Summary

تقييم شخص سهل التأقلم الكربون العضوي في التربة عن طريق إجراءات متسلسل التبخير الحضانة

Published: October 29, 2016
doi:

Summary

Labile organic carbon (LOC) and the potential carbon turnover rate are sensitive indicators of changes in soil nutrient cycling processes. Details are provided for a method based on fumigating and incubating soil in a series of cycles and using the CO2 accumulated during the incubation periods to estimate these parameters.

Abstract

الممارسات الإدارية والتغيرات البيئية يمكن أن يغير مغذيات التربة ودورة الكربون. كربون التربة العضوي قابل للتغيير، وحوض C تحلل بسهولة، حساس جدا للاضطراب. بل هو أيضا الركيزة الأساسية للميكروبات التربة، وهو أمر أساسي لتدوير المغذيات. ونظرا لهذه الصفات، تم التعرف الكربون العضوي قابل للتغيير (الكونغرس) كمعلمة مؤشر لصحة التربة. قياس معدل دوران الكونغرس يساعد أيضا في فهم التغيرات في عمليات تدوير المغذيات في التربة. وقد تم تطوير طريقة التبخير حضانة متتابعة لتقدير اللجنة المنظمة التربة والمحتملين معدل دوران C. الطريقة يتطلب تبخير عينات من التربة وقياس CO 2 -C respired خلال فترة الحضانة 10 يوما خلال سلسلة من الدورات التبخير الحضانة. عطوب العضوية C والمحتملين معدل دوران C ثم يتم استقراء من ثاني أكسيد الكربون المتراكمة 2 مع نموذج الأسي السلبي. إجراءات لإجراء هذه الطريقة هي وصفد.

Introduction

نظرا لدورها الحيوي في الكربون (C) وتدوير المغذيات وحساسيتها لتغير التربة، LOC التربة معيارا هاما لقياس كمؤشر للنوعية التربة بالمواد العضوية. الغابات والنظم الايكولوجية الزراعية إلى حد كبير تعتمد على تمعدن المواد الغذائية في المواد العضوية في التربة كمصدر للمغذيات. ويمكن للأنشطة إدارة تغيير حجم تجمع ومعدل دوران من التربة العضوية C، مما أدى إلى تغييرات في توريد المواد الغذائية 1. التربة العضوية C يتكون من اثنين من كسور الرئيسية للالمتمردة C، التي لديها معدلات دوران من عدة آلاف من السنين، واللجنة المنظمة المحلية، التي لديها معدلات دوران من بضعة أسابيع إلى بضعة سنوات 2،3،4. التربة عطوب C يتكون من ركائز متفسخ بسهولة مثل الجراثيم الكتلة الحيوية C، المركبات منخفضة الوزن الجزيئي (الأحماض الأمينية، الكربوهيدرات البسيطة) من rhizodeposition النبات، وتركات التحلل والمواد المتسربة من مصنع 1،4،5 القمامة. لأن التربة عطوب C هو متفسخ بسهولة، فمنحساسة للغاية لممارسات الإدارة والظواهر الطبيعية التي تعكر صفو أو تغيير التربة 6. يخدم التربة عطوب C كمصدر للطاقة الأولية للميكروبات التربة في تحلل المواد العضوية (7). على هذا النحو، والآثار الكونغرس تدوير المغذيات إلى درجة أكبر مما يفعل أشكال مستقرة من التربة العضوية C 8. الكائنات المجهرية في التربة هي أيضا مسؤولة عن غالبية التنفس غيرية الذي يحدث خلال تحلل المواد العضوية في التربة المتمردة بتسهيل من تأثير فتيلة من الكونغرس 9،10،11. هذا التنفس يلعب دورا كبيرا في دورات C العالمية بسبب التربة العضوية C ما يقرب من ضعف ما كان عليه في الغلاف الجوي C 11.

ونتيجة لأهميتها في النظم الإيكولوجية الأرضية، وقد وضعت عدة طرق لتقدير اللجنة المنظمة التربة. ويمكن تحديد هذه الطرق إلى ثلاثة تصنيفات العامة: المادية والكيميائية والكيمياء الحيوية. طرق الفصل الكثافات هي المنهجيات البدنيالمواد المستنفدة للأوزون التي تتكون من فصل التربة العضوية C إلى كسور الثقيلة أو الخفيفة أو في الخشنة والجسيمات الدقيقة العضوية C 12،13،14،15. طرق الفصل من السهل نسبيا على القيام بها، ولكن لم يفعلوا ذلك في كثير من الأحيان تنتج نتائج متسقة لهذه الكسور تختلف مع نوع التربة التركيب المعدني، مصنع حجم المادي والكثافة، والتربة مجموع الاتساق 13،15. كما تنتج طرق الفصل المعلومات الكمية الوحيدة عن الكونغرس 15.

تتوفر لتقدير اللجنة المنظمة العديد من الطرق الكيميائية. استخراج مائي من الكربون العضوي من السهل نسبيا على القيام بها، والطرق وكثيرا ما توفر نتائج استنساخه بسهولة. ومع ذلك، هذه الاستخراج لا تنطوي على مجموعة كاملة من ركائز المتاحة للكائنات الدقيقة 15. وقد وضعت عدة طرق الأكسدة للتجزئة الكيميائية للتربة العضوية مئوية. طرق الأكسدة لديها ميزة تميز كمية ونوعية عطوب العضوية C، على الرغم من أن بعض الأساليب تتطلب العمل مع المواد الكيميائية الخطرة وهناك تباين الأساليب في استنساخ نتائج 15. طريقة استخراج حمض المائي هو نوع آخر من إجراءات تجزئة المواد الكيميائية التي يمكن قياس كمية ونوعية من الكونغرس، ولكن نتائج هذه الطريقة لا تسهل تفسير خصائصه البيولوجية 13،15.

وقد تم تطوير أساليب الكيمياء الحيوية لتفسير الكونغرس التربة. ويمكن قياس عطوب C العضوي كما CO 2 صدر عن الكائنات الحية الدقيقة في فحوصات التنفس. وتوفر هذه المقايسات تقديرات المواد العضوية mineralizable الحقيقية، ولكن عادة فقط أكثر المركبات عطوب والمعادن خلال فحوصات 15. وقد استخدمت التربة الكتلة الحيوية الميكروبية C تقاس التبخير الحضانة 16 و التبخير استخراج 17 إلى تطوير استنتاجات حول الكونغرس. ومع ذلك، فإن هذه الإجراءات تقديرات C في الكتلة الحيوية الميكروبية بدلا من LOوتشمل جيم كل التبخير إجراءات الطرح القيم من التربة غير المدخنة لتحديد الميكروبي الكتلة الحيوية C، ولكن قيل إن القيم التي تم الحصول عليها دون الطرح من غير المدخنة التربة وتوفر قدرا من كسور العضوية عطوب من C بالإضافة إلى الكتلة الحيوية الميكروبية 18 .

ومتتابعة التبخير الحضانة (SFI) إجراء 13 لقياس الكونغرس هو أسلوب الكيمياء الحيوية مقتبسة من إجراء التبخير الحضانة 16 لميكروبات التربة قياس الكتلة الحيوية مئوية. طريقة SFI لديه بعض المزايا النسبية إلى أساليب أخرى لتقدير اللجنة المنظمة المحلية. والأساس النظري لهذه الطريقة أن الكونغرس هو بالميكروبات تحلل C الذي يحكم نمو الجراثيم وأن الكونغرس يمكن الوصول إليه جسديا وتحلل كيميائيا بواسطة الكائنات المجهرية في التربة. في ظل الظروف الميدانية، ونمو الميكروبات تقتصر عادة عن طريق توافر الكربون، وتوافر المواد الغذائية، ومساحة المسام المتاحة، و / أو الافتراس. هذه العوامل هي elimi تقريباnated من التبخير، وتهيئة الظروف دون عوائق للنمو الميكروبي. تتم إزالة أي المواد الغذائية خلال فترة الحضانة هذه الطريقة. وعلى مدار عدة التبخير وحضانة دورات، يصبح نمو الجراثيم محدودة C كمية ونوعية (تقلقل) 13. يستخدم المتراكمة CO 2 respired خلال دورات حضانة لاستقراء الكونغرس مع بسيطة سلبية على 11،13،19 نموذج الأسي. ويمكن أيضا أن تستمد معدل دوران C المحتملين من المنحدر من طراز الأسي، وبالتالي فإن طريقة SFI لديه ميزة على معظم وسائل LOC أخرى من تقدير وقت واحد تركيزات ومعدل دوران المحتملين من الكونغرس 11. لأساليب أخرى، لا يمكن إلا أن التأكد من المعلومات حول معدلات دوران المحتملة من الكونغرس إذا تم استخدام استشفاف مثل 14 C 13. طريقة SFI وبالتالي تقنية بسيطة نسبيا وغير مكلفة للحصول على قياسات كل من الكونغرس ومعدلات دوران المحتملة.

Protocol

1. جمع التربة للحصول على عينات ممثلة من الظروف داخل المنطقة التجريبية وداخل التجريبية وحدات 20 تحديد أي اختلافات في خصائص موقع مثل خصائص المنحدر والتربة بما في ذلك الملمس، والكثافة، ودرجة الحموضة، وعمق الأفق الع…

Representative Results

وقد تم استخدام أسلوب SFI كما هو موضح في هذه الورقة في سلسلة من التجارب التي أجريت في جنوب شرق الولايات المتحدة 24،25،26،27. معا، وشملت هذه التجارب مجموعة متنوعة من أنواع النباتات، بما في ذلك الصنوبر الأرض الطينية (صنوبر taeda L.)، التبن (ثمام عصو?…

Discussion

The SFI method is an effective protocol for detecting differences in soil LOC and potential C turnover rates over a range of management practices (such as fertilization, tillage, vegetation control, and harvest practices) and soil conditions. Soil LOC content and C turnover rate can be used to understand alterations of nutrient cycles. The SFI method also provides measurement of microbial biomass C from the first fumigation-incubation event. The ability to measure soil LOC, C turnover, and microbial biomass C concurrentl…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors gratefully acknowledge Michelle Gonzales, Kenny Kidd, Brad Osbon, and all other personnel that conducted the laboratory procedures for these data. The authors are thankful for assistance from Andrew Scott in developing software coding to conduct model-fitting procedures. The authors also appreciate the funding from the U.S. Department of Agriculture National Institute of Food and Agriculture, Sustainable Agriculture and Research & Education, Sun Grant South Central region, and the National Council of Air and Stream Improvement that made possible the studies from which representative results provided in this paper were drawn.

Materials

Soil auger sampling kit JMC PN039 Several other manufacturers of punch augers are available
Parafilm Curwood PM999
Aluminum weighing boats Fisherbrand 08-732-103
General purpose drying oven Fisher Scientific 15-103-0511 Many other manufacturers of general purpose laboratory ovens are available
10.5 L vacuum desiccator Corning 3121-250
Glass scintillation vial Wheaton 968560
Glass threaded vials, 41 mL  Fisherbrand 03-339-21N
Chloroform, stabilized with amylenes Sigma-Aldrich 67-66-3
Boiling chips Fisher Scientific S25201
Glass rod Fisherbrand S63449
Size 10 rubber stopper Fisherbrand 14-130P Rubber stoppers can be purchased as solid and drilled in center to install glass rod or bought with a hole to insert glass rod
Wide-mouth PPCO bottle, 0.5 L ThermoScientific 3121050016
Sodium hydroxide, reagent grade Sigma-Aldrich S5881
Barium chloride Sigma-Aldrich 202738
Phenolphthalein indicator Fisher Scientific S25466
Hydrochloric acid solution, 0.1 N Fisher Scientific SA54-4

Riferimenti

  1. Blair, G., et al. Soil carbon fractions based on their degree of oxidation, and the development of a carbon management index for agricultural systems. Aust. J. Agric. Res. 46, 1459-1466 (1995).
  2. Schimel, D. S., et al. Soil organic matter dynamics in paired rangeland and cropland toposequences in North Dakota. Geoderma. 36, 201-214 (1985).
  3. Parton, W. J., et al. Analysis of factors controlling soil organic matter levels in great-plains grasslands. Soil Sci. Soc. Am. J. 51, 1173-1179 (1987).
  4. Wu, H., et al. Labile organic C and N mineralization of soil aggregate size classes in semiarid grasslands as affected by grazing management. Biol. Fertil. Soils. 48, 305-313 (2011).
  5. Jones, D. L., et al. Plant and mycorrhizal regulation of rhizodeposition. New Phytol. 163, 459-480 (2004).
  6. Harrison, K. G., et al. The effect of changing land use of soil radiocarbon. Science. 262, 725-726 (1993).
  7. Jinbo, Z., et al. Land use effects on the distribution of labile organic carbon fractions through soil profiles. Soil Sci Soc. Am. J. 70, 660-667 (2006).
  8. Whalen, J. K., et al. Carbon and nitrogen mineralization from light- and heavy-fraction additions to soil. Soil Biol Biochem. 32, 1345-1352 (2000).
  9. Gregorich, E. G., et al. Towards a minimum data set to assess soil organic matter quality in agricultural soils. Can. J. Soil Sci. 74, 367-385 (1994).
  10. Hamer, U., et al. Priming effects in different soil types induced by fructose, alanine, oxalic acid and catechol additions. Soil Biol. Biochem. 37, 445-454 (2005).
  11. Feng, W., et al. Shifting sources of soil labile organic carbon after termination of plant carbon inputs in a subtropical moist forest of southwest China. Ecol. Res. 26, 437-444 (2011).
  12. Tisdall, J. M., Carter, M. R., Stewart, B. A. Formation of soil aggregates and accumulation of soil organic matter. Structure and Organic Matter Storage in Agricultural Soils. , 57-96 (1996).
  13. Zou, X. M., et al. Estimating soil labile organic carbon and potential turnover rates using a sequential fumigation-incubation procedure. Soil Biol. Biochem. 37, 1923-1928 (2005).
  14. Cambardella, C. A., Elliott, E. T. Particulate soil organic matter changes across a grassland cultivation sequence. Soil Sci. Soc. Am. J. 56, 777-783 (1992).
  15. Strosser, E. Methods for determination of labile soil organic matter: an overview. J. Agrobiol. 27, 49-60 (2010).
  16. Jenkinson, D. A., Powlson, D. S. The effects of biocidal treatment on metabolism in soil V: a method for measuring soil biomass. Soil Biol. Biochem. 8, 209-213 (1976).
  17. Vance, E. D., et al. An extraction method for measuring soil microbial biomass C. Soil Biol. Biochem. 19, 703-707 (1987).
  18. De-Polli, H., et al. Chloroform fumigation-extraction labile C pool (microbial biomass C "plus") shows high correlation to microbial biomass C in Argentinian and Brazilian soils. Cienc. Suelo. 25, 15-22 (2007).
  19. Olson, J. S. Energy storage and the balance of producers and decomposers in ecological systems. Ecology. 44, 322-331 (1963).
  20. Pennock, D., Carter, M. R., Gregorich, E. G., et al. Chapter 1, Unit 1, Soil sampling designs. Soil Sampling and Methods of Analysis. , (2008).
  21. Luizao, R. C. C., et al. Seasonal variation of soil microbial biomass: the effects of clearfelling a tropical rainforest and establishment of pasture in the central Amazon. Soil Biol. Biochem. 24, 805-813 (1992).
  22. Horwath, W. R., Paul, E. A., Weaver, R. W., et al. Microbial biomass. Methods of soil analysis part 2: microbiological and biochemical properties. , 753-773 (1994).
  23. Jenkinson, D. S., Ladd, J. N., Paul, E. A., Ladd, J. N. Microbial biomass in soil: measurement and turnover. Soil Biochemistry. , 415-471 (1981).
  24. Blazier, M. A., Gungor, E. B. O., et al. Poultry litter fertilization impacts on soil, plant, and water characteristics in loblolly pine (Pinus taeda L.) plantations and silvopastures in the mid-South USA. Principles, application, and assessment in soil science. , 43-74 (2011).
  25. Blazier, M. A., et al. Straw harvesting, fertilization, and fertilizer type alter soil biophysical properties in a loblolly pine plantation in the mid-South USA. Biol. Fertil. Soils. 45, 145-153 (2008).
  26. Blazier, M. A., et al. Loblolly pine age and density affects switchgrass growth and soil carbon in an agroforestry system. For. Sci. 58, 485-496 (2012).
  27. Blazier, M. A., et al. Nitrogen and carbon of switchgrass, loblolly pine, and cottonwood biofuel production systems in the Southeast United States. For. Sci. 61, 522-534 (2015).
  28. Zhang, M., et al. Decomposition differences of labile carbon from litter to soil in a tropical rain forest and rubber plantation of Xishuagbanna, southwest China. Eur. J. Soil Biol. 55, 55-61 (2013).
  29. Nelson, D. W., Sommers, L. E., Sparks, D., et al. Total carbon, organic carbon, and organic matter. Methods of soil analysis. Part 3: chemical methods. , 961-1090 (1996).
  30. Huang, L., et al. Correlation among soil microorganisms, soil enzyme activities, and removal rates of pollutants in three constructed wetlands purifying micro-polluted river water. Soil Biol. Biochem. 70, 221-228 (2012).
  31. Kong, L., et al. Enzyme and root activities in surface-flow constructed wetlands. Chemosphere. 76, 601-608 (2009).
  32. Cui, L., et al. Evaluation of nutrient removal efficiency and microbial enzyme activity in a baffled subsurface-flow constructed wetland system. Bioresour. Technol. 146, 656-662 (2013).
  33. Jenkinson, D. S., Wilson, J. R. Determination of microbial biomass carbon and nitrogen in soil. Advances in nitrogen cycling in agricultural ecosystems. , 368-386 (1988).
  34. Sparling, G. P., et al. Interference from plant roots in the estimation of soil microbial ATP, C, N, and P. Soil Biol. Biochem. 17, 275-278 (1985).
  35. Christie, P., Beatte, J. A. M. Significance of sample size in measurement of soil microbial biomass by the chloroform fumigation-incubation method. Soil Biol. Biochem. 19, 149-152 (1987).
  36. McLaughlin, K. K., Hobbie, S. E. Comparison of labile soil organic matter fractionation techniques. Soil Sci. Soc. Am. J. 68, 1616-1625 (2004).
  37. Xia, X., et al. Variation of soil labile organic carbon pools along an elevational gradient in the Wuyi Mountains, China. J. Resour. Ecol. 1, 368-374 (2010).

Play Video

Citazione di questo articolo
Blazier, M. A., Liechty, H. O. Assessment of Labile Organic Carbon in Soil Using Sequential Fumigation Incubation Procedures. J. Vis. Exp. (116), e54614, doi:10.3791/54614 (2016).

View Video