Summary

Удобный метод для извлечения и анализа с высокого давления жидкостной хроматографии и их метаболитов катехоламинов нейротрансмиттеров

Published: March 01, 2018
doi:

Summary

Мы представляем удобный твердофазный извлечения для высокого давления жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) в сочетании с электрохимической обнаружения (ECD) для одновременного определения трех моноаминооксидазы нейротрансмиттеров и два их метаболитов в моче новорожденных. Мы также определить метаболит MHPG как потенциального biomarker для ранней диагностики повреждения головного мозга для младенцев.

Abstract

Извлечение и анализ катехоламинов нейротрансмиттеров в биологических жидкостях имеет большое значение при оценке функции нервной системы и сопутствующих заболеваний, но их точное измерение по-прежнему является проблемой. Многие протоколы были описаны для измерения нейромедиатора целого ряда инструментов, включая высокого давления жидкостной хроматографии (ВЭЖХ). Однако есть недостатки, такие сложные операции или трудно обнаружить несколько целей, которых нельзя избежать, и в настоящее время доминирующей анализа техника все еще ВЭЖХ, в сочетании с чувствительной электрохимических или обнаружения Флуориметрическое, из-за его высокая чувствительность и хорошей селективности. Здесь подробный протокол описан для предварительной очистки и обнаружения катехоламинов с жидкостной хроматографии высокого давления с электрохимической обнаружения (ВЭЖХ-ECD) в реальные мочи младенцев, с использованием композитного нановолокон electrospun состоит полимерных Корона эфира с полистирола как адсорбент также известный как метод экстракции (PFSPE) Упакованные волокна твердой фазы. Мы показываем как мочи которые образцы могут быть легко precleaned столбец нановолокно Упакованные твердой фазы, и как можно быстро обогащенный аналитов в образце, десорбированного и обнаруженных на систему РДРВ. PFSPE значительно упрощает предварительной процедуры для биологических образцов, позволяя сокращение времени, расходов и сокращение потерь целей.

В целом это работа иллюстрирует простой и удобный протокол для извлечения твердофазный сочетании ВЭЖХ-ECD системы для одновременного определения трех моноаминооксидазы нейромедиаторов (норадреналина (NE), эпинефрина (E), допамин (да)) и два их метаболитов (3-метокси-4-hydroxyphenylglycol (MHPG) и 3,4-дигидрокси фенилуксусной кислоты (DOPAC)) в моче новорожденных. Протокол был применен к оценить различия мочевых катехоламинов и их метаболитов между риска младенцев с перинатальной повреждения головного мозга и здорового контроля. Сравнительный анализ показал значительную разницу в мочевыводящих путей MHPG между двумя группами, указав, что метаболитов катехоламинов может быть важным кандидат маркер для ранней диагностики случаев риску повреждения мозга у детей.

Introduction

Медиаторы катехоламинов и их содержание метаболитов в жидкостях организма может повлиять на нервные функции и влияют на баланс ответ на стимул государств в значительной степени1. Аномалии может вызвать целый ряд заболеваний, таких как pheochromacytoma, ganglioneuroma, нейробластомы и неврологических расстройств1,2. Добыча и определения катехоламинов в жидкостях организма имеет смысл для диагностики соответствующих заболеваний. Однако катехоламинов в биологических образцах существует в низких концентрациях и легко окисляются. Кроме того они являются очень трудно элюировать вследствие большого объема вмешательства в средний3. Таким образом одновременное выявление катехоламинов в биологических жидкостях по-прежнему является проблемой.

Там были показаны что мочевых катехоламинов может быть мерой стресса, и что их уровни важных биологических маркеров, отвечая на тактильной стимуляции обработки новорожденных5отзывов. Согласно исследованиям все дети, которые страдают от преждевременной инцидентов подвергаются риску для мозга травмы4,5,6, и травмы может привести к ненормальной выпуска катехоламинов и связанные с этим вопросы в жидкости. Существуют расширенные магнитного резонанса методы, которые может обнаружить повреждение мозга в ранних фазах7,8. Однако в течение первых 48 часов, Аномальные нервной процесс приведет к постоянной мозговой травмой, что будет очевидным в медицинских изображений11. Кроме того инструмент высокая стоимость и ограниченные ресурсы, наряду с другими факторами, делает невозможным для всех отделениях неонатологии иметь доступ к эти специализированные методы нейро изображений. Однако использование легко доступным и практических биомаркеров (например катехоламинов и их метаболитов) может преодолеть эти недостатки, и показ биомаркера в жидкостей человека могут помочь в ранней диагностике черепно-мозговой травмы и привести к запрос Идентификация новорожденных нуждающихся нейропротекции9. Катехоламинов в моче может быть простой и очевидной индекса, из-за прямой корреляции между количество из них выпущены в жидкости и neuroactivity функции.

Среди биологических жидкостях, спинномозговой жидкости (CSF) и образцы плазмы не легко получить через существующие травматических процедуры, и это также очень трудно избавиться от вмешательства из-за клея белков и других примесей, ведущих к хлопотно и процесс времени выборки, который подходит для повторного обнаружения. Кроме того для детей, это практически невозможно получить образцы в травматических моды. Таким образом, мочеполовых выборки лучше, чем другие формы выборки, как это неинвазивный, легко работать и может быть повторно сделано. Обильные и легко хранить и показать большие преимущества над другими формами биологических образцов мочи.

Основные методы для количественного определения катехоламинов в биологических жидкостях включают radioenzymic анализов10, энзим соединенный иммунной сорбент анализов11,12 вольтамперометрии и тепловой линзы спектрометрии13. Но недостатки существуют, такие сложные операции и трудно обнаружить несколько целей. Сегодня техника доминирующей анализа является высокой производительности жидкостной хроматографии (ВЭЖХ)14, в сочетании с чувствительной электрохимических15 или Флуориметрическое обнаружения16, из-за его высокой чувствительностью и хорошей селективности. С технологией тандем масс-спектрометрии, например жидкостной хроматографии/масс-спектрометрия (LC/МС) и жидких хроматография/масс спектрометрии/масс-спектрометрии (LC/МС/МС), анализ и количественной оценки нейротрансмиттеров можно достичь высокого точности и конкретности17,18. Однако MS техника требует дорогостоящей аппаратуры, а также существенно квалифицированной рабочей силы, делая метод трудно применять повсеместно в большинстве обычных лабораторий. ВЭЖХ-ECD систем обычно есть в самых обычных и клинических лабораториях и таким образом стать общей и хороший выбор для исследовательских групп для определения химических, но они требуют образца введены в систему, чтобы быть чистым и из микромасштабной объем19. Таким образом она имеет большое значение для очищения и уплотняют образца до анализа. Классический метод для очистки шаг — экстракции жидкости жидкостью14,,1520 и off-line твердофазный добычи, включая активированные глинозема столбец21,22 и diphenylborate (DPBA) комплексообразованию23,24,25,26.

Myeongho ли и др. использую полимерной смолы, химически модифицированных Корона эфира как адсорбент выборочно извлекать катехоламинов из мочи человека начиная с 2007 года27. Кроме того, в 2006 году он Haibo и др. продемонстрировал снисходительный синтеза подход для boronate сходства извлечения сорбент byutilizing композита на основе nanomagnetic functionalizable nanomagnetic олигомерных полиэдральных силсесквиоксанов (ПОСС) и применяя его к обогащению катехоламинов в мочи человека (норадреналина, адреналина и изопреналин)28. Они также воспользовались наноматериалов для выполнения работы, используя технологию под названием нано electrospinning и формирования полимерных волокнистых материалов в пределах нанометровых размеров элементов. Процесс electrospinning можно настроить диаметр, морфология и пространственной выравнивание продукта, управляя рабочее напряжение и изменения содержания спиннинг решения наряду с другими параметрами29. По сравнению с обычными картриджа SPE, electrospun nanofibers хорошо подходит для извлечения и обогатить целевой аналитов с сложной матрицы, как они оборудованы с высоким соотношением площадь поверхности и объем адсорбировать аналитов с высокой эффективностью, и проявляют более легко контролировать химических свойств поверхности, позволяет удобно прикрепление целевых соединений. Эти свойства делают их хорошим выбором для SPE адсорбентов, значительно снижает твердой фазы и десорбции растворителей сумма30,31,,3233. Для катехоламинов в образцах мочи electrospun нановолокон, состоящий из apolymeric короны эфира с полистирола (PCE-PS) были использованы выборочно извлекать три катехоламинов (“NE”, “E” и “Да”)34. В документе отмечается, селективный эфира Корона адсорбированные целей NE, E и да, которая была основана на ее правильной геометрии для привязки катехоламинов через формирование водородных связей. Результаты отображаются материала эфира Корона эффективно, удаление других мешающих соединений, содержащихся в биологических образцах. Вдохновленный настоящего доклада, Роман был разработан метод для селективного извлечения катехоламинов с использованием electrospun композитный нановолокон, состоящий из PCE-ПС

В этом документе метод сообщалось ранее34 была улучшена и работают не только для анализа успешно E, NE и да, но и их метаболитов, MHPG и DOPAC, в моче. Мы также исследовать новые возможности для механизма процесса адсорбции. Метод показывает удовлетворяющих эффективности добычи и избирательности для пяти аналитов, и этот метод был проверен в анализе мочи от риска младенцев с перинатальной повреждения головного мозга и здорового контроля.

Protocol

Было получено информированное согласие от родителей, и было получено одобрение Советом институциональный обзор для изучения. Исследование было проведено в соответствии с кодексом этики Всемирной медицинской ассоциации (Хельсинкской декларации) для экспериментов с участием людей. Ух…

Representative Results

Этот протокол является простой и удобный метод PFSPE для предварительной обработки образцов мочи и обогащать пять катехоламинов для обнаружения через систему ВЭЖХ-ECD; Диаграмма процесса показан на рисунке 1. Протокол главным образом включает в себя четы?…

Discussion

Предложенный метод PFSPE в этом документе может быть значительным и значимые связи его скорость, простота и удобство. Адсорбенты, используемые в протоколе, electrospun нановолокон, имеют высокие коэффициенты поверхности площадь и объем, который адсорбирует аналитов с высокой эффективностью. ?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Это исследование было поддержано Национальный фонд Китая науки (No.81172720, № 81673230), социального развития исследований программа Цзянсу провинция науки и технологий Департамента (No. BE2016741), Наука и технологии проект Китая общего управления по надзору за качеством, инспекции и карантина (2015QK055), Открытый проект программы ключевых лаборатории развития ребенка и обучения министерства образования, науки Юго-Восточный университет (ДКСТ-2016-04). Мы искренне признаем Юань песню и Ping Лю, который помогал нам в коллекции образцов.

Materials

200 µL pipette tip column to contain nanofibers
PCE-PS nanofibers material for PFSPE extraction
steel rod (about 0.5 mm diameter) fill the nanofibres into the column
gastight plastic syringe (5 ml) compress solution into the end of the tip
methanol Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 67-56-1
diphenylborinic acid 2-aminoethyl ester(DPBA) Sigma-Aldrich.Inc A-106408 complex reagent
norepinephrine(NE) Sigma-Aldrich.Inc A-9512 analyte
3-Methoxy-4-hydroxyphenylglycol(MHPG) Sigma-Aldrich.Inc H1377 analyte
epinephrine(E) Sigma-Aldrich.Inc 100154-200503 analyte
3, 4-Dihydroxyphenylacetic acid(DOPAC) Sigma-Aldrich.Inc D-9128 analyte
dopamine(DA) Sigma-Aldrich.Inc H-8502 analyte
3, 4-dihydroxybenzylamine hydrobromide(DHBA) Sigma-Aldrich.Inc 858781 interior label
acetonitrile Sigma-Aldrich.Inc 75-05-8 eluriant and mobile phase
phosphoric acid Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 7664-38-2 eluriant
uric acid Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 69-93-2 artifical urine
creatinine Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 60-27-5 artifical urine
trisodium citrate Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 6132-04-3 artifical urine
KCl Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 7447-40-7 artifical urine
NH4Cl Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 12125-02-9 artifical urine
NaHCO3 Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd SWC0140326 artifical urine
C2Na2O4 Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 62-76-0 artifical urine
NaSO4 Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 7757-82-6 artifical urine
disodium hydrogen phosphate Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 10039-32-4 artifical urine
urea Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 57-13-6 artifical urine
NaCl Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 7647-14-5 artifical urine
MgSO4.7H2O Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 10034-99-8 artifical urine
CaCl2 Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 10035-04-8 artifical urine
HCl Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 7647-01-0 artifical urine
citric acid Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 77-92-9 artifical urine and mobile phase
EDTA disodium salt Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 34124-14-6 mobile phase
monometallic sodium orthophosphate Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 7558-80-7 artifical urine and mobile phase
1-heptanesulfonic acid sodium salt Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 22767-50-6 mobile phase
sodium hydroxide Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd 1310-73-2 mobile phase
phenylboronic acid column(PBA column) Aglilent 12102018 PBA extraction
Inertsil® ODS-3 5 µm 4.6×150 mm column Dikma 5020-06731 HPLC column for seperation
SHIMADZU SIL-20AC prominence AUTO SAMPLER Shimadzu Corporation, Japan SIL-20AC auto injection for eluriant
SHIMADZU LC-20AD High Performance Liquid Chromatography Shimadzu Corporation, Japan LC-20AD HPLC pump
SHIMADZU L-ECD-60A electrochemical detector Shimadzu Corporation, Japan L-ECD-60A detector for the analytes
ASAP 2020 Accelerated Surface Area and Porosimetry System Micromeritics, USA surface and porosity analyzer 

Riferimenti

  1. Elhwuegi, A. S. Central monoamines and their role in major depression. Prog. Neuropsychopharmacol. Biol. Psychiatry. 28, 435-451 (2004).
  2. Da, C. F., Ngoabdalla, S., Houzel, J. C., Rehen, S. K. Murine model for Parkinsons disease: From 6-OH dopamine lesion to behavioral test. J. Vis. Exp. (35), e1376 (2010).
  3. Varley, H., Gowenlock, A. H. The clinical chemistry of monoamines. Brit. Med. J. 2, 1330 (1963).
  4. Wang, X., Rousset, C. I., Hagberg, H., Mallard, C. Lipopolysaccharide-induced inflammation and perinatal brain injury. Semin. Fetal. Neonatal. Med. 11, 343-353 (2006).
  5. Inder, T. E., Volpe, J. J. Mechanisms of perinatal brain injury. Semin. Neonatol. 5, 3-16 (2000).
  6. Miller, S. P., Ferriero, D. M. From selective vulnerability to connectivity: Insights from newborn brain imaging. Trends. Neurosci. 32, 496-505 (2009).
  7. Barkovich, A. J., et al. Proton MR spectroscopy for the evaluation of brain injury in asphyxiated, term neonates. Am. J. Neuroradiol. 20, 1399-1405 (1999).
  8. Liauw, L., van Wezel-Meijler, G., Veen, S., van Buchem, M. A., van der Grond, J. Do apparent diffusion coefficient measurements predict outcome in children with neonatal hypoxic-ischemic encephalopathy?. Am. J. Neuroradiol. 30, 264-270 (2009).
  9. Varsami, M., et al. Inflammation and oxidative stress biomarkers in neonatal brain hypoxia and prediction of adverse neurological outcome: A review. J. Pediatr. Neonat. Individual. Med. 2, e020203 (2013).
  10. Cooper, R. L., Walker, R. F. Microradioenzymic assays for the measurement of catecholamines and serotonin. Methods. Enzymol. 103, 483-493 (1983).
  11. Murphy, J. F. The development of enzyme linked immunosorbent assays (ELISA) for the catecholamines adrenaline and noradrenaline. J. Immunol. Methods. 154, 89-98 (1992).
  12. Jones, S. R., Mickelson, G. E., Collins, L. B., Kawagoe, K. T., Wightman, R. M. Interference by pH and Ca2+ ions during measurements of catecholamine release in slices of rat amygdala with fast-scan cyclic voltammetry. J. Neurosci. Methods. 52, 1-10 (1994).
  13. Sanchismallols, J. M., Villanuevacamañas, R. M., Ramisramos, G. Determination of unconjugated catecholamine in urine as dopamine by thermal lens spectrometry. Analyst. 117, 1367-1371 (1992).
  14. Lan, C., Liu, W. Determination of catecholamines by HPLC-ECD in urine. Medical Laboratory Science and Clinics. , (2007).
  15. Tsunoda, M., Aoyama, C., Ota, S., Tamura, T., Funatsu, T. Extraction of catecholamines from urine using a monolithic silica disk-packed spin column and high-performance liquid chromatography-electrochemical detection. Anal. Methods. 3, 582-585 (2011).
  16. Bartolini, B., et al. Determination of monoamine oxidase activity by HPLC with fluorimetric detection. Neurobiology (Bp). 7, 109-121 (1999).
  17. Dunand, M., Gubian, D., Stauffer, M., Abid, K., Grouzmann, E. High throughput and sensitive quantitation of plasma catecholamines by ultraperformance liquid chromatography tandem mass spectrometryusing a solid phase microwell extraction plate. Anal. Chem. 85, 3539-3544 (2013).
  18. He, H., Carballo-Jane, E., Tong, X., Cohen, L. H. Measurement of catecholamines in rat and mini-pig plasma and urine by liquid chromatography-tandem mass spectrometry coupled with solid phase extraction. J. Chromatogr. B. 997, 154-161 (2015).
  19. Simon, N., Young, P. How to increase serotonin in the human brain without drugs. J. Psychiatry. Neurosci. 32, 394-399 (2007).
  20. Grossi, G., et al. Improvements in automated analysis of catecholamine and related metabolites in biological samples by column-switching high-performance liquid chromatography. J. Chromatogr. A. 541, 273-284 (1991).
  21. Iwamot, T., Yoshiura, M., Iriyama, K. Liquid chromatographic identification of urinary catecholamine metabolites adsorbed on alumina. J. Liq. Chromatogr. R. T. 10, 1217-1235 (1987).
  22. Maycock, P. F., Frayn, K. N. Use of alumina columns to prepare plasma samples for liquid-chromatographic determination of catecholamines. Clin. Chem. 33, 286-287 (1987).
  23. Grossi, G., Bargossi, A., Lippi, A., Battistoni, R. A fully automated catecholamines analyzer based on cartridge extraction and HPLC separation. Chromatographia. 24, 842-846 (1987).
  24. Rondelli, I., et al. New method for the resolution of the enantiomers of 5,6-dihydroxy-2-methyl-aminotetralin by selective derivatization and HPLC analysis: Application to biological fluids. Chirality. 8, 381-389 (1996).
  25. Kumar, A., Hart, J. P., McCalley, D. V. Determination of catecholamines in urine using hydrophilic interaction chromatography with electrochemical detection. J. Chromatogr. A. 1218, 3854-3861 (2011).
  26. Sabbioni, C., et al. Simultaneous liquid chromatographic analysis of catecholamines and 4-hydroxy-3-methoxyphenylethylene glycol in human plasma: Comparison of amperometric and coulometric detection. J. Chromatogr. A. 1032, 65-71 (2004).
  27. Lee, M., et al. Selective solid-phase extraction of catecholamines by the chemically modified polymeric adsorbents with crown ether. J. Chromatogr. A. 1160, 340-344 (2007).
  28. He, H., et al. Facile synthesis of a boronate affinity sorbent from mesoporous nanomagnetic polyhedral oligomeric silsesquioxanes composite and its application for enrichment of catecholamines in human urine. Anal. Chim. Acta. 944, 1-13 (2016).
  29. Subbiah, T., Bhat, G. S., Tock, R. W., Parameswaran, S., Ramkumar, S. S. Electrospinning of nanofibers. J. Appl. Polym. Sci. 96, 557-569 (2005).
  30. Hu, W. Y., et al. Packed-fiber solid-phase extraction coupled with high performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry for determination of diethylstilbestrol, hexestrol, and diedestrol residues in milk. J. Chromatogr. B. 957, 7-13 (2014).
  31. Liu, Z., Kang, X., Fang, F. Solid phase extraction with electrospun nanofibers for determination of retinol and α-tocopherol in plasma. Microchim. Acta. 168, 59-64 (2010).
  32. Qi, D., Kang, X., Chen, L., Zhang, Y., Wei, H., Gu, Z. Electrospun polymer nanofibers as a solid-phase extraction sorbent for the determination of trace pollutants in environmental water. Anal. Bioanal. Chem. 390, 929-938 (2008).
  33. Kang, X. J., Chen, L. Q., Zhang, Y. Y., Liu, Y. W., Gu, Z. Z. Performance of electrospun nanofibers for SPE of drugs from aqueous solutions. J. Sep. Sci. 31, 3272-3278 (2008).
  34. Chen, L. Q., Wang, Y., Qu, J. S., Deng, J. J., Kang, X. J. Selective extraction of catecholamines by packed fiber solid-phase using composite nanofibers composing of polymeric crown ether with polystyrene. Biomed. Chromatogr. 29, 103-109 (2015).
  35. Chen, L. Q., Zhu, X. H., Shen, J., Zhang, W. Q. Selective solid-phase extraction of catecholamines from plasma using nanofibers doped with crown ether and their quantitation by HPLC with electrochemical detection. Anal. Bioanal. Chem. 408, 4987-4994 (2016).
  36. Hu, H., Zhang, Y., Zhang, Y., Huang, X., Yuan, D. Preparation of a new sorbent based on boronate affinity monolith and evaluation of its extraction performance for nitrogen-containing pollutants. J. Chromatogr. A. 1342, 8-15 (2014).
  37. Chen, J., et al. Sensitive determination of four camptothecins bysolid-phase microextraction-HPLC based on a boronic acid contained polymer monolithic layer. Anal. Chim. Acta. 879, 41-47 (2015).
  38. Li, D., Chen, Y., Liu, Z. Boronate affinity materials for separation and molecular recognition: structure, properties and applications. Chem. Soc. Rev. 44, 8097-8123 (2015).
  39. Yan, J., Springsteen, G., Deeter, S., Wang, B. The relationship among pKa, pH, and binding constants in the interactions between boronic acids and diols: It is not as simple as it appears. Tetrahedron. 60, 11205-11209 (2004).
  40. Reuster, T., Rilke, O., Oehler, J. High correlation between salivary MHPG and CSF MHPG. Psychopharmacology. 162, 415-418 (2002).
  41. Beckmann, H., Goodwin, F. K. Urinary MHPG in subgroups of depressed patients and normal controls. Neuropsychobiology. 6, 91-100 (1980).
  42. Mitoma, M., et al. Stress at work alters serum brain-derived neurotrophic factor (BDNF) levels and plasma 3-methoxy-4-hydroxyphenylglycol (MHPG) levels in healthy volunteers: BDNF and MHPG as possible biological markers of mental stress?. Prog. Neuropsychopharmacol. Biol. Psychiatry. 32, 679-685 (2008).
  43. Ressler, K. J., Nemeroff, C. B. Role of Norepinephrine in the Pathophysiology and Treatment of Mood Disorders. Biol. Psychiatry. 46, 1219-1233 (1999).
  44. Alonso-Spilsbury, M., et al. Perinatal asphyxia pathophysiology in pig and human: A review. Anim. Reprod. Sci. 90, 1-30 (2005).
  45. Shalak, L., Perlman, J. M. Hypoxic-ischemic brain injury in the term infant: Current concepts. Early. Hum. Dev. 80, 125-141 (2004).
  46. Maas, J. W., Leckman, J. F. relationships between central nervous system noradrenergic function and plasma and urinary MHPG and other norepinephrine metabolites. MHPG: Basic Mechanisms and Psychopathology. , 33-43 (1983).
  47. Maas, J. W. Relationships between central nervous system noradrenergic function and plasma and urinary concentrations of norepinephrine metabolites. Adv. Biochem. Psychopharmacol. 39, 45-55 (1984).
  48. Peyrin, L., Pequignot, J. M., Chauplannaz, G., Laurent, B., Aimard, G. Sulfate and glucuronide conjugates of 3-methoxy-4-hydroxyphenylglycol (MHPG) in urine of depressed patients: Central and peripheral influences. J. Neural. Transm. 63, 255-269 (1985).
  49. Peyrin, L. Urinary MHPG sulfate as a marker of central norepinephrine metabolism: A commentary. J. Neural. Transm. 80, 51-65 (1990).

Play Video

Citazione di questo articolo
Xie, L., Chen, L., Gu, P., Wei, L., Kang, X. A Convenient Method for Extraction and Analysis with High-Pressure Liquid Chromatography of Catecholamine Neurotransmitters and Their Metabolites. J. Vis. Exp. (133), e56445, doi:10.3791/56445 (2018).

View Video