Summary

Kirurgiske teknikker for kateter plassering og 5/6 Nephrectomy i Murine modeller av Peritoneal dialyse

Published: July 19, 2018
doi:

Summary

Denne artikkelen viser metoden for kirurgiske plassering i mus i et intraperitoneal kateter knyttet til en tilgang som er plassert på baksiden av dyret. Dessuten, det forklarer fremgangsmåten for en 5/6 nephrectomy å ligne uremisk delstaten PD pasienter.

Abstract

Peritoneal dialyse (PD) er en nyre erstatning terapi konsekvent på administrasjon og bakre utvinning av en hyperosmotic væske i bukhulen å tømme vann og giftig metabolitter som funksjonelt utilstrekkelig nyrene ikke kunne eliminere. Dessverre forverres denne prosedyren peritoneum. Vevsskade utløser utbruddet av betennelse å helbrede skaden. Hvis skaden vedvarer og betennelse blir kronisk, kan det føre til fibrosis, som er en vanlig foreteelse i mange sykdommer. I PD, kronisk betennelse og fibrosis, sammen med andre spesifikke prosesser knyttet til disse seg, føre til ultrafiltrasjon kapasitet forverring, som betyr feil og påfølgende opphør av teknikken. Arbeide med prøver fra mennesker gir informasjon om dette forverring men presenterer tekniske og etiske begrensninger for å få biopsier. Dyremodeller er avgjørende å studere dette forverring siden de overvinne disse svakhetene.

En kronisk mus infusjon modell ble utviklet i 2008, som drar nytte av det brede utvalget av genmodifiserte mus, åpne opp muligheten for å studere mekanismer involvert. Denne modellen har en tilpasset enhet beregnet for mus, består av et kateter knyttet til en tilgang som er plassert subcutaneously på baksiden av dyret. Denne prosedyren unngår kontinuerlig punktering av peritoneum under langsiktige eksperimenter, redusere infeksjon og betennelse på grunn av injeksjoner. Takket være denne modellen, er peritoneal skade forårsaket av kronisk PD væske eksponering preget og modulert. Denne teknikken tillater tilførsel av store mengder væske og kan brukes for studier av andre sykdommer som vaksinering av narkotika eller andre stoffer over lengre tid er nødvendig.

Denne artikkelen viser metoden for kirurgiske plassering av kateter i mus. Dessuten, det forklarer fremgangsmåten for en 5/6 nephrectomy å etterligne delstaten nedsatt nyrefunksjon i PD pasienter.

Introduction

Nyrefunksjon og nyresykdom

Nyrene er viktige organer som er involvert i homeostase, blod filtrering og hormonproduksjon. Det er ulike forhold som fører til nyresvikt og etterfølgende starten på Uremi, som har blitt definert som gruppen av systemiske symptomer på grunn av opphopning av avfallsstoffer blodet beholdt på grunn av nyre funksjon lidelser1. Videre siden homøostatisk evne påvirkes også når det er en nyre-svikt, oppstå høyt blodtrykk på grunn av volumet overbelastning, hvilke er likeledes farlig som det kan føre til hjertesvikt1. Når den funksjonelle kapasiteten til nyrene er mindre enn 10% – 15%, pasienten må gjennomgå en av følgende behandlingsalternativer: hemodialyse, peritoneal dialyse (PD) eller nyre transplantasjon.

PD er et interessant alternativ som tillater pasienter å fortsette behandling fra komforten av deres hjem eller praktisk talt hvor som helst, dermed unngår behovet for hyppige sykehus besøk og opphold. PD teknikken eliminerer små giftige molekyler og overflødig vann generert av kroppen2 gjennom instillasjon en osmotisk væske (peritoneal dialyse væske, PDF) i bukhulen. Denne instillasjon genererer osmotisk graderingen nødvendig for utveksling av solutes og vann mellom peritoneal kapillære og PDF, en prosess kjent som ultrafiltrasjon (UF).

Peritoneal skade forårsaket av Peritoneal dialyse

Bukhulen er dekket av en membran (PM) består av en monolayer av mesothelial celler hviler på en matrise, som også huser noen blodkar, fibroblaster, makrofager og andre celle populasjoner. Dessverre, peritoneal membran alltid lider noen endringer under PD behandling som apoptose og tap av mesothelial cellene, mesenchymal overgang mesothelial (MMT) og endothelial (slutten-MT) celler, rekruttering av inflammatoriske celler og fibrocytes, vaskulære endringer, angiogenese, lymphangiogenesis og/eller fibrose3,4,5,6,7,8,9. Disse endringene er ansvarlig for utviklingen av en UF kapasitet feil10, som utelukker videreføring av terapi, som krever at pasienten må få et alternativ behandling for å overleve (hemodialyse eller nyre transplantasjon) . Derfor for disse pasientene er det viktig å forsinke eller styrer utviklingen av disse peritoneal endringer.

Det har vært spekulert at Uremi alene kan forårsake betennelse11, men den viktigste lokale faktoren er PDF bioincompatibility. De fleste PDF-filer bruker glukose som osmotisk agent, som forårsaker betennelse. PDF lagringstider og sterilisering, glukose lider en prosess med fornedrelse, og nye produkter fra denne reaksjonen vises, genererer mer betennelse, MMT og apoptose12,13. Videre er det også muligheten for mekanisk skade metoden instillasjon. Alle disse faktorene, handle kontinuerlig, kan generere en vedvarende og tilbakevendende inflammatorisk stat, fører til kroniske betennelser, som driver membran forringelse og sammenfattet UF feil. Hvordan denne skaden kan bli redusert eller unngått er fortsatt et spørsmål om studien.

Analysere utviklingen av lesjoner: fra menneskelige prøver å dyremodeller

Arbeide med menneskelige biopsier er en begrensende faktor på grunn av vanskelighetene med å skaffe vevsprøver. Disse prøvene kan bare hentes fra operasjoner utført på grunn kateter funksjonsfeil eller transplantasjon, vanligvis etter år med PD behandling. Denne tilnærmingen er nyttig for analyse av patologiske forandringer led av en peritoneal membran utsatt til PDF, men er ikke tilstrekkelig å studere utviklingen av prosessen. En annen mulighet er å analysere celler drenert fra dialyse avløpsvann, men dette heller ikke å gi et komplett scenario. Fletting begge teknikkene er bare mulig med dyr modeller. Peritoneal strukturen ligner blant pattedyr, og derfor er det modeller med ulike dyrearter. Det finnes få studier basert på sau (Rodela et al. 14 og Barrell et al. 15) og kanin16,17 modeller; men er mindre dyr å foretrekke som de er lettere å huset og vedlikeholde, og er også mer økonomisk. Bruk av rotter18,19,20,21,22,23,24 tilbyr kortere behandling tid nødvendig å observere Morpho funksjonelle endringer. Det har representert en svært nyttig modell å utforske ulike problemstillinger som effekt av anti-fibrotiske stoffer som for eksempel BMP-7 (Ben morphogenic protein-7)25 og RAS (renin-angiotensin-systemet) målretting26,27 , 28.

Imidlertid murine modellen har dukket opp som en ideell modell med mange fordeler over andre. Mest interessante fordelen er bruke genetisk endret mus for å studere molekylære og mobilnettet grunnlaget for peritoneal skade. Faktisk er mus ofte ansatt for analyse av mange sykdommer, som det er mange forskjellige stammer med forskjellige kjent genetisk bakgrunn. Andre fordeler inkluderer redusert plass kreves for boliger, reduserte kostnadene for eksperimenter (på grunn av dyr mindre størrelse), enkel håndtering, tilgjengeligheten av reagenser og den økende mengden av tilgjengelig informasjon om de ulike stammene av mus siden de er mest brukte dyr i forskning.

En mus-basert modell ansette en implantert enhet har vært mest nylig etablerte modell for PD29,30, og har vist seg å etterligne peritoneal forverring led av PD pasienter på grunn av eksponering for PDF-filer. Denne modellen har samarbeidet for å forstå patologisk prosessene involvert31,32,33. Dessuten, det har blitt brukt til å validere ulike mulige behandlinger for ameliorating dette forverring bruke immun modulatorer og anti-inflammatorisk narkotika og andre anti-fibrotiske og anti-angiogenic agenter, som COX-2 (cyclooxygenase-2) hemmere 34, PPAR-γ (peroxisome proliferator-aktivert reseptor-γ) agonister35, Tamoxifen36, Paricalcitol (en vitamin D reseptor aktivator som modulerer immunreaksjon)37, Rapamycin38 og Nebivolol 39.

Utvikle musemodell med en implantert kateter

Målet med denne modellen er å ligne, så mye som mulig, teknikken brukes i menneskelige PD pasienter, tillater for å utføre utvidet behandlinger av PD i liten dyrene. Hittil har tre teknikker for instillasjon dialyse væske i peritoneum testet i mus. Den første blind punktering av foran bukveggen, er kontroversiell på grunn av flere risiko som det kan medføre, for eksempel peritoneal skade, blødning, og som er blindt fremført, visceral punktering. Den andre metoden er såkalte “åpne permanent systemet”, som enheten for sprøytebruk væsken er plassert utenfor kroppen. Denne prosedyren er mest lik som i mennesker. Men det tillater ikke utviklingen av langsiktige eksperimenter, som det kan øke sjansene for infeksjon, og vanligvis krever bruk av anestesi å innpode PDF, som kan påvirke resultatene. Tredje teknikken er “lukket system”. Med denne tilnærmingen ligger hele enheten brukes for væske instillasjon dyrets kroppen. Væske injiseres med en nål gjennom en tilgangsport, som er plassert subcutaneously. Denne fremgangsmåten reduserer risikoen for peritoneal infeksjon og blødning samt behovet for anestesi.

For å studere effekten av Uremi i PD, en siste murine modell har også vært opprettet40 basert på PDF infusjon modell med kateter. Denne modellen gir i en teknikken å utføre en nephrectomy i mus, dermed redusere nyre funksjon. I denne artikkel, er en endring av ansatt av Ferrantelli et al. i 201540 -protokollen utviklet. Denne nye protokollen tillater kateter implantasjon mens nephrectomy, reduserer lengden på på sår påført under operasjonen og muliggjør tilgang til nyrene.

Protocol

Alle metodene som er beskrevet her er godkjent av institusjonelle Animal Care og bruk komité molekylærbiologi Center Severo Ochoa (Madrid, Spania). Merk: C57BL/6J kvinnelige mus i alderen 12-14 uker og veier ca 20 g ved begynnelsen av studien ble brukt. Alle dyrene ble plassert under standard betingelser og fikk mat og vann ad libitum. Helsetilstand ble sjekket daglig. Materialet nødvendig, som hansker, drapere, kateter, Sutur og nåler, skal sterilt. 1. …

Representative Results

Figur 1 viser alle materialer må følge fremgangsmåtene i protokollen delen. For eksempel mus innsendt eller ikke nephrectomy (8 dyr per gruppe) (figur 2) ble eksponert under 40 dager (to injeksjoner per dag, minst 2 timer mellom begge) til en blanding av to ulike PDF, brukt i klinisk praksis: Extraneal (icodextrin-basert PDF) og Dianeal (glukose-basert PDF). En gruppe med saltvann ble opprettet som kontroll (n = 6). <p cla…

Discussion

Første publiserte data analysere PD endringer ved hjelp av en “Lukk systemet” teknikk ble utført i 200929 . Lukk systemet betyr at hele enheten ligger inne i kroppen og væske injiseres med en nål gjennom en tilgangsport. Viktigste tekniske problemet i langsiktig dyremodeller væske infusjonsperiode gjennom et kateter, er forekomsten av hindringer. Mulige alternativer er å utføre omentectomy eller legge til heparin PDF-filer redusere peritoneal adhesjon. Likevel, omentum fungerer som et forsv…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker E. Ferrantelli og G. Liappas for deres støtte sette av 5/6 nephrectomy-protokollen, R. Sánchez-Díaz og P. Martín for hjelp med ureic nitrogen vurderinger, og E. Hevia og F. Núñez for hjelp med mus forsiktighet. Dette arbeidet ble støttet av tilskudd SAF2016-80648R fra “Ministerio de Economía y Competitividad” / Fondo Europeo de Desarrollo Regional (MINECO/FEDER) Manuel López-Cabrera og PI 15/00598 fra Fondo de Investigaciones Sanitarias (FIS)-FEDER midler, til Abelardo Aguilera.

Materials

Minute Mouse Port 4French with retention beads and cross holes Access technologies MMP-4S-061108A
Posi-Grip Huber point needles 25 ga. X 1/2´´  Access technologies PG25-500
High Temperature Cautery Kit Bovie 18010-00
Forane abbVie 880393.4 HO
non absorbable suture 6/0 Laboratorio Agaró 6121
Scissors  Fine Science Tools 14079-10
forceps Fine Science Tools 11002-12
clamp Fine Science Tools 13002-10
Buprenorphine 0,3 mg/ml pharmaceutical product
cotton swabs pharmaceutical product
Dalsy (Ibuprofen) 20mg/mL oral suspension AbbVie S.R.L.  pharmaceutical product

Riferimenti

  1. Meyer, T. W., Hostetter, T. H. Uremia. New England Journal of Medicine. 357 (13), 1316-1325 (2007).
  2. Pyper, R. A. Peritoneal Dialysis. Ulster Medical Journal. 17 (2), 179-187 (1948).
  3. Chaimovitz, C. Peritoneal dialysis. Kidney International. 45 (4), 1226-1240 (1994).
  4. Aguilera, A., Yanez-Mo, M., Selgas, R., Sanchez-Madrid, F., Lopez-Cabrera, M. Epithelial to mesenchymal transition as a triggering factor of peritoneal membrane fibrosis and angiogenesis in peritoneal dialysis patients. Current Opinion in Investigational Drugs. 6 (3), 262-268 (2005).
  5. González-Mateo, G. T., et al. Pharmacological modulation of peritoneal injury induced by dialysis fluids: is it an option. Nephrology Dialysis Transplantation. , (2011).
  6. Mateijsen, M. A., et al. Vascular and interstitial changes in the peritoneum of CAPD patients with peritoneal sclerosis. Peritoneal Dialysis International. 19 (6), 517-525 (1999).
  7. Williams, J. D., et al. Morphologic changes in the peritoneal membrane of patients with renal disease. Journal of the American Society of Nephrology. 13 (2), 470-479 (2002).
  8. Dobbie, J. W. Pathogenesis of peritoneal fibrosing syndromes (sclerosing peritonitis) in peritoneal dialysis. Peritoneal Dialysis International. 12 (1), 14-27 (1992).
  9. Loureiro, J., et al. Blocking TGF-beta1 protects the peritoneal membrane from dialysate-induced damage. Journal of the American Society of Nephrology. 22 (9), 1682-1695 (2011).
  10. Aroeira, L., et al. Epithelial to mesenchymal transition and peritoneal membrane failure in peritoneal dialysis patients: pathologic significance and potential therapeutic interventions. Journal of the American Society of Nephrology. 18 (7), 2004-2013 (2007).
  11. Zhang, J., et al. Regulatory T cells/T-helper cell 17 functional imbalance in uraemic patients on maintenance haemodialysis: A pivotal link between microinflammation and adverse cardiovascular events. Nephrology. 15 (1), 33-41 (2010).
  12. Welten, A. G., et al. Single exposure of mesothelial cells to glucose degradation products (GDPs) yields early advanced glycation end-products (AGEs) and a proinflammatory response. Peritoneal Dialysis International. 23 (3), 213-221 (2003).
  13. De Vriese, A. S., Tilton, R. G., Mortier, S., Lameire, N. H. Myofibroblast transdifferentiation of mesothelial cells is mediated by RAGE and contributes to peritoneal fibrosis in uraemia. Nephrology Dialysis Transplantation. 21 (9), 2549-2555 (2006).
  14. Rodela, H., Yuan, Z., Hay, J., Oreopoulos, D., Johnston, M. Reduced lymphatic drainage of dialysate from the peritoneal cavity during acute peritonitis in sheep. Peritoneal Dialysis International. 16 (2), 163-171 (1996).
  15. Barrell, G. K., McFarlane, R. G., Slow, S., Vasudevamurthy, M. K., McGregor, D. O. CAPD in sheep following bilateral nephrectomy. Peritoneal Dialysis International. 26 (5), (2006).
  16. Schambye, H. T., et al. Bicarbonate- versus lactate-based CAPD fluids: a biocompatibility study in rabbits. Peritoneal Dialysis International. 12 (3), 281-286 (1992).
  17. Garosi, G., Gaggiotti, E., Monaci, G., Brardi, S., Di Paolo, N. Biocompatibility of a peritoneal dialysis solution with amino acids: histological evaluation in the rabbit. Peritoneal Dialysis International. 18 (6), 610-619 (1998).
  18. Elema, J. D., Hardonk, M. J., Koudstaal, J., Arends, A. Acute enzyme histochemical changes in the zona glomerulosa of the rat adrenal cortex. I. The effect of peritoneal dialysis with a glucose 5 percent solution. Acta endocrinologica (Oslo). 59 (3), 508-518 (1968).
  19. Liard, J. Influence of sodium withdrawal by a diuretic agent or peritoneal dialysis on arterial pressure in one-kidney Goldblatt hypertension in the rat. Pflügers Archives. 344, 109-118 (1973).
  20. Beelen, R. H., Hekking, L. H., Zareie, M., vanden Born, J. Rat models in peritoneal dilysis. Nephrology Dialysis Transplantation. 16 (3), 672-674 (2001).
  21. Sun, Y., et al. Treatment of established peritoneal fibrosis by gene transfer of Smad7 in a rat model of PD. American Journal of Nephrology. 30 (1), 84-94 (2009).
  22. Schilte, M. N., et al. Peritoneal dialysis fluid bioincompatibility and new vessel formation promote leukocyte-endothelium interactions in a chronic rat model for peritoneal dialysis. Microcirculation. 17 (4), 271-280 (2010).
  23. Peng, Y. M., et al. A new non-uremic rat model of long-term peritoneal dialysis. Physiological Research. 60 (1), 157-164 (2011).
  24. Stavenuiter, A. W., Farhat, K., Schilte, M. N., Ter Wee, P. M., Beelen, R. H. Bioincompatible impact of different peritoneal dialysis fluid components and therapeutic interventions as tested in a rat peritoneal dialysis model. International Journal of Nephrology. 2011, 742196 (2011).
  25. Loureiro, J., et al. BMP-7 blocks mesenchymal conversion of mesothelial cells and prevents peritoneal damage induced by dialysis fluid exposure. Nephrology Dialysis Transplantation. 25 (4), 1098-1108 (2010).
  26. Duman, S., et al. Does enalapril prevent peritoneal fibrosis induced by hypertonic (3.86%) peritoneal dialysis solution?. Peritoneal Dialysis International. 21 (2), 219-224 (2001).
  27. Duman, S., et al. Intraperitoneal enalapril ameliorates morphologic changes induced by hypertonic peritoneal dialysis solutions in rat peritoneum. Advances in Peritoneal Dialysis. 20, 31-36 (2004).
  28. Duman, S., Sen, S., Duman, C., Oreopoulos, D. G. Effect of valsartan versus lisinopril on peritoneal sclerosis in rats. International Journal of Artificial Organs. 28 (2), 156-163 (2005).
  29. González-Mateo, G. T., et al. Chronic exposure of mouse peritoneum to peritoneal dialysis fluid: structural and functional alterations of the peritoneal membrane. Peritoneal Dialysis International. 29 (2), 227-230 (2009).
  30. González-Mateo, G. T., et al. Modelos animales de diálisis peritoneal: relevancia, dificultades y futuro. Nefrología. Supl. 6, 17-22 (2008).
  31. Rodrigues-Diez, R., et al. IL-17A is a novel player in dialysis-induced peritoneal damage. Kidney International. 86 (2), 303-315 (2014).
  32. Gonzalez-Mateo, G. T., et al. Pharmacological modulation of peritoneal injury induced by dialysis fluids: is it an option. Nephrology Dialysis Transplantation. 27 (2), 478-481 (2012).
  33. Liappas, G., et al. Immune-Regulatory Molecule CD69 Controls Peritoneal Fibrosis. Journal of the American Society of Nephrology. 27 (12), 3561-3576 (2016).
  34. Aroeira, L. S., et al. Cyclooxygenase-2 Mediates Dialysate-Induced Alterations of the Peritoneal Membrane. Journal of the American Society of Nephrology. 20 (3), 582-592 (2009).
  35. Sandoval, P., et al. PPAR-[gamma] agonist rosiglitazone protects peritoneal membrane from dialysis fluid-induced damage. Laboratory Investigation. 90 (10), 1517-1532 (2010).
  36. Loureiro, J., et al. Tamoxifen ameliorates peritoneal membrane damage by blocking mesothelial to mesenchymal transition in peritoneal dialysis. PLoS One. 8 (4), e61165 (2013).
  37. Gonzalez-Mateo, G. T., et al. Paricalcitol reduces peritoneal fibrosis in mice through the activation of regulatory T cells and reduction in IL-17 production. PLoS One. 9 (10), e108477 (2014).
  38. Gonzalez-Mateo, G. T., et al. Rapamycin Protects from Type-I Peritoneal Membrane Failure Inhibiting the Angiogenesis, Lymphangiogenesis, and Endo-MT. BioMed Research International. 2015, 989560 (2015).
  39. Liappas, G., et al. Nebivolol, a beta1-adrenergic blocker, protects from peritoneal membrane damage induced during peritoneal dialysis. Oncotarget. 7 (21), 30133-30146 (2016).
  40. Ferrantelli, E., et al. A Novel Mouse Model of Peritoneal Dialysis: Combination of Uraemia and Long-Term Exposure to PD Fluid. Biomed Research International. 2015, 106902 (2015).
  41. Altmann, C., et al. Early peritoneal dialysis reduces lung inflammation in mice with ischemic acute kidney injury. Kidney International. 92 (2), 365-376 (2017).
  42. Peters, T., et al. Mouse model of foreign body reaction that alters the submesothelium and transperitoneal transport. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 300 (1), F283-F289 (2011).
  43. Flessner, M. F., et al. Peritoneal changes after exposure to sterile solutions by catheter. Journal of the American Society of Nephrology. 18 (8), 2294-2302 (2007).
check_url/it/56746?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
González-Mateo, G. T., Pascual-Antón, L., Sandoval, P., Aguilera Peralta, A., López-Cabrera, M. Surgical Techniques for Catheter Placement and 5/6 Nephrectomy in Murine Models of Peritoneal Dialysis. J. Vis. Exp. (137), e56746, doi:10.3791/56746 (2018).

View Video