Summary

Overvåking celle til celle overføring av Prion som Protein mengdefunksjoner i Drosophila Melanogaster

Published: March 12, 2018
doi:

Summary

Samler bevis støtter ideen om at sykdomsfremkallende protein aggregater knyttet til nevrodegenerative sykdommer spre mellom celler med prion-lignende egenskaper. Her beskriver vi en metode som gjør at visualisering av celle-til-celle spredning av prion som aggregater i modellen organismen, Drosophila melanogaster.

Abstract

Protein samling er en sentral funksjon for de fleste nevrodegenerative sykdommer, inkludert Alzheimers sykdom (AD), Parkinsons sykdom (PD), Huntingtons sykdom (HD) og amyotrofisk lateral sklerose (ALS). Protein aggregater er nært forbundet med neuropathology i disse sykdommer, men den eksakte mekanismen som avvikende protein aggregering forstyrrer vanlig mobilnettet homeostase ikke er kjent. Nye data gir sterk støtte for hypotesen at sykdomsfremkallende mengdefunksjoner i Annonsen, PD, HD, og ALS har mange likheter prioner, som er bare protein smittestoffer ansvarlig for smittsomme kugalskap Anne encephalopathies. Prioner replikere selv av templating konvertering av innfødt-brettet versjoner av samme protein, forårsaker spredning av aggregering fenotypen. Hvordan prioner og prion-lignende proteiner i Annonsen, PD, HD og ALS trekk fra en celle til en annen er et område av intens gransking. Her beskrives Drosophila melanogaster modell som tillater overvåking av prion-lignende, celle-til-celle overføring av mutant huntingtin (Htt) aggregater forbundet med HD. Denne modellen tar nytte av kraftige verktøy for å manipulere transgene uttrykk i mange forskjellige Drosophila vev og benytter en fluorescently merket cytoplasmatiske protein til direkte rapport prion som overføring av mutant Htt aggregater. Viktigere, kan tilnærmingen vi beskriver her brukes til å identifisere romanen gener og veier som megle spredning av protein aggregater mellom ulike cellen typer i vivo. Informasjon fra disse studiene utvide begrenset forståelse av patogene mekanismer som ligger til grunn for nevrodegenerative sykdommer og avsløre nye muligheter for terapeutisk intervensjon.

Introduction

Prion hypotesen uttaler at smittsomme agent ansvarlig for smittsomme kugalskap Anne encephalopathies (f.eksCreutzfeldt – Jakob sykdom hos mennesker, Skrapesyke sauer, kronisk herjer sykdom i hjort og elg og “kugalskap” i storfe ) utelukkende består av protein og blottet for nukleinsyrer1. Prionsykdommer inneholder mobilnettet prion protein (PrPC) en ikke-native, stabil fold (PrPSc) som er svært beta ark-rik og kan selv reprodusere ved konvertering og rekruttere monomerisk PrPC molekyler i stabil amyloid samler. PrPSc aggregater bruke denne selvreproduserende mekanismen for å spre mellom forskjellige cellene i en organisme og mellom individuelle organismer2.

Protein misfolding og aggregering er også en sentral funksjon for de fleste nevrodegenerative sykdommer (Alzheimers sykdom (AD), Parkinsons sykdom (PD), Huntingtons sykdom (HD) og amyotrofisk lateral sklerose (ALS))3. Dannelsen av intra – eller ekstra cellular aggregert protein samlinger i disse sykdommene er nært forbundet med cytotoksisitet4 og fortsetter langs svært reproduserbare og sykdom-spesifikke stier gjennom hjernen over tid5, 6. disse mønstrene spredningen foreslår at sykdomsfremkallende aggregater knyttet disse lidelser har prion-lignende egenskaper. Sterk støtte finnes nå prion som overføring av aggregater forbundet med Annonsen, PD, HD og ALS – de spredte seg fra celle til celle og mal conformational endringen av monomerisk samme protein i tidligere upåvirket celler7, 8.

Fleste studier undersøker prion som spredning av protein aggregater hittil har utført med pattedyr celle kultur modeller, der aggregater overføring i cytoplasma naiv celler fra ekstracellulære plass eller fra en annen celle cytoplasma9,10,11,12,13,14,15, eller injisere samlet inneholder materiale i musen hjerner og overvåking samle utseende utenfor de injeksjon område16,17,18,19,20,21,22, 23. mer nylig transgene dyrene har blitt brukt til å demonstrere at intracellulær aggregater spre seg til andre celler i intakt hjerner24,25,26,27, 28,29,30. Her beskriver vi en metode for direkte visualisering av samlet overføring mellom enkeltceller i Drosophila melanogasterintakt hjerne. Drosophila modeller av HD/polyglutamine (polyQ) sykdommer ble først utviklet nesten to tiår siden31,32 og har gitt mange uvurderlig innsikt i de patogene mekanismene som ligger til grunn for disse lidelser 33. HD er en arvelig nevrodegenerativ lidelse forårsaket av en autosomal dominant mutasjon i genet som koder for protein huntingtin (Htt)34. Denne mutasjonen resulterer i utvidelsen av polyQ strekk nær Htt’s N-terminus utover en sykdomsfremkallende terskel for ~ 37 glutamines, forårsaker protein misfold og samlet35,36. Vill-type Htt proteiner som inneholder < 37 glutamines i denne strekningen oppnå sin opprinnelige fold, men kan induserte å samle på direkte fysisk kontakt med en Htt samlet "frø"12,27,37. Vi utnytte denne homotypic, kjerne samling av vill-type Htt som en avlesning for prion-lignende overføring og cytoplasmatiske oppføring av mutant Htt aggregater opprinnelse i andre celler.

Bestemme mekanismer av hvilke prion som aggregater kan reise mellom celler føre til identifisering av romanen terapeutiske mål for uhelbredelig nevrodegenerative sykdommer. Vi tar nytte av rask levetid, brukervennlighet og genetisk tractability av Drosophila melanogaster definere molekylære mekanismer for celle til celle spredning av mutant Htt aggregater. Vår eksperimentelle strategi benytter to binære uttrykk systemer tilgjengelig i Drosophila, den veletablerte Gal4-spesifikke oppstrøms aktivering sekvens (Gal4-UAS) systemet38 og den nylig utviklet QF-QUAS systemet39. Koble disse to uavhengige systemene kan begrense uttrykk for mutant og vill-type Htt effekter av transgener til ulike celle populasjoner i samme fly40. Bruker denne tilnærmingen, undersøke vi prion som spredning av mutant Htt ved å overvåke videreformidling av cytoplasmatiske vill-type Htt fra tilstanden vanligvis diffus, løselig til en samlet stat, en direkte konsekvens av fysisk kontakt med en pre-formet mutant Htt samlet “frø”. Konvertering av vill-type Htt av mutant Htt kan bekreftes med biokjemiske eller Biofysiske teknikker som rapporterer protein-protein interaksjoner, for eksempel fluorescens resonans energi overføring (bånd)9,27,41 .

Viktigere, får vi også en rekke genetisk verktøy i Drosophila å identifisere gener og/eller veier som megle prion som spredning av protein aggregat. Vi har nylig brukt denne tilnærmingen for å avsløre en nøkkelrolle for cellen overflaten scavenger receptor, Draper42,43, overføre mutant Htt aggregater fra neuronal axons til nærliggende phagocytic glia i Drosophila sentrale nervesystemet (CNS)27. Dermed kan den genetiske og bildebehandling-tilnærmingen som vi beskriver her avsløre viktig grunnleggende biologisk informasjon om en sykdom relevante fenomen i enkel-å-bruk men kraftig modell organisme, Drosophila.

Protocol

1. Koble Gal4 – og QF-mediert Htt Transgene uttrykk i Drosophila Samle og/eller generere transgene Drosophila melanogaster linjer med vev-spesifikke Gal4 eller QF “drivers”, samt linjer med vill-type eller mutant Htt effekter av transgener nedstrøms av Gal4-UAS38 eller QF-QUAS39. Kontroller at proteiner som er uttrykt fra disse effekter av transgener er smeltet fluorescerende proteiner eller epitope-merket å tillate differensiering av mutant og…

Representative Results

Metodene som er beskrevet her gi robust data demonstrere prion som overføring av Htt protein aggregater fra én celle befolkningen til en annen i intakt fly CNS. Konvertering av vill-type Htt fra diffuse til vises punctate er observert av direkte fluorescens denne YFP fusion protein i mottakerens glia som følge av HttQ91-mCherry uttrykk i donor ORNs (figur 2Vekselstrøm og Figur 4A, B). Nøyakt…

Discussion

Som antall pasienter som lider av nevrodegenerative sykdommer fortsetter å øke, er det et presserende behov for å øke forståelsen av molekylære patogenesen av disse sykdommene slik at bedre behandlinger kan utvikles. Her beskriver vi metodene som tillater for overvåking prion som overføring av patogene protein aggregater mellom ulike celletyper i modellen organismen, Drosophila melanogaster. Vi har nylig brukt denne metodikken å demonstrere prion som overføring av mutant Htt aggregater i vivo

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker medlemmer av Kopito, Luo og Pearce laboratorier for mange nyttig diskusjoner under utviklingen av disse metodene. Vi har også takke Brian Temsamrit for kritisk lesning av dette manuskriptet. Dette arbeidet ble støttet av midler fra Universitetet i realfag og ww Smith veldedige stiftelser.

Materials

Phosphate buffered saline (PBS), 10X, pH 7.4 ThermoFisher Scientific AM9625 Dilute to 1X
Triton X-100 Sigma-Aldrich T9284-1L
Kimwipes Thomas Scientific 2904F24
20% paraformaldehyde (PFA) Electron Microscopy Sciences 15713-S
Normal Goat Serum (NGS), filtered Lampire Biological Laboratories 7332500 Aliquot and freeze upon receipt
Chicken anti-GFP Aves Labs GFP-1020 Use at 1:500 dilution
Rabbit anti-DsRed Clontech 632496 Use at 1:2000 dilution; can recognize DsRed-based fluorescent proteins (e.g. mCherry, mStrawberry, tdTomato, etc.)
Mouse anti-Bruchpilot Developmental Studies Hybridoma Bank nc82 Use at 1:100 dilution; will label active pre-synaptic structures thoughout the fly brain
FITC anti-chicken ThermoFisher Scientific SA1-7200 Use at 1:250 dilution
Alexa Fluor 568 anti-rabbit Life Technologies A11011 Use at 1:250 dilution
Alexa Fluor 647 anti-mouse antibody Life Technologies A21235 Use at 1:250 dilution
Slowfade Gold Antifade Reagent Life Technologies S36936
Microscope Slides (25 x 75 x 1.0 mm) Fisher Scientific 12-550-143
Cover Glass (22 x 22 mm) Globe Scientific 1404-15
Dumont Biology Grade Forceps, Style 3 Ted Pella 503 use in non-dominant hand
Dumont Biology Grade Forceps, Style 5 Ted Pella 505 use in dominant hand
LAS X image analysis software Leica
Imaris image analysis software Bitplane

Riferimenti

  1. Prusiner, S. B. Biology and genetics of prions causing neurodegeneration. Annu Rev Genet. 47, 601-623 (2013).
  2. Haïk, S., Brandel, J. P. Infectious prion diseases in humans: Cannibalism, iatrogenicity and zoonoses. Infect Genet Evol. 26, 303-312 (2014).
  3. Balch, W. E., Morimoto, R. I., Dillin, A., Kelly, J. W. Adapting Proteostasis for Disease Intervention. Science. 319 (5865), 916-919 (2008).
  4. Stroo, E., Koopman, M., Nollen, E. A., Mata-Cabana, A. Cellular Regulation of Amyloid Formation in Aging and Disease. Front Neurosci. 11, 64 (2017).
  5. Brundin, P., Melki, R., Kopito, R. Prion-like transmission of protein aggregates in neurodegenerative diseases. Nat Rev Mol Cell Biol. 11 (4), 301-307 (2010).
  6. Jucker, M., Walker, L. C. Self-propagation of pathogenic protein aggregates in neurodegenerative diseases. Nature. 501 (7465), 45-51 (2013).
  7. Stopschinski, B. E., Diamond, M. I. The prion model for progression and diversity of neurodegenerative diseases. Lancet Neurol. 16 (4), 323-332 (2017).
  8. Walker, L. C., Jucker, M. Neurodegenerative diseases: expanding the prion concept. Annu Rev Neurosci. 38, 87-103 (2015).
  9. Holmes, B. B., et al. Heparan sulfate proteoglycans mediate internalization and propagation of specific proteopathic seeds. Proc Natl Acad Sci U S A. 110 (33), 3138-3147 (2013).
  10. Munch, C., O’Brien, J., Bertolotti, A. Prion-like propagation of mutant superoxide dismutase-1 misfolding in neuronal cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (9), 3548-3553 (2011).
  11. Nonaka, T., et al. Prion-like properties of pathological TDP-43 aggregates from diseased brains. Cell Rep. 4 (1), 124-134 (2013).
  12. Ren, P. H., et al. Cytoplasmic penetration and persistent infection of mammalian cells by polyglutamine aggregates. Nat Cell Biol. 11 (2), 219-225 (2009).
  13. Trevino, R. S., et al. Fibrillar structure and charge determine the interaction of polyglutamine protein aggregates with the cell surface. J Biol Chem. 287 (35), 29722-29728 (2012).
  14. Volpicelli-Daley, L. A., et al. Exogenous alpha-synuclein fibrils induce Lewy body pathology leading to synaptic dysfunction and neuron death. Neuron. 72 (1), 57-71 (2011).
  15. Zeineddine, R., et al. SOD1 protein aggregates stimulate macropinocytosis in neurons to facilitate their propagation. Mol Neurodegener. 10, 57 (2015).
  16. Ayers, J. I., Fromholt, S. E., O’Neal, V. M., Diamond, J. H., Borchelt, D. R. Prion-like propagation of mutant SOD1 misfolding and motor neuron disease spread along neuroanatomical pathways. Acta Neuropathol. 131 (1), 103-114 (2016).
  17. Clavaguera, F., et al. Brain homogenates from human tauopathies induce tau inclusions in mouse brain. Proc Natl Acad Sci U S A. 110 (23), 9535-9540 (2013).
  18. de Calignon, A., et al. Propagation of tau pathology in a model of early Alzheimer’s disease. Neuron. 73 (4), 685-697 (2012).
  19. Eisele, Y. S., et al. Induction of cerebral beta-amyloidosis: intracerebral versus systemic Abeta inoculation. Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (31), 12926-12931 (2009).
  20. Luk, K. C., et al. Pathological alpha-synuclein transmission initiates Parkinson-like neurodegeneration in nontransgenic mice. Science. 338 (6109), 949-953 (2012).
  21. Meyer-Luehmann, M., et al. Exogenous induction of cerebral beta-amyloidogenesis is governed by agent and host. Science. 313 (5794), 1781-1784 (2006).
  22. Mougenot, A. L., et al. Prion-like acceleration of a synucleinopathy in a transgenic mouse model. Neurobiol Aging. 33 (9), 2225-2228 (2012).
  23. Rey, N. L., et al. Widespread transneuronal propagation of alpha-synucleinopathy triggered in olfactory bulb mimics prodromal Parkinson’s disease. J Exp Med. 213 (9), 1759-1778 (2016).
  24. Babcock, D. T., Ganetzky, B. Transcellular spreading of huntingtin aggregates in the Drosophila brain. Proc Natl Acad Sci U S A. 112 (39), 5427-5433 (2015).
  25. Kim, D. K., et al. Anti-aging treatments slow propagation of synucleinopathy by restoring lysosomal function. Autophagy. 12 (10), 1849-1863 (2016).
  26. Liu, L., et al. Trans-synaptic spread of tau pathology in vivo. PLoS One. 7 (2), 31302 (2012).
  27. Pearce, M. M., Spartz, E. J., Hong, W., Luo, L., Kopito, R. R. Prion-like transmission of neuronal huntingtin aggregates to phagocytic glia in the Drosophila brain. Nat Commun. 6, 6768 (2015).
  28. Pearce, M. M. Prion-like transmission of pathogenic protein aggregates in genetic models of neurodegenerative disease. Curr Opin Genet Dev. 44, 149-155 (2017).
  29. Pecho-Vrieseling, E., et al. Transneuronal propagation of mutant huntingtin contributes to non-cell autonomous pathology in neurons. Nat Neurosci. 17 (8), 1064-1072 (2014).
  30. Wu, J. W., et al. Neuronal activity enhances tau propagation and tau pathology in vivo. Nat Neurosci. 19 (8), 1085-1092 (2016).
  31. Jackson, G. R., et al. Polyglutamine-expanded human huntingtin transgenes induce degeneration of Drosophila photoreceptor neurons. Neuron. 21 (3), 633-642 (1998).
  32. Warrick, J. M., et al. Expanded polyglutamine protein forms nuclear inclusions and causes neural degeneration in Drosophila. Cell. 93 (6), 939-949 (1998).
  33. McGurk, L., Berson, A., Bonini, N. M. Drosophila as an In Vivo Model for Human Neurodegenerative Disease. Genetica. 201 (2), 377-402 (2015).
  34. The Huntington’s Disease Collaborative Research Group. A novel gene containing a trinucleotide repeat that is expanded and unstable on Huntington’s disease chromosomes. Cell. 72 (6), 971-983 (1993).
  35. Bates, G. P., et al. Huntington disease. Nat Rev Dis Primers. 1, 15005 (2015).
  36. Scherzinger, E., et al. Self-assembly of polyglutamine-containing huntingtin fragments into amyloid-like fibrils: implications for Huntington’s disease pathology. Proc Natl Acad Sci U S A. 96 (8), 4604-4609 (1999).
  37. Chen, S., Berthelier, V., Yang, W., Wetzel, R. Polyglutamine aggregation behavior in vitro supports a recruitment mechanism of cytotoxicity. J Mol Biol. 311 (1), 173-182 (2001).
  38. Brand, A. H., Perrimon, N. Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes. Development. 118 (2), 401-415 (1993).
  39. Potter, C. J., Tasic, B., Russler, E. V., Liang, L., Luo, L. The Q system: a repressible binary system for transgene expression, lineage tracing, and mosaic analysis. Cell. 141 (3), 536-548 (2010).
  40. Riabinina, O., Potter, C. J. The Q-System: A Versatile Expression System for Drosophila. Methods Mol Biol. 1478, 53-78 (2016).
  41. Costanzo, M., et al. Transfer of polyglutamine aggregates in neuronal cells occurs in tunneling nanotubes. J Cell Sci. 126 (16), 3678-3685 (2013).
  42. Freeman, M. R., Delrow, J., Kim, J., Johnson, E., Doe, C. Q. Unwrapping glial biology: Gcm target genes regulating glial development, diversification, and function. Neuron. 38 (4), 567-580 (2003).
  43. MacDonald, J. M., et al. The Drosophila cell corpse engulfment receptor Draper mediates glial clearance of severed axons. Neuron. 50 (6), 869-881 (2006).
  44. Wu, J. S., Luo, L. A protocol for dissecting Drosophila melanogaster brains for live imaging or immunostaining. Nat Protoc. 1 (4), 2110-2115 (2006).
  45. Tito, A. J., Cheema, S., Jiang, M., Zhang, S. A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains. J Vis Exp. (118), (2016).
  46. Roszik, J., Szöllosi, J., Vereb, G. AccPbFRET: an ImageJ plugin for semi-automatic, fully corrected analysis of acceptor photobleaching FRET images. BMC Bioinformatics. 9, 346 (2008).
  47. Spires-Jones, T. L., Attems, J., Thal, D. R. Interactions of pathological proteins in neurodegenerative diseases. Acta Neuropathol. 134 (2), 187-205 (2017).
check_url/it/56906?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Donnelly, K. M., Pearce, M. M. P. Monitoring Cell-to-cell Transmission of Prion-like Protein Aggregates in Drosophila Melanogaster. J. Vis. Exp. (133), e56906, doi:10.3791/56906 (2018).

View Video