Summary

Kirurgiske teknikker til kateter placering og 5/6 nephrectomistatus i Murine modeller af peritonealdialyse

Published: July 19, 2018
doi:

Summary

Denne artikel viser metoden for den kirurgiske placering i mus af en intraperitoneal kateter knyttet til en access-port, der er placeret på bagsiden af dyret. Desuden, det forklarer proceduren for en 5/6 nephrectomistatus til at ligne den uræmisk tilstand af PD patienter.

Abstract

Peritonealdialyse (PD) er en nyre substitutionsterapi konsekvent på administration og posterior inddrivelse af en hyperosmotic væske i bughulen at dræne vand og toksiske metabolitter, der funktionelt utilstrækkelig nyrer ikke er i stand til at fjerne. Desværre, denne procedure forringes bughinden. Vævsskader udløser fremkomsten af inflammation til at helbrede skaden. Hvis skaden vedvarer og betændelse bliver kronisk, kan det føre til fibrose, som er en fælles begivenhed i mange sygdomme. I PD føre kronisk inflammation og fibrose, sammen med andre specifikke processer relateret til disse dem, til ultrafiltrering kapacitet forringelse, som betyder den manglende og efterfølgende ophør af teknikken. Arbejde med menneskelige prøver indeholder oplysninger om denne forringelse men præsenterer tekniske og etiske begrænsninger for at opnå biopsier. Dyremodeller er vigtigt at studere denne forringelse, da de overvinde disse mangler.

En kronisk mus infusion model blev udviklet i 2008, som nyder godt af den brede vifte af genmodificerede mus, åbner mulighed for at undersøge de involverede mekanismer. Denne model har en brugerdefineret enhed designet til mus, bestående af et kateter, der er knyttet til en access-port, der er placeret subkutant på bagsiden af dyret. Denne fremgangsmåde undgår kontinuerlig punktering af bughinden under langsigtet eksperimenter, reduktion af infektioner og betændelse på grund af injektioner. Takket være denne model, er peritoneal skader induceret af kronisk PD væske eksponering blevet karakteriseret og moduleret. Denne teknik giver mulighed for infusion af store mængder af væsker og kan anvendes til undersøgelse af andre sygdomme, hvor podning af stoffer eller andre stoffer over længere tid er nødvendigt.

Denne artikel viser metoden til kirurgisk placering af kateteret i mus. Desuden, det forklarer proceduren for en 5/6 nephrectomistatus at efterligne tilstanden af nyreinsufficiens forekommer i PD patienter.

Introduction

Nyrefunktion og nyresygdom

Nyrerne er væsentlige organer involveret i homøostase, blod filtrering og hormonproduktion. Der er forskellige betingelser, der fører til nyresvigt og den efterfølgende udbrud af Uræmi, som er blevet defineret som gruppe af systemiske symptomer på grund af ophobning af affaldsstoffer i blodet bevaret på grund af nyre funktion lidelser1. Desuden, da homeostatiske evne påvirkes også, når der er en nyresvigt, hypertension skyldes volumen overbelastning kan forekomme, hvilket er også farligt, da det kan føre til hjertesvigt1. Når den funktionelle kapacitet af nyrerne er mindre end 10% – 15%, patienten skal gennemgå en af de følgende terapeutiske muligheder: hæmodialyse, peritonealdialyse (PD) eller renal transplantation.

PD er en interessant mulighed, der gør det muligt for patienter at fortsætte behandling fra komfort i deres hjem eller næsten hvor som helst, så man undgår behovet for hyppige hospital besøg og ophold. PD teknik eliminerer mindre giftige molekyler og overskydende vand genereret af kroppen2 gennem instillation af en osmotisk væske (peritonealdialyse væske, PDF) ind i bughulen. Denne instillation frembringer den osmotiske gradient nødvendige for udveksling af opløste stoffer og vand mellem peritoneal kapillær og PDF, en proces kendt som ultrafiltrering (UF).

Peritoneal skade induceret af peritonealdialyse

Bughulen er dækket af en membran (PM), der består af en éncellelag af mesothelial celler hvilende på en matrix, som også huser få blodkar, fibroblaster, makrofager og andre cellepopulationer. Desværre, den peritoneale membran altid lider nogle ændringer under PD behandling, såsom apoptose og tab af mesothelial celler, mesenkymale overgang af mesothelial (MMT) og endotelceller (slutningen-MT) celler, rekruttering af inflammatoriske celler og fibrocytes, vaskulære ændringer, angiogenese, lymphangiogenesis og/eller fibrose3,4,5,6,7,8,9. Disse ændringer er ansvarlig for udviklingen af en UF kapacitet fiasko10, som er til hinder for en fortsættelse af den behandling, der kræver, at patienten skal modtage en alternativ behandling for at overleve (hæmodialyse eller renal transplantation) . For disse patienter, er det derfor vigtigt at forsinke eller kontrollere udviklingen af disse peritoneal ændringer.

Det er blevet spekuleret, at Uræmi alene kan forårsage betændelse11, men den vigtigste lokale faktor er PDF-bioincompatibility. De fleste PDF’er bruge glukose som den osmotiske agent, der forårsager betændelse. PDF opbevaring gange og sterilisation, glucose lider en proces med nedbrydning og nye produkter fra denne reaktion vises, generere mere betændelse, MMT og apoptose12,13. Derudover er der også mulighed for mekaniske skader på grund af metoden instillation. Alle disse faktorer, fungerer kontinuerligt, kan generere en vedvarende og tilbagevendende inflammatorisk tilstand, fører til kronisk betændelse, som drev membran forringelse og endegyldigt, UF fiasko. Hvordan denne skade kunne reduceres eller undgås er stadig et spørgsmål om undersøgelsen.

Analysere udviklingen af læsioner: fra menneskelige prøver at dyremodeller

Arbejde med menneskelige biopsier er en begrænsende faktor på grund af vanskeligheden ved at få vævsprøver. Disse prøver kan kun fås fra operationer udføres på grund af kateter funktionsfejl eller transplantation, normalt efter års PD behandling. Denne tilgang er nyttigt til analyse af patologiske forandringer påført en peritoneale membran udsat for PDF, men er ikke tilstrækkeligt at studere udviklingen af processen. En anden mulighed er at analysere celler drænet fra dialyse spildevand, men dette stadig lykkes ikke at give en komplet scenario. Sammenlægning begge teknikker er kun muligt med dyremodeller. Peritoneal strukturen er den samme blandt pattedyr, og derfor er der modeller med forskellige dyrearter. Der er et par undersøgelser baseret på får (Rodela et al. 14 og Barrell et al. 15) og kanin16,17 modeller; mindre dyr er dog at foretrække, da de er nemmere at house og vedligeholde, og er også mere økonomisk. Brugen af rotter18,19,20,21,22,23,24 tilbyder en kortere behandling tid til at observere morfo-funktionelle ændringer. Det har repræsenteret en meget nyttig model til at udforske forskellige emner som effekten af anti-fibrotisk narkotika som for eksempel BMP-7 (knogle morphogenic protein-7)25 og RAS (renin-angiotensin systemet) rettet mod26,27 , 28.

Dog, modellens murine fremstod som en ideel model med mange fordele frem for andre. Den mest interessante fordel er muligheden af at anvende genetisk modificerede mus for at studere molekylære og cellulære grundlag for peritoneal skader. I virkeligheden, er mus ofte ansat til analyse af talrige sygdomme, som der er mange forskellige stammer med forskellige kendte genetiske baggrunde. Andre fordele omfatter det reducerede pladsbehov for boliger, reducerede omkostninger for eksperimenter (på grund af dyrenes mindre størrelse), nem håndtering, tilgængeligheden af reagenser og den stigende mængde af tilgængelige oplysninger om de forskellige stammer af mus da de har været mest almindeligt anvendte dyr i forskning.

En mus-baseret model beskæftiger en indopereret enhed har været den mest for nylig etablerede model for PD29,30, og har vist sig at efterligne peritoneal forringelse påført PD patienter på grund af eksponering på PDF-filer. Denne model har samarbejdet for at forstå de patologiske processer impliceret31,32,33. Desuden, det har været brugt til at validere forskellige mulige behandlinger for mildne denne forringelse ved hjælp af immunmodulatorer og anti-inflammatoriske lægemidler og andre anti-fibrotisk og anti-angiogene agenser, såsom COX-2 (cyclooxygenase-2) hæmmere 34, PPAR-γ (Peroxisom proliferator-aktiveret receptor-γ) agonister35, Tamoxifen36, Paricalcitol (en vitamin D receptor aktivator der modulerer en immunreaktion)37, Rapamycin38 og Nebivolol 39.

Udvikle musemodel med en indopereret kateter

Målet med denne model er at ligne, så meget som muligt, teknikken bruges i menneskelige PD patienter, gør det muligt for at udføre udvidede behandlinger af PD i små dyr. Hidtil har er tre teknikker for instillation af dialyse væske ind i bughinden blevet testet i mus. Den første en blind punktere af forreste bugvæggen, er kontroversielle på grund af flere risici, som det kan pådrage sig, såsom peritoneal skader, blødning, og som er blindt udføres, visceral punktering. Den anden teknik er det såkaldte “åbne permanent system”, hvor enheden for intravenøs væske er placeret uden for kroppen. Denne fremgangsmåde er mest ligner, udføres i mennesker. Men det tillader ikke udvikling af langsigtet eksperimenter, da det kan øge risikoen for infektion, og generelt kræver brugen af anæstesi til instill PDF, som kan interferere med resultaterne. Den tredje teknik er “lukket system”. Med denne tilgang ligger hele enheden bruges til væske instillation inde i dyrets krop. Væske sprøjtes med en nål gennem et adgangsport, som er placeret subkutant. Denne fremgangsmåde reducerer risikoen for peritoneal infektion og blødning samt behovet for anæstesi.

For at undersøge effekten af Uræmi i PD, en nylig murine model har også været blev oprettet40 baseret på modellens PDF infusion med kateter. Denne model bringer i en ny teknik til at udføre en nephrectomistatus i mus, dermed reducere nyrefunktionen. I denne artikel, er blevet udviklet en ændring af den protokol, der er ansat af Ferrantelli et al. i 201540 . Denne nye protokol giver kateter implantation mens nephrectomistatus, reducerer længden af sår påført under operationen og letter adgangen til nyrerne.

Protocol

Alle metoder beskrevet her er blevet godkendt af institutionelle Animal Care og brug Udvalget af Molekylærbiologi Center Severo Ochoa (Madrid, Spanien). Bemærk: C57BL/6J hunmus alderen 12 til 14 uger og vejer ca 20 g ved starten af undersøgelsen blev brugt. Alle dyr har været opstaldet under standardbetingelser og fik mad og vand ad libitum. Sundhedsmæssige betingelser var kontrolleres dagligt. Det materiale, der kræves, såsom handsker, drapere, kateter, sutur og nåle, bør v…

Representative Results

Figur 1 viser alle de materialer, der er forpligtet til at følge procedurerne i protokollen afsnit. I dette eksempel, mus indsendt eller ikke at nephrectomistatus (8 dyr pr. gruppe) (figur 2) blev udsat for under 40 dage (to injektioner per dag, venter på mindst 2 timer mellem begge) til en blanding af to forskellige PDF-filer, almindeligt anvendt i den kliniske praksis: Extraneal (icodextrin-baseret PDF) og Dianeal (glucose-ba…

Discussion

Den første offentliggjorte data analysere PD ændringer ved hjælp af en “lukke system” teknik blev udført i 200929 . Denne tætte system betyder, at hele enheden er placeret inde i kroppen og væske sprøjtes med en nål gennem en adgangsport. De vigtigste tekniske problem i langsigtede dyremodeller væske infusion via et kateter er forekomsten af obstruktion. Mulige indstillinger er at udføre omentectomy eller tilføje heparin til PDF-filer til at reducere peritoneal sammenvoksninger. Ikke de…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfattere takke E. Ferrantelli og G. Liappas for deres støtte, indstille protokollen 5/6 nephrectomistatus R. Sánchez-Díaz og P. Martín for bistand med ureic nitrogen vurderinger, og E. Hevia og F. Núñez for bistand med mus pleje. Dette arbejde blev støttet af tilskud SAF2016-80648R fra “Ministerio de Economía y Competitividad” / Fondo Europeo de Desarrollo Regional (MINECO/FEDER) til Manuel López-Cabrera og PI 15/00598 fra Fondo de Investigaciones Sanitarias (FIS)-FEDER midler til Abelardo Aguilera.

Materials

Minute Mouse Port 4French with retention beads and cross holes Access technologies MMP-4S-061108A
Posi-Grip Huber point needles 25 ga. X 1/2´´  Access technologies PG25-500
High Temperature Cautery Kit Bovie 18010-00
Forane abbVie 880393.4 HO
non absorbable suture 6/0 Laboratorio Agaró 6121
Scissors  Fine Science Tools 14079-10
forceps Fine Science Tools 11002-12
clamp Fine Science Tools 13002-10
Buprenorphine 0,3 mg/ml pharmaceutical product
cotton swabs pharmaceutical product
Dalsy (Ibuprofen) 20mg/mL oral suspension AbbVie S.R.L.  pharmaceutical product

Riferimenti

  1. Meyer, T. W., Hostetter, T. H. Uremia. New England Journal of Medicine. 357 (13), 1316-1325 (2007).
  2. Pyper, R. A. Peritoneal Dialysis. Ulster Medical Journal. 17 (2), 179-187 (1948).
  3. Chaimovitz, C. Peritoneal dialysis. Kidney International. 45 (4), 1226-1240 (1994).
  4. Aguilera, A., Yanez-Mo, M., Selgas, R., Sanchez-Madrid, F., Lopez-Cabrera, M. Epithelial to mesenchymal transition as a triggering factor of peritoneal membrane fibrosis and angiogenesis in peritoneal dialysis patients. Current Opinion in Investigational Drugs. 6 (3), 262-268 (2005).
  5. González-Mateo, G. T., et al. Pharmacological modulation of peritoneal injury induced by dialysis fluids: is it an option. Nephrology Dialysis Transplantation. , (2011).
  6. Mateijsen, M. A., et al. Vascular and interstitial changes in the peritoneum of CAPD patients with peritoneal sclerosis. Peritoneal Dialysis International. 19 (6), 517-525 (1999).
  7. Williams, J. D., et al. Morphologic changes in the peritoneal membrane of patients with renal disease. Journal of the American Society of Nephrology. 13 (2), 470-479 (2002).
  8. Dobbie, J. W. Pathogenesis of peritoneal fibrosing syndromes (sclerosing peritonitis) in peritoneal dialysis. Peritoneal Dialysis International. 12 (1), 14-27 (1992).
  9. Loureiro, J., et al. Blocking TGF-beta1 protects the peritoneal membrane from dialysate-induced damage. Journal of the American Society of Nephrology. 22 (9), 1682-1695 (2011).
  10. Aroeira, L., et al. Epithelial to mesenchymal transition and peritoneal membrane failure in peritoneal dialysis patients: pathologic significance and potential therapeutic interventions. Journal of the American Society of Nephrology. 18 (7), 2004-2013 (2007).
  11. Zhang, J., et al. Regulatory T cells/T-helper cell 17 functional imbalance in uraemic patients on maintenance haemodialysis: A pivotal link between microinflammation and adverse cardiovascular events. Nephrology. 15 (1), 33-41 (2010).
  12. Welten, A. G., et al. Single exposure of mesothelial cells to glucose degradation products (GDPs) yields early advanced glycation end-products (AGEs) and a proinflammatory response. Peritoneal Dialysis International. 23 (3), 213-221 (2003).
  13. De Vriese, A. S., Tilton, R. G., Mortier, S., Lameire, N. H. Myofibroblast transdifferentiation of mesothelial cells is mediated by RAGE and contributes to peritoneal fibrosis in uraemia. Nephrology Dialysis Transplantation. 21 (9), 2549-2555 (2006).
  14. Rodela, H., Yuan, Z., Hay, J., Oreopoulos, D., Johnston, M. Reduced lymphatic drainage of dialysate from the peritoneal cavity during acute peritonitis in sheep. Peritoneal Dialysis International. 16 (2), 163-171 (1996).
  15. Barrell, G. K., McFarlane, R. G., Slow, S., Vasudevamurthy, M. K., McGregor, D. O. CAPD in sheep following bilateral nephrectomy. Peritoneal Dialysis International. 26 (5), (2006).
  16. Schambye, H. T., et al. Bicarbonate- versus lactate-based CAPD fluids: a biocompatibility study in rabbits. Peritoneal Dialysis International. 12 (3), 281-286 (1992).
  17. Garosi, G., Gaggiotti, E., Monaci, G., Brardi, S., Di Paolo, N. Biocompatibility of a peritoneal dialysis solution with amino acids: histological evaluation in the rabbit. Peritoneal Dialysis International. 18 (6), 610-619 (1998).
  18. Elema, J. D., Hardonk, M. J., Koudstaal, J., Arends, A. Acute enzyme histochemical changes in the zona glomerulosa of the rat adrenal cortex. I. The effect of peritoneal dialysis with a glucose 5 percent solution. Acta endocrinologica (Oslo). 59 (3), 508-518 (1968).
  19. Liard, J. Influence of sodium withdrawal by a diuretic agent or peritoneal dialysis on arterial pressure in one-kidney Goldblatt hypertension in the rat. Pflügers Archives. 344, 109-118 (1973).
  20. Beelen, R. H., Hekking, L. H., Zareie, M., vanden Born, J. Rat models in peritoneal dilysis. Nephrology Dialysis Transplantation. 16 (3), 672-674 (2001).
  21. Sun, Y., et al. Treatment of established peritoneal fibrosis by gene transfer of Smad7 in a rat model of PD. American Journal of Nephrology. 30 (1), 84-94 (2009).
  22. Schilte, M. N., et al. Peritoneal dialysis fluid bioincompatibility and new vessel formation promote leukocyte-endothelium interactions in a chronic rat model for peritoneal dialysis. Microcirculation. 17 (4), 271-280 (2010).
  23. Peng, Y. M., et al. A new non-uremic rat model of long-term peritoneal dialysis. Physiological Research. 60 (1), 157-164 (2011).
  24. Stavenuiter, A. W., Farhat, K., Schilte, M. N., Ter Wee, P. M., Beelen, R. H. Bioincompatible impact of different peritoneal dialysis fluid components and therapeutic interventions as tested in a rat peritoneal dialysis model. International Journal of Nephrology. 2011, 742196 (2011).
  25. Loureiro, J., et al. BMP-7 blocks mesenchymal conversion of mesothelial cells and prevents peritoneal damage induced by dialysis fluid exposure. Nephrology Dialysis Transplantation. 25 (4), 1098-1108 (2010).
  26. Duman, S., et al. Does enalapril prevent peritoneal fibrosis induced by hypertonic (3.86%) peritoneal dialysis solution?. Peritoneal Dialysis International. 21 (2), 219-224 (2001).
  27. Duman, S., et al. Intraperitoneal enalapril ameliorates morphologic changes induced by hypertonic peritoneal dialysis solutions in rat peritoneum. Advances in Peritoneal Dialysis. 20, 31-36 (2004).
  28. Duman, S., Sen, S., Duman, C., Oreopoulos, D. G. Effect of valsartan versus lisinopril on peritoneal sclerosis in rats. International Journal of Artificial Organs. 28 (2), 156-163 (2005).
  29. González-Mateo, G. T., et al. Chronic exposure of mouse peritoneum to peritoneal dialysis fluid: structural and functional alterations of the peritoneal membrane. Peritoneal Dialysis International. 29 (2), 227-230 (2009).
  30. González-Mateo, G. T., et al. Modelos animales de diálisis peritoneal: relevancia, dificultades y futuro. Nefrología. Supl. 6, 17-22 (2008).
  31. Rodrigues-Diez, R., et al. IL-17A is a novel player in dialysis-induced peritoneal damage. Kidney International. 86 (2), 303-315 (2014).
  32. Gonzalez-Mateo, G. T., et al. Pharmacological modulation of peritoneal injury induced by dialysis fluids: is it an option. Nephrology Dialysis Transplantation. 27 (2), 478-481 (2012).
  33. Liappas, G., et al. Immune-Regulatory Molecule CD69 Controls Peritoneal Fibrosis. Journal of the American Society of Nephrology. 27 (12), 3561-3576 (2016).
  34. Aroeira, L. S., et al. Cyclooxygenase-2 Mediates Dialysate-Induced Alterations of the Peritoneal Membrane. Journal of the American Society of Nephrology. 20 (3), 582-592 (2009).
  35. Sandoval, P., et al. PPAR-[gamma] agonist rosiglitazone protects peritoneal membrane from dialysis fluid-induced damage. Laboratory Investigation. 90 (10), 1517-1532 (2010).
  36. Loureiro, J., et al. Tamoxifen ameliorates peritoneal membrane damage by blocking mesothelial to mesenchymal transition in peritoneal dialysis. PLoS One. 8 (4), e61165 (2013).
  37. Gonzalez-Mateo, G. T., et al. Paricalcitol reduces peritoneal fibrosis in mice through the activation of regulatory T cells and reduction in IL-17 production. PLoS One. 9 (10), e108477 (2014).
  38. Gonzalez-Mateo, G. T., et al. Rapamycin Protects from Type-I Peritoneal Membrane Failure Inhibiting the Angiogenesis, Lymphangiogenesis, and Endo-MT. BioMed Research International. 2015, 989560 (2015).
  39. Liappas, G., et al. Nebivolol, a beta1-adrenergic blocker, protects from peritoneal membrane damage induced during peritoneal dialysis. Oncotarget. 7 (21), 30133-30146 (2016).
  40. Ferrantelli, E., et al. A Novel Mouse Model of Peritoneal Dialysis: Combination of Uraemia and Long-Term Exposure to PD Fluid. Biomed Research International. 2015, 106902 (2015).
  41. Altmann, C., et al. Early peritoneal dialysis reduces lung inflammation in mice with ischemic acute kidney injury. Kidney International. 92 (2), 365-376 (2017).
  42. Peters, T., et al. Mouse model of foreign body reaction that alters the submesothelium and transperitoneal transport. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 300 (1), F283-F289 (2011).
  43. Flessner, M. F., et al. Peritoneal changes after exposure to sterile solutions by catheter. Journal of the American Society of Nephrology. 18 (8), 2294-2302 (2007).
check_url/it/56746?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
González-Mateo, G. T., Pascual-Antón, L., Sandoval, P., Aguilera Peralta, A., López-Cabrera, M. Surgical Techniques for Catheter Placement and 5/6 Nephrectomy in Murine Models of Peritoneal Dialysis. J. Vis. Exp. (137), e56746, doi:10.3791/56746 (2018).

View Video