Y20040 | |
CSM-Trp-Leu+40ADE | Formedium | DCS0789 | |
CSM-Trp-Leu-His+40ADE | Formedium | DCS1169 | |
CSM-Leu-Met | Formedium | DCS0549 | |
CSM-Trp-Met | Bio 101, Inc | 4520-922 | |
L-Methionine | Formedium | DOC0168 | |
Adenine | Research Products International | A11500 | |
D-(+)-Glucose | Research Products International | G32045 | |
Bacto Agar | BD | 214010 | used for making media plates in section 1 |
Peptone | Research Products International | P20240 | |
3-amino-1,2,4 Triazole | Sigma | A8056 | |
2-Mercaptoehanol (BME) | Sigma-Aldrich | M6250 | |
Zymolyase 100T | USBiological | Z1004 | |
Potassium phosphate dibasic | Sigma | P8281 | |
Phenol:Chloroform:IAA | Ambion | AM9732 | |
Ammonium Acetate | Sigma-Aldrich | 238074 | |
Ethanol | Decon Laboratories, INC | 2716 | |
RNAse A | ThermoFisher | EN0531 | |
Urea | Research Products International | U20200 | |
SDS | Research Products International | L22010 | |
glycerol | Sigma Aldrich | G5516 | |
Tris-HCl | Gibco | 15506-017 | |
bromophenol blue | Amresco | 449 | |
Gibson Assembly Cloning Kit | New England Biolabs | E5510S | Rapid assembly method for cloning of plasmids in section 2 |
NEBNext High-Fidelity 2x PCR Master Mix | New England Biolabs | M0541S | Used for amplification of products for Gibson Assembly in Section 2.3 as well assample preparation for DEEPN deep sequencing in section 6.2.1 |
Ethidium Bromide | Amresco | 0492-5G | |
QIAquick PCR purification kit | Qiagen | 28104 | Used for purification of pcr products in section 6.2.3 |
Qiaquick DNA Gel Extraction Kit | Qiagen | 28704 | Used for purification of digested pTEF-GBD in section 2.1 |
KAPA Hyper Prep kit | KAPA Biosystems | KK8500 | preparation kit for deep sequencing |
Codon optimization | http://www.jcat.de | ||
Codon optimization | https://www.idtdna.com/CodonOpt | ||
gBlocks | Integrated DNA Technologies | DNA fragments used for cloning in Section 2.2 | |
Strings | Thermofisher | DNA fragments used for cloning in Section 2.2 | |
GenCatch Plasmid DNA mini-prep Kit | EPOCH Life Sciences | Used to prepare quantities of DNA in Section 2.3 | |
Covaris E220 | Covaris | high performance ultra-sonicator in section 7 | |
oligo nucelotide 5’- CGGTCTT CAATTTCTCAAGTTTCAG -3’ |
Integrated DNA Technologies or Thermofisher | used for pcr amplification and sequencing 5' insert pTEF-GBD during plasmid construction | |
oligo nucelotide 5’-GAGTAACG ACATTCCCAGTTGTTC-3’ |
Integrated DNA Technologies or Thermofisher | used for pcr amplification and sequencing 5' insert pTEF-GBD during plasmid construction | |
oligo nucelotide 5’-CACCGTAT TTCTGCCACCTCTTCC-3’ |
Integrated DNA Technologies or Thermofisher | used for pcr amplification and sequencing 3' insert pTEF-GBD during plasmid construction | |
oligo nucelotide 5’-GCAACCGC ACTATTTGGAGCGCTG-3’ |
Integrated DNA Technologies or Thermofisher | used for pcr amplification and sequencing 3' insert pTEF-GBD during plasmid construction | |
oligonucleotide 5’-GTTCCGATG CCTCTGCGAGTG-3’ |
Integrated DNA Technologies or Thermofisher | 5' Pimer used for insert amplification of pGAL4AD | |
oligonucelotide 5’-GCACATGCT AGCGTCAAATACC-3’ |
Integrated DNA Technologies or Thermofisher | 3' Pimer used for insert amplification of pGAL4AD | |
oligonucelotide 5’-ACCCAAGCA GTGGTATCAACG-3’ |
Integrated DNA Technologies or Thermofisher | 5' Pimer used for insert amplification of pGADT7 | |
oligonucelotide 5’- TATTTAGA AGTGTCAACAACGTA -3’ |
Integrated DNA Technologies or Thermofisher | 3' Pimer used for insert amplification of pGADT7 | |
PJ69-4A MatA yeast strain | http://depts.washington.edu/yeastrc/ James P, Halladay J, Craig EA: Genomic Libraries and a host strain designed for highly efficient two-hybrid selection in yeast. GENETICS 1996 144:1425-1436 | MATA leu2-3,112 ura3-52 trp1-901 his3-200 gal4D, gal80D, GAL-ADE2 lys2::GAL1-HIS3 met2::GAL7 | |
pTEF-GBD | Dr. Robert Piper Lab | Gal4-DNA binding doimain expression plasmid | |
PLY5725 MATalpha yeast strain | Dr. Robert Piper Lab | MATalpha his3∆1 leu2∆0 lys2∆0 ura3∆0 gal4∆ trp1∆ Gal80∆ | |
pGal4AD (pPL6343) | Dr. Robert Piper Lab | Gal4-activation domain expression plasmid | |
100 mm petri dishes | Kord-Vallmark sold by VWR | 2900 | |
125 mL PYREX Erlenmeyer flask | Fisher Scientific | S63270 | |
250 mL PYREX Erlenmeyer flask | Fisher Scientific | S63271 | |
1,000 mL PYREX Erlenmeyer flask | Fisher Scientific | S63274 | |
2,000 mL PYREX Erlenmeyer flask | Fisher Scientific | S63275 | |
20 X 150 mm Disposable Culture Tube | Thermofisher | 14-961-33 | |
pipet-aid | Drummond | 4-000-100 | |
5 mL Serological Pipette | Denville | P7127 | |
10 mL Serological Pipette | Denville | P7128 | |
25 mL Serological Pipette | Denville | P7129 | |
1,000 mL PYREX Griffin Beaker | Fisher Scientific | 02-540P | |
1,000 mL PYREX Reuasable Media Storage Bottle | Fisher Scientific | 06-414-1D | |
1,000 mL graduated cylinder | Fisher Scientific | 08-572-6G | |
SpectraMax 190 | Molecular Devices | used to measure the Optical Density of cells | |
NanoDrop 2000 | Thermo Scientific | ND-2000 | Spectrophotometer used to quantify amount of DNA |
Electronic UV transilluminator | Ultra Lum | MEB 20 | used to visualize DNA in an Ethidium Bromide agarose gel |
P1000 Gilson PIPETMAN | Fisher Scientific | F123602G | |
P200 Gilson PIPETMAN | Fisher Scientific | F123601G | |
P20 Gilson PIPETMAN | Fisher Scientific | F123600G | |
P10 Gilson PIPETMAN | Fisher Scientific | F144802G | |
1250 µL Low Retention Pipette Tips | GeneMate | P-1236-1250 | |
200 µLLow Retention Pipette Tips | VWR | 10017-044 | |
10 µL XL Low Retention Pipette Tips | VWR | 10017-042 | |
50 mL conical tube | VWR | 490001-627 | |
15 mL conical tube | VWR | 490001-621 | |
cell scraper | Denville Scientific | TC9310 | |
1.5 mL Microcentrifuge tubes | USA Scientific | 1615-5500 | |
HCl | Fluka Analytical | 318949-1L | |
NaOH | J.T. Baker | 5674-02 | |
Wooden applicators | Solon Care | 55900 | |
Eppendorf microcentrifuge 5424 | Fisher Scientific | 05-400-005 | microcentrifuge |
Sorvall ST16R | Thermo Fisher Scientific | 75004381 | benchtop centrifuge |
Amersham ECL Rabbit IgG, HRP-linked whole Ab (from donkey) | GE Healthcare | NA934-1ML | Secondary Antibody |
Amersham ECL Mouse IgG, HRP-linked whole Ab (from sheep) | GE Healthcare | NA931-1ML | Secondary Antibody |
SuperSignal West Pico Chemiluminescent Substrate | Thermo Fisher Scientific | 34080 | ECL detection solution |
Isotemp Incubator | Thermo Fisher Scientific | Incubator | |
Mutitron 2 | INFORS HT | Shaking incubator | |
Isotemp Digital-Control Water Bath Model 205 | Fisher Scientific | water bath | |
Y2H mouse cDNA library in Y187 (pan tissue) | Clontech | 630482 | commercially available cDNA Library |
Y2H mouse cDNA library in Y187 (mouse brain) | Clontech | 630488 | commercially available cDNA Library |
pGADT7 AD Vector | Clontech | 630442 | commercially available AD Vector housing many cDNA libraries |
pGBKT7 DNA-BD Vector | Clontech | 630443 | commercially available DNA-BD Vector |
Biolase DNA Polymerase | Bioline | BIO-21042 | DNA polymerase used for section 2.4 |
GeneMate GCL-60 Thermal Cycler | BioExpress | P-6050-60 | pcr machine |
TempAssure 0.5 mL PCR tubes | USA Scientific | 1405-8100 |