Summary

Sentetik fajının inşaatı Fab Kütüphane özel çeşitliliği ile görüntülenir.

Published: May 01, 2018
doi:

Summary

Bu iletişim kuralı özel çeşitliliği ile sentetik antikor fajının görüntülenen Kütüphane inşaatı için detaylı bir yordam açıklanır. Sentetik antikorlar temel araştırma geniş uygulamalardan hastalığı teşhis ve tedavi için var.

Abstract

Monoklonal antikor (mAbs) temel araştırma ve ilaç için talep her yıl artmaktadır. Hibridoma teknoloji mAb development 1975 yılında ilk raporunu beri için baskın yöntemi olmuştur. Humira, ilk fajının elde edilen antikor ve en çok satan mAbs biri 2002 romatoid artrit klinik tedavi için kabul edildi beri alternatif bir teknoloji olarak, fajının görüntüleme yöntemleri mAb gelişimi için giderek daha caziptir. MAb geliştirme teknolojisi olmayan bir hayvan dayalı olarak FAJ ekran antijen immünojenisite, insanlaştırma ve geleneksel Hibridoma teknolojisi tabanlı antikor geliştirme gerekli olan hayvan bakım atlar. Bu protokol için farklılıkların 109-1010 tek bir adım ile elde edilebilecek olan kütüphanelerin sentetik fajının görüntülenen Fab inşaat için bir yöntem açıklanmaktadır. Bu iletişim kuralı oluşur: 1) yüksek verimli elektro-yetkili cep hazırlık; 2) çıkarma urasil içeren tek iplikçikli DNA (dU-ssDNA); 3) Kunkel’ın yöntemi Oligonükleotid yönetmen mutagenesis dayalı; 4) elektroporasyon ve Kütüphane boyutu hesaplanması; 5) katlama için protein A/L-esaslı enzim bağlı immunosorbent assay (ELISA) ve işlevsel çeşitlilik değerlendirme; ve 6) DNA dizi analizi çeşitlilik.

Introduction

mAbs geniş uygulamaların temel araştırma hastalığı teşhis ve tedavi için arasında değişen vardır. 2016 yılı itibariyle, 60’tan fazla mAbs Amerika Birleşik Devletleri Gıda ve ilaç Yönetimi (USFDA) tarafından otoimmün hastalıklar, kanser ve enfeksiyon hastalıkları1,2klinik tedavisi için onaylanmıştır.

1975 yılında, Kohler ve Milstein bildirilen bir teknik ‘hybridomas’ ve bu teknik anılacaktır hücresel bir kaynaktan gelen tek bir klonal özgüllüğü sıra sürekli nesil için daha sonra tıp ve sanayi3 temel taşı haline geldi ,4. Bu yöntem tarafından mAbs nesil antijen üretim, fare bağışıklama, B lenfositler çıkarımı, fusion B hücreleri ile ölümsüz Hibridoma hücreleri, klon seçimi, kurmaya miyelom hücreleri ve tedavi uygulamaları için de dahil olmak üzere çeşitli adımlar gerektirir, insanlaştırma insan anti-fare antikor (HAMA)4,5önlemek için gereklidir. Ancak, bu teknoloji için toksinler, patojenler ve son derece korunmuş proteinler gibi antijenleri vivo içinde bağışıklık yanıtının mAb üretim5için tetikleyen görece etkisiz.

1978 yılında, Hutchison ve ark. bir kalıntı tek iplikçikli bakteriyofaj virüs6doğrudan mutagenesis bir Oligonükleotid kullanımı rapor. 1985 yılında, Smith yabancı gen parçaları çerçevede fajının kat protein III kodlama gen ile erimiş ve böylece fajının yüzeyinde onun infektivite7ödün vermeden görüntülenebilir bildirdi. Bunlar işleri öncü bağışıklık, saf kitaplıklarda antikor fajının görüntülenen sonraki inşası için bir temeli atıldı ve sentetik için tek-zinciri değişken parçası (scFv) ve antijen bağlayıcı parçası (Fab) biçimleriyle formları tedavi mAb development8,9. Görüş teknik açıdan fajının antikor ekran tabanlı geliştirme bazı antijenleri-ebilmek poz vermek sınırlamaları aşmak için yardımcı olabilir mAb Hibridoma tabanlı geliştirme için tamamlayıcı bir yaklaşım sunuyor ve insanlaştırma işlemek Hibridoma kaynaklı antikorlar genellikle5gerektirir. 2016, tarihi itibariyle 6 fajının görüntü elde edilen mAbs piyasada Humira, romatoid artrit, tedavisinde kullanılan en başarılı mAbs biri de dahil olmak üzere onaylanmış olan ve çok fajının görüntü elde edilen antikor aday çeşitli aşamalarında klinik şu anda soruşturma10.

Bağışıklık ve saf fajının antikor kitaplıkları tamamlayıcılık belirleme çeşitliliği için hafif ve ağır zincir (CDRs) bölgelerde doğal bağışıklık repertuar (Yani, B hücreleri) türetilir. Buna ek olarak, sentetik fajının antikor kütüphanelerde CDRs çeşitliliği tamamen yapay. Kütüphane inşaat sentetik yaklaşımlar sıra çeşitlilik tasarım üzerinde tam denetim sağlamak ve antikor yapısı mekanik çalışmaları için fırsatlar sunuyoruz ve11,12işlev. Ayrıca, sentetik kitaplıkları için bir çerçeve, büyük ölçekli endüstriyel gelişme11,12kolaylaştırmak için kütüphane inşaat önce optimize edilebilir.

1985 yılında Kunkel site yönettiği mutasyonlar M13 bakteriyofaj içine verimli bir şekilde tanıtmak için bir tek iplikçikli DNA (ssDNA) mutagenesis şablon tabanlı yaklaşım bildirdi13. Bu yaklaşım daha sonra yaygın olarak FAJ görüntülenen kitaplıkları yapımı için kullanıldı. Kimyasal sentez DNA oligonucleotides çeşitlilik Fab CDRs tanıtmak için tasarlanmış bir phagemid bir antikor omurga şablonuyla içine dahil edilmiştir. Bu süreçte phagemid bir urasil içeren ssDNA (dU-ssDNA) ifade edilir ve oligonucleotides CDRs komplementer ve çift iplikçikli DNA (dsDNA) T7 DNA polimeraz ve T4 DNA ligaz sentezlemek için genişletilmiş. Son olarak, oluşturulan ds-DNA tarafından elektroporasyon Escherichia coli tanıttı olabilir.

Yüksek çeşitlilik, Kütüphane fajının görüntülenen inşaat, yüksek voltajlı elektroporasyon elektro-yetkili hücre ve kovalent bir iki bileşenli karışımı için kapalı dairesel dsDNA (CCC-dsDNA) dikkatli bir şekilde hazırlanmalıdır. Sidhu vd. elektro-yetkili hücreleri ve DNA hazırlanması geleneksel yöntemleri ve büyük ölçüde gelişmiş kitaplık çeşitlilik14değiştiren.

Bu protokol için farklılıkların 109-1010 tek bir adım ile elde edilebilecek olan kütüphanelerin sentetik fajının görüntülenen Fab inşaat için bir yöntem açıklanmaktadır. Şekil 1 gösterir inşaat Kütüphanesi dahil olmak üzere genel bir bakış: 1) yüksek verimli elektro-yetkili cep hazırlık; 2) dU-ssDNA çıkarılması; 3) Kunkel’ın yöntemi Oligonükleotid yönetmen mutagenesis dayalı; 4) elektroporasyon ve Kütüphane boyutu hesaplanması; 5) katlanır için protein A/L tabanlı ELISA ve işlevsel çeşitlilik değerlendirme; ve 6) DNA dizi analizi çeşitlilik. Tüm reaktifler, soy ve donanımları malzemenin tablolistelenir. Tablo 1 reaktif kurulumu gösterir.

Protocol

Not: Filtre steril ipuçları boyunca Feyc ile uğraşırken pipet silah ve çevresi kirlenmesini önlemek için kullanılmalıdır. Bakteri ve Feyc ile işleme deneyler aseptik alan veya başlık kullanılmalıdır. Feyc deneme alanı fajının kirlenmesini önlemek için % 70 etanol tarafından takip % 2 Sodyum Lauryl Sülfat (SDS) kullanarak temizlenmesi gerekir. Bu protokol için seri dilutions yapmak için yeni ipuçları her seyreltme için kullanılmalıdır. 1. E. Coli SS320 ele…

Representative Results

Akış şeması Fab Kütüphane inşaat takip (bakınız şekil 1), önceden bulaşmış fajının E. coli SS320 elektro-yetkili hücreleri M13KO7 yardımcı hazırladık. Fab phagemid omurga Kütüphane yapımı için kullanıldığında bu elektro-yetkili hücrelerin verimliliğini 2 X 109 cfu/µg tahmin edilmektedir (şekil 4). Urasil birleşme ve…

Discussion

Yüksek çeşitlilik, Fab kitaplıkları fajının görüntülenen, kalite kontrol oluşturmak için onay noktaları yeterliliğinin elektro-yetkili hücreleri, dU-ssDNA şablon, verimliliğini kalitesini de dahil olmak üzere inşaat süreci çeşitli aşamalarında izlemek için gereklidir CCC-dsDNA sentezi, titresi çoğalmasıyla, Fab katlama ve CDRs amino asit çeşitliliği Fab-fajının klon dizi analizi tarafından sonra.

Yüksek verim ve dU-ssDNA saflığı yüksek mutagenesis oranı …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Yazarlar için kritik yorum Kunkel’ın yöntemi göre sentetik Fab fajının Kütüphane inşaat üstünde Sidhu Laboratuarı’ndan Dr. Frederic Fellouse için teşekkür ederiz. Bayan Alevtina Pavlenco ve diğer üyeler için yüksek verimli elektro-yetkili hazırlama değerli yardım etmek Sidhu laboratuarından yazarlar takdir E. coli hücreleri ve yüksek kaliteli dU-ssDNA. Bu eser Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı Çin tarafından desteklenmiştir (Grant No: 81572698, 31771006) için DW ve ShanghaiTech Üniversitesi tarafından (Grant No: F-0301-13-005) laboratuvar antikor mühendislik için.

Materials

Reagents
1.0 M H3PO4 Fisher AC29570
1.0 M Tris, pH 8.0 Invitrogen 15568-025
10 mM ATP Invitrogen 18330-019
100 mM dithiothreitol Fisher BP172
100 mM dNTP mix GE Healthcare 28-4065-60 solution containing 25 mM each of dATP, dCTP, dGTP and dTTP.
3,3’,5,5’-tetramethylbenzidine (TMB) Kirkegaard & Perry Laboratories Inc 50-76-02
50X TAE Invitrogen 24710030
Agarose Fisher BP160
Carbenicillin, carb Sigma C1389 100 mg/mL in water,  0.22 μm filter-sterilize, work concentration: 100 μg/mL.
Chloramphenicol, cmp Sigma C0378 100 mg/mL in ethanol, 0.22 μm filter-sterilize, work concentration: 10 μg/mL.
EDTA 0.5 M, pH 8.0 Invitrogen AM9620G
Granulated agar VWR J637-500G
H2O2 peroxidase substrate Kirkegaard & Perry Laboratories Inc 50-65-02
K2HPO4 Sigma 795488
Kanamycin, kan Fisher AC61129 50 mg/mL in water,  0.22 μm filter-sterilize, work concentration: 50 μg/mL.
KH2PO4 Sigma P2222
Na2HPO4 Sigma 94046
NaCl Alfa Aesar U19C015
Nanodrop Fisher ND2000C
NaOH Fisher SS256 ! CAUTION NaOH causes burns.
NON-Fat Powdered Milk Sangon Biotech A600669
PEG-8000 Fisher BP233
Protein A-HRP conjugate Invitrogen 101123
QIAprep Spin M13 Kit Qiagen 22704
QIAquick Gel Extraction Kit Qiagen 28706
QIAquick PCR Purification Kit Qiagen 28104
Recombinant Protein L Fisher 77679
T4 DNA polymerase New England Biolabs M0203S
T4 polynucleotide kinase New England Biolabs M0201S
T7 DNA polymerase New England Biolabs M0274S
Tetracycline, tet Sigma T7660 50 mg/mL in water, 0. 22 μm filter-sterilize, work concentration: 10 μg/mL.
Tryptone Fisher 0123-07-5
Tween-20 Sigma P2287
Ultrapure glycerol Invitrogen 15514-011
Uridine Sigma U3750 25 mg/mL in ethanol, work concentration: 0.25 μg/mL.
Yeast extract VWR DF0127-08
Name Company Catalog Number Comments
Strains
E.coli CJ236 New England Biolabs E4141 Genotype: dut  ung  thi-1 relA1 spoT1 mcrA/pCJ105(F' camr). Used for preparation of dU-ssDNA.
E.coli SS320 Lucigen 60512 Genotype: [F'proAB+lacIq lacZΔM15 Tn10 (tetr)] hsdR mcrB araD139 Δ(araABC-leu)7679 ΔlacX74 galUgalK rpsL thi. Optimized for high-efficiency electroporation and filamentous bacteriophage production.
M13KO7 New England Biolabs N0315S
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
0.2-cm gap electroporation cuvette BTX
96-well 2mL Deep-well plates Fisher 278743
96-well Maxisorp immunoplates Nunc 151759
Baffled flasks Corning
Benchtop centrifuge Eppendorf 5811000096
Centrifuge bottles Nalgene
ECM-630 electroporator BTX
Magnetic stir bars Nalgene
Thermo Fisher centrifuge Fisher
High speed shaker TAITEK MBR-034P
Microplate shaker QILINBEIER QB-9002
Liquid handler for 96 and 384 wells RAININ
Mutil-channel pipette RAININ E4XLS
Amicon concentrator Merck UFC803096

Riferimenti

  1. Singh, S., et al. Monoclonal Antibodies: A Review. Curr Clin Pharmacol. , (2017).
  2. Reichert, J. M. Antibodies to watch in 2017. MAbs. 9 (2), 167-181 (2017).
  3. Kohler, G., Milstein, C. Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specificity. Nature. 256 (5517), 495-497 (1975).
  4. Milstein, C. The hybridoma revolution: an offshoot of basic research. Bioessays. 21 (11), 966-973 (1999).
  5. Gray, A. C., Sidhu, S. S., Chandrasekera, P. C., Hendriksen, C. F., Borrebaeck, C. A. Animal-Friendly Affinity Reagents: Replacing the Needless in the Haystack. Trends Biotechnol. 34 (12), 960-969 (2016).
  6. Hutchison, C. A., et al. Mutagenesis at a specific position in a DNA sequence. J Biol Chem. 253 (18), 6551-6560 (1978).
  7. Smith, G. P. Filamentous fusion phage: novel expression vectors that display cloned antigens on the virion surface. Science. 228 (4705), 1315-1317 (1985).
  8. Sidhu, S. S. . Phage Display in Biotechnology and Drug Discovery. , (2005).
  9. Weiss, G. A., Watanabe, C. K., Zhong, A., Goddard, A., Sidhu, S. S. Rapid mapping of protein functional epitopes by combinatorial alanine scanning. Proc Natl Acad Sci U S A. 97 (16), 8950-8954 (2000).
  10. Frenzel, A., Schirrmann, T., Hust, M. Phage display-derived human antibodies in clinical development and therapy. MAbs. 8 (7), 1177-1194 (2016).
  11. Sidhu, S. S., Fellouse, F. A. Synthetic therapeutic antibodies. Nat Chem Biol. 2 (12), 682-688 (2006).
  12. Adams, J. J., Sidhu, S. S. Synthetic antibody technologies. Curr Opin Struct Biol. 24, 1-9 (2014).
  13. Kunkel, T. A. Rapid and efficient site-specific mutagenesis without phenotypic selection. Proc Natl Acad Sci U S A. 82 (2), 488-492 (1985).
  14. Sidhu, S. S., Lowman, H. B., Cunningham, B. C., Wells, J. A. Phage display for selection of novel binding peptides. Methods Enzymol. 328, 333-363 (2000).
  15. Persson, H., et al. CDR-H3 diversity is not required for antigen recognition by synthetic antibodies. J Mol Biol. 425 (4), 803-811 (2013).
  16. Lefranc, M. P., et al. IMGT unique numbering for immunoglobulin and T cell receptor variable domains and Ig superfamily V-like domains. Dev Comp Immunol. 27 (1), 55-77 (2003).
  17. Graille, M., et al. Complex between Peptostreptococcus magnus protein L and a human antibody reveals structural convergence in the interaction modes of Fab binding proteins. Structure. 9 (8), 679-687 (2001).
  18. Graille, M., et al. Crystal structure of a Staphylococcus aureus protein A domain complexed with the Fab fragment of a human IgM antibody: structural basis for recognition of B-cell receptors and superantigen activity. Proc Natl Acad Sci U S A. 97 (10), 5399-5404 (2000).
  19. Huang, R., Fang, P., Kay, B. K. Improvements to the Kunkel mutagenesis protocol for constructing primary and secondary phage-display libraries. Methods. 58 (1), 10-17 (2012).
  20. Chen, G., Sidhu, S. S. Design and generation of synthetic antibody libraries for phage display. Methods Mol Biol. 1131, 113-131 (2014).
  21. Padlan, E. A. Anatomy of the antibody molecule. Mol Immunol. 31 (3), 169-217 (1994).
  22. Virnekas, B., et al. Trinucleotide phosphoramidites: ideal reagents for the synthesis of mixed oligonucleotides for random mutagenesis. Nucleic Acids Res. 22 (25), 5600-5607 (1994).
  23. Fellouse, F. A., Sidhu, S. S. . Making and Using Antibodies: A Practical Handbook. , 157-180 (2006).
  24. Fantini, M., et al. Assessment of antibody library diversity through next generation sequencing and technical error compensation. PLoS One. 12 (5), e0177574 (2017).
  25. Glanville, J., et al. Deep sequencing in library selection projects: what insight does it bring?. Curr Opin Struct Biol. 33, 146-160 (2015).
  26. Perelson, A. S., Oster, G. F. Theoretical studies of clonal selection: minimal antibody repertoire size and reliability of self-non-self discrimination. J Theor Biol. 81 (4), 645-670 (1979).
  27. Miersch, S., et al. Scalable high throughput selection from phage-displayed synthetic antibody libraries. J Vis Exp. (95), e51492 (2015).
  28. Ponsel, D., Neugebauer, J., Ladetzki-Baehs, K., Tissot, K. High affinity, developability and functional size: the holy grail of combinatorial antibody library generation. Molecules. 16 (5), 3675-3700 (2011).
  29. Petering, J., McManamny, P., Honeyman, J. Antibody therapeutics – the evolving patent landscape. N Biotechnol. 28 (5), 538-544 (2011).

Play Video

Citazione di questo articolo
Huang, G., Zhong, Z., Miersch, S., Sidhu, S. S., Hou, S., Wu, D. Construction of Synthetic Phage Displayed Fab Library with Tailored Diversity. J. Vis. Exp. (135), e57357, doi:10.3791/57357 (2018).

View Video