Summary

Utilisation de Zinc synaptique histochimie pour révéler les différentes régions et les limbes dans le cerveau en développement et Adult

Published: October 29, 2017
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Summary

Nous décrivons une procédure histochimique qui révèle des caractéristique zinc laminaire et areal coloration modèles dans différentes régions du cerveau. Le patron de coloration zinc peut servir en conjonction avec d’autres marqueurs anatomiques à fiable distinguer des couches et des régions du cerveau en développement et les adulte.

Abstract

Caractérisation de l’Organisation anatomique et fonctionnelle du cerveau et le développement nécessite une identification exacte des circuits neurones distincts et des régions dans le cerveau adulte et immature. Nous décrivons ici une méthode de coloration histochimique zinc qui révèle des différences dans les profils de coloration entre les différentes couches et les régions du cerveau. D’autres ont utilisé cette procédure non seulement pour révéler la distribution des neurones contenant du zinc et des circuits dans le cerveau, mais aussi de délimiter avec succès des limites areal et laminaires dans le cerveau en développement et adult dans plusieurs espèces. Ici, nous illustrons cela souillant le procédé avec des images des pays en développement et de la cervelle de furet adulte. Nous révèlent un modèle zinc-coloration qui sert comme un marqueur anatomique des zones et des couches et peut être utilisés de manière fiable pour distinguer les aires corticales visuelles dans le cortex visuel en développement et les adult. Le principal objectif du présent protocole est de présenter une méthode histochimique qui permet l’identification précise des couches et des régions dans le cerveau en développement et adulte où les autres méthodes ne parviennent pas à le faire. Secondairement, en conjonction avec l’analyse densitométrique image, cette méthode permet d’évaluer la distribution de zinc synaptique pour révéler des changements possibles au cours du développement. Ce protocole décrit en détail les réactifs, des outils et démarches nécessaires pour colorer successivement les sections du cerveau gelé. Bien que ce protocole est décrit à l’aide de tissus cérébraux de furet, il peut être facilement adapté pour être utilisé dans les rongeurs, les chats ou les singes ainsi que dans d’autres régions du cerveau.

Introduction

Taches histologiques ont été utilisées traditionnellement pour aider à l’identification des aires corticales chez diverses espèces de révéler des différences dans les caractéristiques architectoniques. L’utilisation combinée des techniques histochimiques telles que pour la substance Nissl, réactivité de la cytochrome oxydase (CO) ou la myéline peut se révéler fructueuse qu’ils révèlent des limites areal semblables dans le cerveau adulte. Cependant, ces taches histochimiques ne révèlent pas toujours bien des limites claires entre les aires corticales et les couches dans le cerveau immature.

Dans le système nerveux central, le zinc a plusieurs fonctions essentielles qui incluent de stabiliser la structure de l’ADN, agissant comme un cofacteur de l’enzyme, participant à nombreuses fonctions de réglementation et agissant comme un neuromodulateur grâce à sa présence dans les vésicules synaptiques 1. zinc synaptique est unique car il peut être visualisé à l’aide des méthodes histologiques, tandis que le zinc protéinique ne peut pas être visualisé2. Cette fonctionnalité a été exploitée pour révéler le modèle zinc synaptique dans différentes régions corticales et histochimie synaptique de zinc a été utilisé dans un certain nombre d’études. Un sous-ensemble des neurones glutamatergiques dans le cortex cérébral contiennent du zinc dans les vésicules présynaptiques dans leur axone bornes3,4. Les études histochimiques ont révélé une distribution hétérogène de zinc synaptique dans le cortex cérébral5,6,7. Il semble y avoir une autre distribution surfacique et laminaire zinc histochimiquement réactif dans différentes régions du cortex (par exemple, visual contre cortex somatosensoriel), ou des couches (p. ex., les niveaux de zinc dans la supragranular et infragranular couches du cortex visuel primaire sont sensiblement plus élevés que dans thalamocortical couche d’entrée IV avec des niveaux relativement faibles de zinc synaptique)5,8,9. L’hétérogénéité en zinc synaptique coloration observées dans le cortex est particulièrement avantageuse, car elle facilite l’identification areal et laminaire.

Nous présentons ici une description détaillée d’une procédure histochimiques zinc synaptique, qui est une version modifiée de 1982 méthode10 de Danscher. Cette méthode utilise le sélénite injecté par voie intrapéritonéale (IP) dans les animaux comme agent chélateur. Le sélénite se rend au cerveau à réagir avec des piscines de zinc gratuit trouvé dans les vésicules d’un sous-ensemble des synapses glutamatergiques dans le cerveau. Cette réaction donne un précipité qui peut être amélioré par la suite en développement argent2,10,11.

Cette procédure révèle des tendances laminaires et surfaciques de zinc synaptique coloration ; analyse densitométrique peut servir à évaluer ces patrons qualitativement et quantitativement dans le cerveau adult et immature pour étudier les effets d’autres interventions, comme les manipulations sensorielles, environnementales, pharmacologiques ou génétiques. En outre, on peut vouloir aussi évaluer d’éventuels changements dans la distribution de zinc synaptique dans d’autres structures corticales ou sous-corticales dans d’autres systèmes de modèle. Les informations quantitatives fournies par analyse densitométrique dans cette méthode peuvent être avantageux pour le développement du cerveau suivant au fil du temps. Ce protocole prévoit un compagnon d’autres immuno – histochimiques marqueurs et pour révéler les limites laminaires et surfaciques.

Protocol

le protocole suivant suit les directives de santé animale institués par l’animalerie institutionnelle et utilisation Comité (IACUC) à The City College of New York, qui sont conformes à tous les état approprié et les lignes directrices fédérales. L’anesthésie est approprié pour les furets et devraient être modifiée en fonction des espèces étudiées. <str…

Representative Results

Les grandes étapes de ce protocole pour colorer les sections du cerveau pour le zinc synaptique sont présentés dans un organigramme de la Figure 1. Le protocole peut être divisé en trois phases : 1) Perfusion et prélèvement tissulaire, préparation du tissu 2) et coloration et histochimie Zinc 3). En bref, au cours de la première phase du protocole, l’animal est anesthésié et la dose appropriée de sélénite de sodium injection IP. Après une p?…

Discussion

La présente étude utilise une technique histochimique basée sur une version modifiée de la Danscher méthode (1982)10, auquel cas localisation synaptique de zinc peut-être être détectée et visualisée dans le cerveau. Cette méthode fonctionne essentiellement en injectant l’animal avec le sélénite de sodium chélateur de zinc (Na2SeO3) (15 mg/kg). Après l’injection, la sélénite se rend au cerveau et se lie au zinc gratuit qui est localisé dans les vésicules…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par subventions du National Center for Research Resources (2G12RR03060-26A1) ; L’Institut National sur la santé de minorité et les disparités de santé (8G12MD007603-27) des National Institutes of Health ; Professionnel du personnel Congrès-City University of New York (CUNY-CFP) ; et Faculty Research Grant (FRG II) Université américaine de Sharjah. Nous remercions Vidyasagar Sriramoju pour nous introduire à ces méthodes.

Materials

Euthasol (Euthanasia solution) Henry Schein 710101
Sodium selenite Sigma-Aldrich 214485
Ketamine (Ketaved) Henry Schein 48858 100 mg/ml injectables
Xylazine (Anased) Henry Schein 33198 100 mg/ml injectables
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich F8775 Dilute to 4%
Gum arabic Sigma-Aldrich G9752-500G
Citric acid Sigma-Aldrich C1909
Sodium citrate Sigma-Aldrich W302600
Hydroquinone Sigma-Aldrich H9003
Silver lactate Sigma-Aldrich 85210
Fish gelatine Sigma-Aldrich G7765
Cytochrome c Sigma-Aldrich C2506 (Type III, from equine heart)
Catalse Sigma-Aldrich C10
Sucrose Domino
Xylene Fisher Scientific X5P-1GAL
Permount Fisher Scientific SP15-500
100% Ethanol Fisher Scientific A406-20 Used for dehydration prior to slide mounting
Coverslips Brain Research Laboratories #3660-1
Frosted unsubbed slides Brain Research Laboratories #3875-FR
Microtome American Optical Company 860
Microscope Olympus BX-60
Adope Photoshop Adobe Systems, San Jose, CA To assemble images
ImageJ Free software can be downloaded at http://rsb.info.nih.gov/ij/ For densometric measurements
Plastic tray Any standard plastic tray may be used to immerse slides in developer solution
Hot plate Any standard hotplate may be used

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Khalil, R., Levitt, J. B. Use of Synaptic Zinc Histochemistry to Reveal Different Regions and Laminae in the Developing and Adult Brain. J. Vis. Exp. (128), e56547, doi:10.3791/56547 (2017).

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