Summary

Un método de cultura alternativa para mantener la hipometilación genómica de células madre embrionarias del ratón usando MEK inhibidor PD0325901 y vitamina C

Published: June 01, 2018
doi:

Summary

Describimos en detalle dos protocolos basados en químicos para el cultivo de células madre embrionarias de ratón. Este nuevo método utiliza mecanismos sinérgicos de promover oxidación mediada por Tet (vitamina C) y reprimiendo la síntesis de novo de la 5-METILCITOSINA (por PD0325901) para mantener el hypomethylation de la DNA y pluripotencia de células madre embrionarias de ratón.

Abstract

Las células madre embrionarias (ES) tienen el potencial de diferenciarse en cualquiera de las tres capas germinales (endodermo, mesodermo o ectodermo) y pueden generar muchos linajes para la medicina regenerativa. ES la célula cultura en vitro ha sido objeto de preocupación generalizada. Clásicamente, se mantienen las células de ratón ES en factor inhibitorio del suero y la leucemia (LIF)-que contiene el medio. Sin embargo, bajo condiciones de suero/LIF, las células muestran heterogeneidad en la morfología y el perfil de expresión de genes relacionados con la pluripotencia y sobre todo en un estado metaestable. Por otra parte, las células cultivadas ES exhiben hipermetilación global, pero ingenuo ES las células de la masa celular interna (ICM) y células de germen primordiales (PGCs) son en un estado de hipometilación global. El estado de hypomethylated de ICM y PGCs está estrechamente relacionado con su pluripotencia. Para mejorar los métodos de cultivo de células de ratón ES, recientemente hemos desarrollado un nuevo método basado en la utilización selectiva combinada de dos compuestos de moléculas pequeñas para mantener el estado de hypomethylated y pluripotentes de ADN. Aquí, presentamos el co tratamiento de vitamina C (Vc) y PD0325901 puede borrar cerca de 90% de 5-METILCITOSINA (5mC) en 5 días en células ES de ratón. El contenido generado 5mC es comparable a la de PGCs. La investigación mecanicista demuestra que PD0325901 para arriba-regula la expresión Prdm14 para suprimir la Dnmt3b (metiltransferasa de ADNde novo ) y Dnmt3l (el cofactor de Dnmt3b), reduciendo la síntesis de novo de 5mC. VC facilita la conversión de 5mC 5-hidroximetilcitosina (5hmC) catalizado principalmente por Tet1 y Tet2, indicando la participación de demethylations de ADN activos y pasivos. Por otra parte, bajo condiciones de Vc/PD0325901, las células ES de ratón muestran morfología homogénea y estado pluripotente. Colectiva, proponemos una novela y un método de cultura química-sinergia para lograr hypomethylation de la DNA y el mantenimiento de la pluripotencia en las células ES de ratón. El método de química dependiente de molécula pequeña supera las deficiencias principales de la cultura de suero y tiene promesa de generar células de ES homogéneas para más aplicaciones clínicas e investigaciones.

Introduction

Células madre embrionarias se originan del ICM de un blastocisto1. Las células están en un estado de pluripotencia y pueden formar todos los linajes somáticos y del germline las células2. Creación de células madre embrionarias ofrece la oportunidad de investigar el desarrollo de procesos en vitro y puede generar células de importancia médica para la medicina regenerativa basada en su pluripotencia3.

Establecido dos grupos seminally las líneas de células ES de ratón en 1981 y cuando las células derivadas del embrión temprano de ratón fueron cultivadas en suero fetal bovino (FBS)-que contiene medio con fibroblastos embrionarios de ratón (MEFs) como el alimentador capa1,4 . MEFs fueron inactivadas mitotically y crecieron los platos antes de cultivar células madre embrionarias. MEFs proporcionan soporte para el accesorio de células de ratón ES y producen factores de crecimiento para promover la propagación y reprimir la diferenciación5, mientras que FBS ofrece factores tróficos esenciales y hormonas para la proliferación celular. Estudios posteriores indicaron que LIF producido por las células de alimentador estaba de la citoquina clave para la auto renovación y mantenimiento de la pluripotencia en las células ES de ratón, y la adición de LIF en el medio podría sustituir células de alimentador6. En la actualidad, el mantenimiento de las células ES de ratón en medio de la FBS/LIF en alimentadores sigue siendo el método estándar adoptado por muchos investigadores. Sin embargo, algunos problemas con este enfoque de la cultura clásica. En primer lugar, alimentador células secretan factores exceso y sin control y pueden causar contaminación patógena7. Para evitar esta interferencia, cubriendo la superficie de los platos con gelatina y la adición de LIF en suero que contiene medio son métodos alternativos para mantener las células de ratón ES sin células de la capa de alimentador. Además, las células ES de ratón cultivadas bajo condiciones de suero/LIF exhiben heterogeneidad morfológica en poblaciones de la célula e incluso en el nivel de expresión de factores relacionados con la pluripotencia8. Estudios recientes sugieren que bajo condiciones de suero/LIF, los factores de transcripción básicos relacionados con la pluripotencia (incluyendo OCT4, SOX2 y Nanog) pueden mantener la pluripotencialidad LIF y WNT de señalización; sin embargo, en particular, también activan una señal de fibroblastos factor de crecimiento (FGF) para activar la diferenciación8. Debido a la doble acción ambivalente de los factores de transcripción del núcleo, células ES de ratón cultivadas en suero presentan heterogeneidad, consistiendo en dos poblaciones intercambiables, uno similar al ICM y otro parecido al epiblasto preparado estado8. Por otra parte, las células de ratón ES en suero a menudo muestran hipermetilación global9, mientras que ICM y PGCs se encuentran en un estado de hypomethylated global, que está estrechamente vinculado con su pluripotencia9,10.

Existe una demanda considerable para desarrollar nuevos métodos para el cultivo de células ES de ratón. Se han establecido varios protocolos mejorados desde 200311 pero sigue habiendo algunas limitaciones y defectos7. Desde 2008, la utilización combinada de dos inhibidores de la cinasa de molécula pequeña, PD0325901 (inhibidor de la cinasa de proteína activada por mitógeno (MAPK) / extracelular regulada por señal quinasa (ERK) (MEK)) y CHIR99021 (el inhibidor de la glucógeno sintasa quinasa 3 (GSK3)), en N2B27 medio con LIF y sin suero ha abierto nuevas perspectivas para células de ratón cultivo ES12. Este nuevo medio definido se caracteriza por el uso de dos inhibidores (2i). Las células ES de ratón cultivadas en medio 2i/LIF son más homogéneas en poblaciones celulares y la expresión de factores de pluripotencia. Además, las células de ratón 2i/LIF-cultivadas ES objeto expuesto hypomethylation de la DNA a nivel mundial, que está más cerca de ICM-como las células9,13. Aún así, la cultura 2i tiene sus desventajas. PD0325901 y CHIR99021 son insolubles en agua y generalmente se disuelven en dimetil sulfóxido (DMSO)-basado en la solución para añadir en medio de cultivo. Los estudios han demostrado a largo plazo y dosis bajas de exposición de las células a DMSO puede llevar a citotoxicidad14.

Aquí, utilizamos dos compuestos de moléculas pequeñas y desarrolló un nuevo método de cultivo de células ES de ratón. El método de cultivo novela combina Vc y MEK inhibidor PD0325901 para promover el hypomethylation de la DNA rápidamente y con eficacia a un nivel comparable de PGC, nombrado como el protocolo de cultivo de Vc/PD0325901. Células ES de ratón en Vc/PD0325901-agregado que contiene el suero medio exhiben homogeneidad en morfología y se mantienen en un estado de tierra. En comparación con cultura de 2i, células ES de ratón cultivadas bajo condiciones de Vc/PD0325901 exhiben cinética más rápida de la desmetilación del ADN y pueden alcanzar el nivel de la hipometilación comparable a la del PGC. Además, el uso de un único inhibidor (PD0325901) disminuye la cantidad de entrada de DMSO en medio en comparación con la utilizada en 2i (PD0325901/CHIR99021) y reduce el daño a las células.

Protocol

1. preparaciones Preparar una solución de 1,0 mM PD0325901 (inhibidor de la MEK) y 3,0 mM CHIR99021 (inhibidor GSK3). Pesar 2 mg de PD0325901 y 4,15 mL de DMSO en un frasco de vidrio ámbar. Pesar 2 mg de CHIR99021 y 1,43 mL de DMSO en un frasco de vidrio ámbar. Siguiente reconstitución, almacenar alícuotas (50 μl/tubo en tubos PCR de 200 μL) a-20 ° C y protegido de la luz. Quitar un tubo que contiene el caldo congelado del congelador y descongelar a temp…

Representative Results

VC/PD0325901 había inducido sinergia global de eliminación de las células ES de ratón. Mouse ES cells en suero exhiben hipermetilación del ADN, mientras que células ICM pluripotentes y PGCs muestran borrado global de metilación del ADN y el estado de hypomethylated está estrechamente relacionado con su pluripotencia9,10. Anteriormente, nosotros y otros encontraro…

Discussion

En el trabajo, hemos demostrado un nuevo método de la combinación de capital y PD0325901 para mantener las células de ratón ES en un estado indiferenciado y hypomethylated, que fue alcanzada por una acción sinérgica de promover la desmetilación del ADN por Vc y supresión de novo de DNA metilación de PD0325901. Por otra parte, las células ES de ratón demostraron gran morfología bajo el sistema de cultivo de Vc/PD0325901.

Para sustentar mejor el estado de las células de rat…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue financiado por la nacional Ciencias naturales Fundación de China (21435008 y 21327006 a H.W.) y el programa de investigación prioridad estratégica de la Academia China de Ciencias (XDB14030200 a H.W.).

Materials

fetal bovine serum Australia source Corning 35-076-CV Component of mouse ES cell medium
DMEM/high glucose Hyclone SH30022 Component of mouse ES cell medium
LIF Millipore ESG1107 Component of mouse ES cell medium
non-essential amino acids (NEAA) Gibco 11140050 Component of mouse ES cell medium
sodium pyruvate Gibco 11360070 Component of mouse ES cell medium
L-glutamine Gibco 25030081 Component of mouse ES cell medium
penicillin streptomycin solution Gibco 15140122 Component of mouse ES cell medium
PBS Sigma P5493 Cells rinse
trypsin Hyclone SH30042 Cell dissociation
gelatin Sigma 48722 Dishes coating
PD0325901 Stemolecule 04-0006-10 small-molecule chemical for cell culture
CHIR99021 Stemolecule 04-0004 small-molecule chemical for cell culture
vitamin C Sinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd  XW00508171 small-molecule chemical for cell culture
Ultra Bioscience water purification systemr Purelab Ultra Ultra water
DMSO Sigma D8418 Cell freezing medium
centrifuger Eppendorf 5427R DNA and protein extraction
protease inhibitor cocktail Sigma P8340 Component of RIPA buffer
PMSF Protease Inhibitor ThermoFisher Scientific 36978 Component of RIPA buffer
DTT Sigma 43815 Component of RIPA buffer
EGTA Sigma E3889 Component of RIPA buffer
Genomic DNA Purification Kit  Promega A1125 Genomic DNA extraction
NanoDrop 2000 ThermoFisher Scientific NanoDrop 2000 Determination of DNA concentration
calf intestinal phosphatase New England Biolabs M0290 DNA digestion
DNase I New England Biolabs M0303 DNA digestion
snake venom phosphodiesterase I Sigma P4506 DNA digestion
Nanosep 3K Omega Pall OD003C35 filtration of digested DNA
1290 UHPLC system Agilent  1290 UHPLC separation
G6410B triple quadrupole mass spectrometer Agilent  G6410B MS/MS analysis
Zorbax Eclipse Plus C18 column Agilent  Zorbax Eclipse Plus colume for UHPLC separation
5-methylcytosine Solarbio Life Sciences SM8900  standard 5mC
5-hydroxymethylcytosine (standard) Toronto Research Chemicals M295900 standard 5hmC
Prdm14 antibody bioworld BS7634 Western blot analysis-primary antibody
Dnmt3a antibody bioworld BS6587 Western blot analysis-primary antibody
Dnmt3b antibody abcam ab13604 Western blot analysis-primary antibody
Dnmt3l antibody abcam ab3493 Western blot analysis-primary antibody
Dnmt1 antibody abcam ab13537 Western blot analysis-primary antibody
β-tubulin antibody bioworld BS1482MH Western blot analysis-primary antibody
goat anti-rabbit IgG abcam ab6721 Western blot analysis-secondary antibody
goat anti-mouse IgG abcam ab6789 Western blot analysis-secondary antibody
Trizol Invitrogen 15596-026 RNA extraction
reverse transcription system Promega A3500 RNA reverse transcription
GoTaq qPCR Master Mix Promega A6001 RT-PCR
StemTAG alkaline phosphatase staining and activity assay kit Cells Biolabs, Inc. CBA-302  alkaline phosphatase staining analysis
mouse ES cells: WT, 129 SvEv Provided by Professor Guoliang Xu (Shanghai Institutes for Biological Sciences, Chinese Academy of Sciences, Shanghai, China) cell strain of mouse ES cells
microscope Zeiss LSM510 cells observation
GraphPad Prism 5.0 GraphPad Prism Software Inc. 5.0 statistical analysis

Riferimenti

  1. Evans, M. J., Kaufman, M. H. Establishment in culture of pluripotential cells from mouse embryos. Nature. 292 (5819), 154-156 (1981).
  2. Smith, A. G. Embryo-derived stem cells: of mice and men. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 17, 435-462 (2001).
  3. Murry, C. E., Keller, G. Differentiation of embryonic stem cells to clinically relevant populations: lessons from embryonic development. Cell. 132 (4), 661-680 (2008).
  4. Martin, G. R. Isolation of a pluripotent cell line from early mouse embryos cultured in medium conditioned by teratocarcinoma stem cells. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 78 (12), 7634-7638 (1981).
  5. Eiselleova, L., et al. Comparative study of mouse and human feeder cells for human embryonic stem cells. Int. J. Dev.Biol. 52 (4), 353-363 (2008).
  6. Williams, R. L., et al. Myeloid leukaemia inhibitory factor maintains the developmental potential of embryonic stem cells. Nature. 336 (6200), 684-687 (1988).
  7. Tamm, C., Galitó, S. P., Annerén, C. A comparative study of protocols for mouse embryonic stem cell culturing. Plos One. 8 (12), e81156 (2013).
  8. Yamaji, M. PRDM14 ensures naive pluripotency through dual regulation of signaling and epigenetic pathways in mouse embryonic stem cells. Cell Stem Cell. 12 (3), 368-382 (2013).
  9. Ficz, G., et al. FGF signaling inhibition in ESCs drives rapid genome-wide demethylation to the epigenetic ground state of pluripotency. Cell Stem Cell. 13 (3), 351-359 (2013).
  10. Smith, Z. D., et al. A unique regulatory phase of DNA methylation in the early mammalian embryo. Nature. 484 (7394), 339-344 (2012).
  11. Ying, Q. L., Nichols, J., Chambers, I., Smith, A. BMP induction of Id proteins suppresses differentiation and sustains embryonic stem cell self-renewal in collaboration with STAT3. Cell. 115 (3), 281-292 (2003).
  12. Ying, Q. L., et al. The ground state of embryonic stem cell self-renewal. Nature. 453 (7194), 519-523 (2008).
  13. Leitch, H. G., et al. Naive pluripotency is associated with global DNA hypomethylation. Nat. Struct. Mol. Biol. 20 (3), 311-316 (2013).
  14. Galvao, J., Davis, B., Tilley, M., Normando, E., Duchen, M. R., Cordeiro, M. F. Unexpected low-dose toxicity of the universal solvent DMSO. FASEB J. 28 (3), 1317-1330 (2014).
  15. Yin, R., et al. Ascorbic acid enhances Tet-mediated 5-methylcytosine oxidation and promotes DNA demethylation in mammals. J. Am. Chem. Soc. 135 (28), 10396-10403 (2013).
  16. Guerra, A. D., Rose, W. E., Hematti, P., Kao, W. J. Minocycline modulates NFκB phosphorylation and enhances antimicrobial activity against Staphylococcus aureus in mesenchymal stromal/stem cells. Stem Cell Res. Ther. 8 (1), 171 (2017).
  17. Blaschke, K., et al. Vitamin C induces Tet-dependent DNA demethylation and a blastocyst-like state in ES cells. Nature. 500 (7461), 222-226 (2013).
  18. Tahiliani, M., et al. Conversion of 5-methylcytosine to 5-hydroxymethylcytosine in mammalian DNA by MLL partner TET1. Science. 324 (5929), 930-935 (2009).
  19. Wu, H., Zhang, Y. Mechanisms and functions of Tet protein-mediated 5-methylcytosine oxidation. Genes Dev. 25 (23), 2436-2452 (2011).
  20. Inoue, A., Zhang, Y. Replication-dependent loss of 5-hydroxymethylcytosine in mouse preimplantation embryos. Science. 334 (6053), 194 (2011).
  21. He, Y. F., et al. Tet-mediated formation of 5-carboxylcytosine and its excision by TDG in mammalian DNA. Science. 333 (6047), 1303-1307 (2011).
  22. Maiti, A., Drohat, A. C. Thymine DNA glycosylase can rapidly excise 5-formylcytosine and 5-carboxylcytosine: Potential implications for active demethylation of CpG sites. J. Biol. Chem. 286 (41), 35334-35338 (2011).
  23. Habibi, E., et al. Whole-genome bisulfite sequencing of two distinct interconvertible DNA methylomes of mouse embryonic stem cells. Cell Stem Cell. 13 (3), 360-369 (2013).
  24. von Meyenn, F., et al. Impairment of DNA methylation maintenance is the main cause of global demethylation in naive embryonic stem cells. Mol. Cell. 62, 848-861 (2016).
  25. Li, C., Liu, B., Zhong, S., Wang, H. MEK inhibitor PD0325901 and vitamin C synergistically induce hypomethylation of mouse embryonic stem cells. Oncotarget. 7 (26), 39730-39739 (2016).
  26. Hackett, J. A., et al. Synergistic mechanisms of DNA demethylation during transition to ground-state pluripotency. Stem Cell Reports. 1 (6), 518-531 (2013).
  27. Nakaki, F., Saitou, M. PRDM14: a unique regulator for pluripotency and epigenetic reprogramming. Trends Biochem. Sci. 39 (6), 289-298 (2014).
  28. Nichols, J., Smith, A. Pluripotency in the embryo and in culture. Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 4 (8), (2012).

Play Video

Citazione di questo articolo
Li, C., Lai, W., Wang, H. An Alternative Culture Method to Maintain Genomic Hypomethylation of Mouse Embryonic Stem Cells Using MEK Inhibitor PD0325901 and Vitamin C. J. Vis. Exp. (136), e56391, doi:10.3791/56391 (2018).

View Video