Summary

WinCF-modellen - en billig og trekkbar mikrokosmos av en slimplugget bronchiole for å studere mikrobiologien av lungeinfeksjoner

Published: May 08, 2017
doi:

Summary

Slimet koblet luftrom på cystisk fibrose (CF) pasienter som et ideelt miljø for mikrobiologiske patogener for å trives. Artikkelen beskriver en ny fremgangsmåte for å studere CF-lunge mikrobiomer i et miljø som etterligner hvor de forårsaker sykdommen og hvordan endring av de kjemiske betingelser kan kjøre mikrobielle dynamikk.

Abstract

Mange kroniske luftveis sykdommer resulterer i slimplugg av luftveiene. Lunger av et individ med cystisk fibrose er et eksempel på hvor deres slimpluggede bronkioler skaper et gunstig habitat for mikrobiell kolonisering. Ulike patogener trives i dette miljøet interagerer med hverandre og kjører mange av symptomene forbundet med CF sykdom. Som alle mikrobielle samfunn, har de kjemiske forholdene i deres habitat en betydelig innvirkning på samfunnets struktur og dynamikk. For eksempel trives forskjellige mikroorganismer i forskjellige nivåer av oksygen eller andre oppløselige konsentrasjoner. Dette gjelder også i CF lung, hvor oksygenkonsentrasjoner antas å drive samfunnsfysiologi og struktur. Metodene beskrevet her er utformet for å etterligne lungemiljøet og vokse patogener på en måte som ligner det som de forårsaker sykdom. Manipulering av disse mikroberens kjemiske omgivelser blir da brukt til å studere hvordan kjemienstry av lungeinfeksjoner regulerer dens mikrobiell økologi. Fremgangsmåten, kalt WinCF system, er basert på kunstig spytt medium og smale kapillarrør ment å tilveiebringe et oksygen-gradient lik det som finnes i slim-plugget bronkioler. Manipulering av kjemiske betingelser, slik som media pH i sputum eller antibiotika trykk, gjør det mulig for visualisering av de mikrobiologiske forskjellene i disse eksempler ved å bruke fargede indikatorer, se for gass eller biofilmdannelse eller uttrekking og sekvensering av nukleinsyre-innholdet i hver prøve.

Introduction

Metoden beskrevet i dette manuskriptet kalles WinCF-systemet 1 . Det overordnede målet med WinCF er å gi et eksperimentelt oppsett som er i stand til å simulere miljøet av en slimfylt lungebronkiol. Dette vil muliggjøre et trekkbart system for å studere mikrobielle patogener av lungesykdommer med en slimhypersekresjonsfenotype, inkludert cystisk fibrose (CF), kronisk obstruktiv lungesykdom (COPD), astma og andre. Prosedyren ble utformet spesielt for studiet av CF, som er preget av mutasjoner som forårsaker lungesekresjoner å bli tykke og vanskelig å klare, til slutt fylle bronkioler og andre små passasjer med slim 2 . Slike blokkeringer i lungehemmende gassutveksling fordi inhalert luft ikke lenger er i stand til å nå mange alveoler og også gi et habitat for bakteriell kolonisering 3 , 4 . Manglende evne til å forhindre mikrobiell vekst idreven lunge slim til slutt fører til utvikling av komplekse kroniske infeksjoner i luftveiene. Disse gruppene inneholder en rekke organismer, inkludert virus, sopp og bakterier som Pseudomonas aeruginosa, alt i samspill med hverandre 5, 6, 7, 8. Aktiviteten av CF-lunge mikrobiomer er antatt å være involvert i fakkel av symptomer som kalles pulmonale eksaserbasjoner 1, 9, 10, 11. WinCF muliggjør studium av den mikrobielle samfunnet oppførsel rundt disse eksaserbasjoner, og blir nå utvidet til å virke som en base eksperimentelt system for å studere lunge mikrobiell økologi. Tradisjonelt eksaserbasjoner har blitt studert ved direkte analyse av prøver tatt fra lungen. Mange forvirrende faktorer gjør direkte analyse av mikrobiell bOppførsel i lungene utfordrende, med WinCF-systemet, blir mange av disse faktorene fjernet og lungemikrobiets oppførsel kan studeres mer direkte, noe som muliggjør en finere analyse av bakteriell aktivitet i en mucusplugget bronkiole.

WinCF-systemet gir en metode for å vokse og analysere bakterier på en måte som effektivt etterligner lungemiljøet. Tradisjonelle metoder for dyrking av lungebakterier involverte ofte dyrkingsprøver på tradisjonelle agarplater. Disse metodene lar prøvene åpne for atmosfærisk oksygen, og forsømmer å ta hensyn til de hypoksiske og ofte anoksiske forholdene som finnes i lungebrystkarger plugget med slim 12 , 13 . Culturing på agar under aerobiske forhold er ingenting som CF-lungens miljø og kan villede klinikere og forskere angående oppførsel av patogener som de prøver å behandle. I tillegg er næringsstoffene tilgjengelige for bakterier på agarplaterEr ulik de som er tilgjengelige i selve sputum, som regnskapsføres i WinCF ved å benytte kunstig sputum media (ASM). Som vist av Pseudomonas kulturer i Sriramulu et al. 14 , ASM inneholder et bestemt sett av komponenter som etterligner ressursene som er tilgjengelige for sputummikrober, og også replikerer den fysiske konsistensen av sputum. Fordi en syk lunge har en bestemt mikrobiom, bør studien av slike mikroorganismer ideelt sett foregå i de spesifikke tilstandene til lungen også.

WinCF-systemet muliggjør rask analyse og enkel manipulering av eksperimentelle forhold for å observere mikrobielle endringer som ligner på hvordan de ville oppstå i en faktisk lungebronkiol. Denne teknikken tillater inokulering av et myriade av beslektede utvalgstyper, inkludert sputum, spytt, andre kroppssekretjoner og rene eller blandede bakteriekulturer. Naturen til eksperimentell oppsett muliggjør umiddelbar visuell tolkning avDen mikrobielle samfunnsadferd og er designet for å muliggjøre enkel nedstrøms anvendelse av en rekke mikrobiologiske og omiske prosedyrer. Slike studier er viktige fordi bakterielle samfunnssammensetninger endres basert på deres fysiokjemiske forhold. Med WinCF kan de kjemiske forholdene i media manipuleres for å analysere effektene på bakteriell aktivitet. For eksempel kan surheten av mediet endres før inokulering med en prøve. Etter inkubering kan den bakterielle aktiviteten i hver av disse forholdene sammenliknes direkte, og konklusjoner kan trekkes om hvordan bakterier i disse sputumprøver oppfører seg som respons på varierende pH. Her skisserer vi prosedyrene for å bruke WinCF-systemet og eksempler på hvordan mediekjemien kan manipuleres for å studere effektene på lungemikrobiomet.

Protocol

1. Forberedelse av aksjer for kunstig sputummedia Lag en 5% mucin løsning. Tilsett 1,0 g dehydratisert gris mage mucin til 20 ml deionisert vann. Autoklaver den resulterende løsningen. MERK: Mucinsteriliseringen vil ødelegge den innebygde strukturen; Andre metoder for å sterilisere mucinen i sin tørre form inkluderer UV-sterilisering og bestråling. Disse metodene har imidlertid ikke blitt mye brukt til WinCF-systemet. Tilsett 2,2 g KCl til 50 ml deionisert vann og tillate oppløsning. T…

Representative Results

Mikrobiologisk vekst på tvers av de forskjellige kjemiske forholdene indusert i prøvene varierte dramatisk i noen tilfeller og mer subtilt hos andre. Mange endringer i aktiviteten var visuelle i naturen, og det var tydeligvis så snart inkuberingsperioden avsluttet. I eksemplet med pH-manipulasjon varierte prøvene over pH-spektrumet sterkt som vist ved flere faktorer som ble tydelige etter inkubering. Når ingen sputumprøver ble tilsatt til mediet, viste den eneste forandringen over …

Discussion

Den mikrobiologiske sammensetningen av en lunge med CF inneholder et stort utvalg av organismer, men forholdene i lungene sannsynlig har en betydelig innflytelse på hva slags mikrober kan overleve og trives 13, 15. Spesifikke mekanismer via hvilke disse forholdene endrer seg, og den eksakte effekten de har på lungen mikrobiomer er vanligvis uklare i dag. I denne eksperimentelle fremgangsmåte presenterer vi en analyse av mikrobiologiske endringer basert på ma…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å erkjenne Vertex Pharmaceuticals og Cystisk fibrose Forskning Innovasjonsprisen for finansiering R. Quinn og NIH / NIAID om midler stipend en U01 AI124316-01, en systembiologi tilnærming til behandling av multi-resistente patogener. Vi vil også takke Institutt for mekanisk og Aerospace Engineering ved UCSD er lavere maskinteknikk senior design kurs for å lette samarbeid med ingeniør aspekter ved dette arbeidet.

Materials

Color-Coded Capillary Tubes Fisher Scientific 22-260943
Cha-seal Tube Sealing Compound Kimble-Chase 43510
Mucin from porcine stomach Sigma M1778
Ferritin, cationized from horse spleen Sigma F7879
Salmon sperm DNA Sodium salt (sonified) AppliChem Panreac A2159
MEM Nonessential Amino Acids Corning cellgro 25-025-CI
MEM Amino Acids Cellgro 25-030-CI
Egg Yolk Emulsion, 50% Dalynn Biologicals VE30-100
Potassium Chloride Fisher Scientific P2157500
Sodium Chloride Fisher Scientific S271500
15mL centriguge tubes with Printed Graduations and Flat Caps VWR 89039-666
50mL centrifuge tubes with Printed Graduations and Flat Caps VWR 89039-656
1.5mL microcentrifuge tubes Corning MCT-150-R
2.0mL microcentrifuge tubes Corning MCT-200-C

Riferimenti

  1. Quinn, R. A., et al. A Winogradsky-based culture system shows an association between microbial fermentation and cystic fibrosis exacerbation. ISME J . 9, 1024-1038 (2015).
  2. Quinton, P. M. Cystic fibrosis: impaired bicarbonate secretion and mucoviscidosis. Lancet. 372 (9636), 415-417 (2008).
  3. Harrison, F. Microbial ecology of the cystic fibrosis lung. Microbiology. 153 (Pt 4), 917-923 (2007).
  4. Caverly, L. J., Zhao, J., LiPuma, J. J. Cystic fibrosis lung microbiome: Opportunities to reconsider management of airway infection. Pediatr pulmonol. 50, S31-S38 (2015).
  5. Blainey, P. C., Milla, C. E., Cornfield, D. N., Quake, S. R. Quantitative analysis of the human airway microbial ecology reveals a pervasive signature for cystic fibrosis. Sci Transl Med. 4 (153), 153ra130 (2012).
  6. Willner, D., et al. Spatial distribution of microbial communities in the cystic fibrosis lung. ISME J. 6 (2), 471-474 (2012).
  7. Delhaes, L., et al. The airway microbiota in cystic fibrosis: a complex fungal and bacterial community–implications for therapeutic management. PloS one. 7 (4), e36313 (2012).
  8. Rogers, G. B., et al. D. Bacterial diversity in cases of lung infection in cystic fibrosis patients: 16S ribosomal DNA (rDNA) length heterogeneity PCR and 16S rDNA terminal restriction fragment length polymorphism profiling. J clin microbiol. 41 (8), 3548-3558 (2003).
  9. Stenbit, A. E., Flume, P. A. Pulmonary exacerbations in cystic fibrosis. Curr Opin Pulm Med. 17 (6), 442-447 (2011).
  10. Twomey, K. B., et al. Microbiota and metabolite profiling reveal specific alterations in bacterial community structure and environment in the cystic fibrosis airway during exacerbation. PloS one. 8 (12), e82432 (2013).
  11. Carmody, L. A., et al. Changes in cystic fibrosis airway microbiota at pulmonary exacerbation. Ann. Am. Thorac. Soc. 10 (3), 179-187 (2013).
  12. Worlitzsch, D., et al. Effects of reduced mucus oxygen concentration in airway Pseudomonas infections of cystic fibrosis patients. J. Clin. Invest. 109 (3), 317-325 (2002).
  13. Cowley, E. S., Kopf, S. H., LaRiviere, A., Ziebis, W., Newman, D. K. Pediatric Cystic Fibrosis Sputum Can Be Chemically Dynamic, Anoxic, and Extremely Reduced Due to Hydrogen Sulfide Formation. mBio. 6 (4), e00767-e00715 (2015).
  14. Sriramulu, D. D., Lünsdorf, H., Lam, J. S., Römling, U. Microcolony formation: a novel biofilm model of Pseudomonas aeruginosa for the cystic fibrosis lung. J. Med. Microbiol. 54 (Pt 7), 667-676 (2005).
  15. Quinn, R. A., et al. Biogeochemical forces shape the composition and physiology of polymicrobial communities in the cystic fibrosis lung. mBio. 5 (2), (2014).

Play Video

Citazione di questo articolo
Comstock, W. J., Huh, E., Weekes, R., Watson, C., Xu, T., Dorrestein, P. C., Quinn, R. A. The WinCF Model – An Inexpensive and Tractable Microcosm of a Mucus Plugged Bronchiole to Study the Microbiology of Lung Infections. J. Vis. Exp. (123), e55532, doi:10.3791/55532 (2017).

View Video