The extracellular matrix plays a major role in defining the microenvironment of cells and in modulating cell behavior and phenotype. We describe a rapid method for the isolation of cell-derived extracellular matrix, which can be adapted to different scales for microscopic, biochemical, proteomic, or functional studies.
The extracellular matrix (ECM) is recognized as a diverse, dynamic, and complex environment that is involved in multiple cell-physiological and pathological processes. However, the isolation of ECM, from tissues or cell culture, is complicated by the insoluble and cross-linked nature of the assembled ECM and by the potential contamination of ECM extracts with cell surface and intracellular proteins. Here, we describe a method for use with cultured cells that is rapid and reliably removes cells to isolate a cell-derived ECM for downstream experimentation.
Through use of this method, the isolated ECM and its components can be visualized by in situ immunofluorescence microscopy. The dynamics of specific ECM proteins can be tracked by tracing the deposition of a tagged protein using fluorescence microscopy, both before and after the removal of cells. Alternatively, the isolated ECM can be extracted for biochemical analysis, such as sodium dodecyl sulphate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) and immunoblotting. At larger scales, a full proteomics analysis of the isolated ECM by mass spectrometry can be conducted. By conducting ECM isolation under sterile conditions, sterile ECM layers can be obtained for functional or phenotypic studies with any cell of interest. The method can be applied to any adherent cell type, is relatively easy to perform, and can be linked to a wide repertoire of experimental designs.
在过去的几十年中,细胞外基质(ECM)已成为公认的是参与多种细胞生理和病理过程多样化,动态和复杂的环境。在组织水平,则ECM影响细胞信号传导,运动,分化,血管生成,干细胞生物学,肿瘤,纤维化等 1,2-。 ECM组织和ECM依赖过程的研究因而对细胞生物学和生理学组织广泛的影响。到达细胞外基质组合物,组织和功能性质的一种机械的理解,需要用于ECM的准确分离方法。而从组织3在隔离依靠细胞外基质蛋白的鉴定最早,ECM从培养细胞的准备现已成为更为普遍。
细胞来源的ECM的分离和分析是复杂主要有两个原因。首先,细胞的存在和IR丰富细胞内蛋白质可能使得难以给ECM分离为离散的细胞外结构。事实上,一些ECM蛋白具有在细胞内以及在ECM 4的作用;因此,从细胞来源的ECM的有效去除胞内蛋白质是至关重要的,如果蛋白质的ECM内的研究是不与在细胞内的角色混淆。其次,细胞来源的ECM是由许多大,寡聚蛋白质,这往往是共价交联后的ECM组件,因此在标准的洗涤剂不溶性的。这些属性可以变得复杂提取和ECM的进一步分析。为了解决这些问题,需要一种方法,可实现从细胞成分ECM蛋白的有效的分离。
几种方法已在文献中的ECM无论从细胞培养物或组织提取物的分离进行了描述。许多这些方法都瞄准了丰富的ECM PR的提取otein,胶原蛋白,从组织和包括使用中性盐3,在酸性条件5,6,或胃蛋白酶7。从组织提取总细胞外基质的隔离通常涉及的组织的脱细胞的ECM的隔离之前。例如,一个连续提取方法已经描述了分离自人心脏组织8的ECM。首先,松散结合的ECM蛋白用0.5M NaCl的前十二烷基硫酸钠(SDS)萃取用来除去细胞。最后,使用4M的胍8提取剩余的ECM蛋白质。 ECM还可以从使用8M脲9脱细胞的样品溶解。其它技术用洗涤剂,如脱氧胆酸10,通过离心从可溶细胞裂解物中分离不溶性ECM蛋白前提取两个小区和ECM。
分离和本报告中所述的细胞来源的ECM的分析的方法提供了摄制除去细胞材料,留下可以通过原位免疫荧光进行分析或用于进一步的生化分析中提取细胞源ECM诱导型方法。这种方法可以适用于任何贴壁细胞类型,并且可以按比例增加下游过程,例如免疫印迹或质谱法,或用于功能研究的分离的细胞外基质的利用率。该方法也可以在用活细胞的共聚焦显微镜一起使用,以跟踪的实时感兴趣的标签的蛋白的ECM的沉积。这是通过使用一网格,玻璃底皿而实现的。总体而言,该方法提供了细胞来源的ECM和也以确定并监控该沉积和单个ECM蛋白的动力学范围的精确隔离。
该议定书中的关键步骤
该方法必须遵循以确保ECM的成功分离和分析一些关键的步骤。例如,氢氧化铵是用来除去细胞,并用于分析分离ECM。虽然氢氧化铵是在黑暗的水溶液稳定,可以在室温下保存,瓶必须严格重新密封在每次使用之间。因为气体可能从溶液中挥发,从而降低浓度,我们强烈建议在开始一个新的瓶每6-8周。此外,该工作液应新鲜作出每个实验。它同样重要的是将细胞完全在去离子水荧光棒洗涤除去。如果没有充分执行这些步骤,蜂窝材料可保留在盘中,污染下游分析。如果细胞已生长了10天或更长的时间,则可能需要额外的水洗涤。它是为n重要OTE所分离的ECM层通常相比于电池11非常薄,所以在成像期间标识ECM时需要小心。为隔离的ECM成的SDS-PAGE样品缓冲液中有效提取,至关重要的是,在样品缓冲液中含有还原剂。对于最有效地除去ECM的,必须使用沸腾热样品缓冲液。对于实验,其中的ECM样本将通过SDS-PAGE电泳进行蛋白质染色或蛋白质组学解析,这是至关重要通过刮擦几个板价值的ECM的到样品缓冲液的相同等分部分以获得浓缩的样品。
修改和故障排除
ECM蛋白的生成和分泌能细胞类型之间显著变化,所以对于外基质分泌及沉积时间周期应当确定从头每种细胞类型。同样重要的是要知道,ECM组合物将在关系式T动态地改变培养18 O细胞密度和时间。这个因素应该设计实验时,应考虑到。显然,这种方法的细胞类型的选择是重要的,对于通过质谱法,这可能需要总的ECM蛋白的显着量的分析中提取ECM时尤为如此。
该技术的局限性
分泌ECM蛋白的水平非常低的细胞将是使用此方法使用更具挑战性。非贴壁细胞,三维细胞培养物,或细胞侵袭测定法是不适合在通过该方法本为ECM的隔离。该方法是最适合用于标准的“二维”的细胞培养物的使用。因为氢氧化铵萃取去除完全,ECM与细胞的上侧相关联,并且分泌的细胞,但非交联的,ECM蛋白也被去除,从下面和周围的基地上留下盘组装的ECM的薄层细胞11,17的</SUP>。它是复杂的量化多少ECM由氢氧化铵萃取释放,因为所释放的材料还包括细胞外基质蛋白,要么之前分泌或从细胞表面摄取后是细胞内。
关于到现有/替代方法的技术意义
进行了广泛的孤立的ECM实验的能力是在细胞生物学和组织生理学的上下文中重要的是,它也具有用于组织再生和组织工程领域的影响。该方法比在纯化的胶原蛋白或其他纯ECM蛋白细胞组装复杂的ECM结构在家乡的大小,与本地交联机制,并与目前在适当起源细胞类型比单独的细胞外基质蛋白形成的凝胶的优势。例如,RCS ECM的蛋白质组研究表明丰富matrilins和COMP / TSP5,如预期一个软骨的ECM 19,20( 图4)。在一般情况下,细胞衍生ECM的分析是通过其性质阻碍作为广泛的多蛋白网络,其导致共价交联和许多ECM蛋白的不溶性,而且还由ECM的潜在污染与胞内蛋白提取物。旨在隔离从组织蛋白质组分析ECM的级分的多步骤过程中的总集合确定了21蛋白质的产生ECM蛋白的8%。然而,从ECM蛋白肽是确定的总肽的73%。这对于细胞源ECM的分离和分析的方法迅速且可靠地除去细胞物质,同时保持ECM蛋白。这种方法可用于各种细胞类型和下游应用的并且便于ECM生物学和细胞-ECM相互作用的在细胞培养物的分析。我们如何该方法可以在不同的尺度上使用的协议细节,以满足广泛的EXP关于ECM组织,动力学,或组合物erimental的问题,并以分离的ECM对细胞的作用效果。
掌握这一技术后,未来的应用方向或
展望未来,该方法可以适用于三维细胞培养使用;这将扩大其生理意义。脱细胞的天然组织有很大的潜力,作为丢失或受损组织的再生,作为替代移植,如心脏衰竭22后的支架。它克服了供体的可用性和免疫排斥的问题的可能性。本报告中所描述的方法的未来的应用可以调查其与三维细胞培养物或组织脱细胞,这将进一步增加了该方法的范围使用。
The authors have nothing to disclose.
我们非常感谢贝琳达·威拉德博士学,蛋白质组学和代谢组学实验室,勒纳研究所,克利夫兰诊所,为进行RCS ECM的蛋白质组学分析。我们承认theMedical研究理事会英国的财政支持,授权号K018043,以JCA。
Antibody to COL1A1 | Novus | NB600-408 | Rabbit polyclonal. Reacts with other fibrillar collagens as well as collagen I. IF: 1/200 |
Antibody to fibronectin | Sigma | F3648 | Rabbit polyclonal. WB: 1/600 for 1.5 hr. IF: 1/200 |
Antibody to thrombospondin 1 | ThermoFisher | MA5-13398 | Mouse monoclonal clone A6.1. WB: 1/150 for 1.5 hr |
Antibody to RFP | Abcam | ab62341 | Rabbit polyclonal. WB: 1/2000 for 2 hr |
Antibody to β-actin | Sigma | A1978 | Mouse monoclonal clone AC-15. WB: 1/10000 for 1.5 hr |
Antibody to α-tubulin | Sigma | T9026 | Mouse monoclonal clone DM1A. WB: 1/5000 for 1.5 hr |
Cell Tracker Green | ThermoFisher | C2925 | Fluorescent cell marker. Use at 1 µM for 30 min |
Fluorescein isothiocyanate (FITC)-Phalloidin | Sigma | P-5282 | Stock = 50mg/ml in DMSO.1/50 for 45 min |
FITC-conjugated goat anti-mouse IgG | Sigma | F8771 | IF: 1/50 for 1 hr |
FITC-conjugated sheep anti-rabbit IgG | SIgma | F7512 | IF: 1/50 for 1 hr |
Horseradish peroxidase (HRP)-conjugated goat anti-mouse IgG | LI-COR | 926-80010 | WB: 1/50000 for 1 hr |
HRP-conjugated goat anti-rabbit IgG | LI-COR | 926-80011 | WB: 1/100000 for 1 hr |
Vectorshield mounting medium with DAPI | Vector | H-1200 | Store at 4 C in the dark |
Dulbecco's Modified Eagle's Medium | Sigma | D6429 | Warm before use |
Fibroblast growth medium | PromoCell | C-23010 | Warm before use, supplement with 50 µg / mL ascorbic acid |
Phenol red-free DMEM | ThermoFisher | 21063-029 | Warm before use |
Trypsin-EDTA solution | Sigma | T3924 | Warm before use |
Gridded glass-bottomed dish | MatTek | P35G-2-14-C-GRID | |
NH4OH, 28% – 30% solution | Sigma | 221228 | Dilute to 20 mM in de-ionised water. Once opened store in the dark, tightly capped. |
Paraformaldehyde, 16 % solution | Alfa Aesar | 43368 | Dilute to 2 % (v/v) in PBS |
Deoxycholic acid | Sigma | D2510 | Use at 2 % (v/v) final concentration |
Triton X-100 | Sigma | T8787 | Dilute to 0.5 % (v/v) final concentration |
GelCode Blue stain reagent | ThermoFisher | 24590 | Protein stain for SDS-PAGE gels |
Precision Plus protein standards | Biorad | 161-0374 | Protein standards for SDS-PAGE gels |
Trans-Blot SD Semi Dry transfer cell | Biorad | 1703940 | Efficient transfer of high molecular weight proteins |
PVDF transfer membrane | Millipore | ISEQ00010 | Immobilon-PSQ |
Ponceau S stain | Sigma | P7170 | Reversible protein stain for PVDF membrane |
WesternSure Enhanced chemiluminescence (ECL) substrate | LI-COR | 926-80200 | |
High performance chemiluminescence film | GE Healthcare | 28906837 | |
Sterile filtration unit, MILLEX-GV | Millipore | ML481051 | |
SP8 AOBS confocal laser scanning microscope | Leica | Environmental chamber needed for temperature and CO2 control (Life Imaging Services) | |
Key: IF, Immunofluorescence; WB, Western Blot |