Summary

I vitro Registrering av Mesenteric Afferent nervaktivitet i mus jejunal och Kolon segment

Published: October 25, 2016
doi:

Summary

Mesenteric afferent nerves convey information from the gastrointestinal tract towards the brain regarding normal homeostasis as well as pathophysiology. Gastrointestinal afferent nerve activity can be assessed by mounting isolated intestinal segments with attached afferent nerves into an organ bath, isolating the nerve, and assessing basal as well as stimulated activity.

Abstract

Afferenta nerver inte bara förmedla information om normal fysiologi, men också signalera störd homeostas och patofysiologiska processer i olika organsystem från periferin mot det centrala nervsystemet. Som sådan har den ökade aktiviteten eller "sensibilisering" av mesenteriska afferenta nerver tilldelats en viktig roll i patofysiologin för visceral överkänslighet och abdominala smärtsyndrom.

Mesenteriska afferent nervaktivitet kan mätas in vitro i ett isolerat intestinala segment som är monterad i en specialbyggd organbad och från vilken den splanchnicus nerven isoleras, vilket gör att forskare för att direkt bedöma nervaktivitet i anslutning till det gastrointestinala segmentet. Aktivitet kan registreras vid baseline i standardiserade förhållanden under buk av segmentet eller efter tillsatsen av farmakologiska föreningar levereras intraluminalt eller serosally. Denna teknik medgerforskaren att enkelt studera effekten av läkemedel som riktar sig till perifera nervsystemet i kontrollprover; Dessutom ger det avgörande information om hur nervaktivitet förändras under sjukdom. Det bör dock noteras att mäta afferent neuronaktivitet endast utgör en relästation i det komplexa neuronala signalkaskad, och forskare bör ha i åtanke att inte förbise neuronal aktivitet på andra nivåer (t.ex. dorsalrotsganglier, ryggmärgen eller centrala nervsystemet ) för att fullt ut klarlägga komplexa neuronala fysiologi vid hälsa och sjukdom.

Vanligen använda applikationer inkluderar studier av neuronal aktivitet som svar på administrering av lipopolysackarid, och studiet av afferent nervaktivitet i djurmodeller av colon irritabile. I en mer translationell tillvägagångssätt, kan det isolerade mus tarmsegmentet exponeras för colonic supernatanter från IBS-patienter. Vidare, en modifieringav denna teknik har nyligen visat sig vara tillämplig i humana kolonprover.

Introduction

Sensorisk signalering och smärtupplevelse är en komplex process som resulterar från ett intrikat samspel mellan afferenta nerver, spinal nervceller, stigande och fallande facilitatory och hämmande vägar och flera olika områden i hjärnan. Som sådana kan förändringar vid en eller flera av dessa nivåer resulterar i förändrad sensorisk signalering och visceral smärta vid sjukdomstillstånd. För att studera alla dessa olika aspekter av sensorisk signalering flera tekniker har utvecklats som sträcker sig från enstaka cellförsök (t.ex. kalcium avbildning på neuroner) till hela djurmodeller (t.ex. beteendemässiga reaktioner såsom visceromotor svar). Den teknik som beskrivs i detta dokument tillåter forskare att särskilt bedöma afferent nervaktivitet in vitro från en isolerad del av tunntarmen eller kolon hos gnagare. Kort sagt, en isolerad gastrointestinal segment (vanligen jejunum eller kolon) monterad i en specialbyggd inspelning kammare perfusion med en fysiologisk KRebs lösning. Den splanchnicus nerv dissekeras och kopplas till en elektrod möjliggör registrering av afferent neuronal aktivitet i splanchnicus eller bäcken afferenta nerver. Nervaktiviteten kan registreras basalt eller som svar på ökande intraluminala tryck och / eller farmakologiska föreningar som kan användas antingen direkt till inspelningen kammaren (serosally), eller via det intraluminala perfusat (mukosalt) för att bedöma deras effekt på afferenta urladdning 1-6 . Att notera, splanchnicus nerver innehåller också efferenta fibrer och viscerofugal afferenter utöver de sensoriska afferenter. En av de stora fördelarna med ex vivo splanchnicus nerv inspelning är det faktum att forskarna kan kvantifiera nervaktivitet utan modulering eller input från det centrala nervsystemet, tillåter en att studera den direkta effekten av lokalt tillämpade föreningar på nervaktivitet. Dessutom övervakning av vitala parametrar, som är nödvändigt med hjälp av in vivo tillvägagångssätt (se nedan), är no längre relevant. In vitro splanchnicus inspelning slutligen mycket mindre tidskrävande än dess in vivo motsvarighet.

Afferent neuronal aktivitet som svar på andra stimuli, såsom mukosal strök, sondering med användning av von Frey-hår eller stretching av segmentet, kan studeras i en modifierad experimentuppställning i vilken tarmvävnaden är nålas ner och öppnas i längdriktningen (som är i motsats till vår inställning med en intakt segment), som beskrevs i en tidigare utgåva 7,8. Dessutom, helt nyligen, var en teknik som beskrivs för att studera kolon afferenta nerv aktivering i kolon väggen själv via kalcium avbildning, återigen med hjälp av en nålas ner, längs öppnade segment 9.

En alternativ version av detta in vivo teknik består av att mäta neuronal aktivering nära afferenta inträde i ryggmärgen. Kort sagt är den sedated djuret placerades i framstupa läge, exposing lumbosacral ryggmärgen som afferenta nervränte projekt genom laminektomi, konstruera en paraffin fylld brunn med huden på snittet och draperingar rygg RÖTTER över en platina bipolär elektrod 10,11. Denna teknik medger dessutom forskare att karakterisera fibrer baserat på deras ledningshastighet, och särskilja omyeliniserade C-fibrer från tunt myeliniserade Aδ-fibrer. Vidare dorsala rottrådar uteslutande innehåller sensoriska afferenta fibrer, i motsats till de blandade afferenta och efferenta splanchnicus nerver som nämnts tidigare.

Inspelning afferenta nerv ansvarsfrihet vitro från isolerade tarmsegment kan också göras med hjälp av prover från människa, som två forskargrupper oberoende publicerade första-in-man manuskript inspelning kolonafferent nervaktivitet i human resektion exemplar 12,13. Genomförandet av denna teknik kan resultera i en mera lätt translatipå av murina data till humana tillstånd, och kan göra det möjligt för forskare att enkelt identifiera droger som riktar sig till sensibiliserade sensoriska nerver. Den kliniska betydelsen av karakterisera afferenta nervaktivitet, liksom upptäckten av nya terapeutiska reagens som riktar orimliga afferent nervaktivitet, har omsorgsfullt diskuterats av många experter på området 14-19.

Den tidigare nämnda in vitro teknik kompletterar mer känd in vivo mätning av afferent nervaktivitet. Under in vivo-nervaktivitet mätning kan nervaktiviteten mätas direkt i sedated djuret under vilken segmentet av intresse identifieras och därefter intuberades, och en flytande paraffin fylld väl konstrueras med användning av den abdominala väggen och huden på gnagare 20. Afferenta nerv av intresse identifieras sedan, snittades och placerades på en bipolär platinaelektrod, vilket gör att nervaktivitet measurement. Denna teknik gör det möjligt för forskare att modulera afferent nervaktivitet i levande än sederade djur; som sådan, kan man studera nervaktivitet svara på störningar såsom luminala buk eller intravenös administrering av en förening.

Translationell forskning fokuserar numera huvudsakligen på tillämpningen av supernatanter humant ursprung (eg., Från kolonbiopsier, odlade perifera mononukleära blodceller, etc.) på jejunala och / eller kolon mus afferenter 21,22. Forskare kan direkt tillämpa supernatanterna antingen till organbadet eller i intraluminal lösning som perfuses tarmen segmentet, så att differentiella effekter av serosala mot mucosal ansökan kan studeras på afferenta nerv urladdning. Som sådan, visade det sig att kolon slemhinnor biopsi supernatans från patienter med IBS kan orsaka överkänslighet i mus kolon afferenter, marsvin submukös nervceller och mus dorsalaganglieneuroner 21,23,24.

Slutligen spelar in neuronal aktivitet inte är begränsad till den mesenteriala och / eller bäcken neuroner som innerverar det gastrointestinala området. Andra har visat att nerv inspelningar kan utföras i afferenter levererar knäleden 25, medan andra har präglat blåsafferent nervaktivitet samt 26-28, och visade att bäcken afferenter från blåsan samt mag-tarmkanalen konvergerar, vilket kan leda till neuronal överhörning 29.

Protocol

Alla djurförsök som beskrivs nedan godkändes av kommittén för medicinsk etik och användningen av försöksdjur vid universitetet i Antwerpen (filnummer 2012-42). 1. Vävnadsberedning för jejunal och Colonic afferenta nerver Beredning av jejunala afferenta nerv Utför gnagare dödshjälp av unga eller vuxna gnagare som har godkänts före experimentet av den lokala etiska kommittén (eg., Terminal sedering följt av hjärtpunktion, halsdislokation, etc….

Representative Results

Jejunal afferent nervaktivitet mättes vid baslinjen och som svar på ramp buk i nio åtta veckor gammal hane AV-1 möss. Djuren inhystes i grupper i standardiserade förhållanden (6 djur per bur, 20-22 ° C, luftfuktighet 40-50%, 12 timmar ljus-mörker-cykel) med obegränsad tillgång till kranvatten och vanlig chow. Jejunal segment av möss visade oregelbundna spontan afferenta nerv urladdning vid baslinjen vid en intraluminal tryck på 0 mmHg (medelvärde spontan aktivitet 11,47 ± 3…

Discussion

Protokollet i detta dokument beskriver en reproducerbar laboratorieteknik för att studera mesenteriska afferent nervaktivitet hos gnagare som används av vår grupp och andra 3,4,7,8,12,20,21,31. Kritiska steg i protokollet omfattar snabb isolering av vävnaden, aspiration av nervsträngen i sug elektroden och adekvat "tätning" av glas kapillär från organbadet genom att aspirera omgivande fettvävnad i kapillären. Öppningen i glaskapillär bör bestämmas exakt: en öppning som är för litet …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

SN performed the experiments described above, performed the data analysis and drafted the manuscript. AD and JDM implemented the technique at our research facilities and aided in the data analysis. HC aided in performing the experiments. WJ, CK and DG assisted in implementing the afferent measurement technique in our lab, the data analysis and interpretation of the results. SF, JDM and BDW designed the study. All authors critically read and approved the final manuscript. SN is an aspirant of the Fund for Scientific Research (FWO), Flanders (11G7415N). This work was supported financially by the FWO (G028615N and G034113N).

Materials

sodium chloride (NaCl) VWR Chemicals 27,810,295 compound Krebs solution
potassium chloride (KCl) Acros organics 196770010 compound Krebs solution
sodium dihydrogen phosphate (NaH2PO4) VWR Chemicals 1,063,461,000 compound Krebs solution
sodium bicarbonate (NaHCO3) Merck 1,063,291,000 compound Krebs solution
magnesium sulfate (MgSO4) Merck 1,058,861,000 compound Krebs solution
calcium chloride (CaCl2) Merck 23,811,000 compound Krebs solution
D-glucose VWR Chemicals 1011175P compound Krebs solution
Distilled water compound Krebs solution
PVC tubing Scientific Laboratory Supplies The intestinal segment should be mounted over PVC tubing
Silicone tubing Scientific Laboratory Supplies The rest of the tubing, ideally silicone-based – more easily dislodging of debris in the tubing
Silk thread Pearsall Limited 10B15S220 Attachment of the segment over the PVC tubing
Syringe driver Harvard Apparatus 55-2222 Intraluminal infusion of Krebs
Binocular – including 10x magnification in oculair Zeiss STEMI 2000 Optimal visualization for the dissection of the afferent nerve
Homeothermic Blanket Control Unit Harvard Apparatus 507214 Heating of the organ chamber
Custom made organ bath with Sylgard covered bottom
Spike2 software Recording and analysis of the data
Insect pins, 500 pieces, stainless steel, diameter 0.2 mm Austerlitz insect pins minutiens Dissection of the afferent nerve
Tweezer Dumont #5 inox 11cm World Precision Instrument 500341 Dissection of the afferent nerve
Scissors, spring, 14 cm World Precision Instrument 15905 Dissection of the afferent nerve
DB digitimer  NL 108T2/10 pressure transducer
Micromanipulator Narishige M-3333 3D manipulation of the suction electrode
Micromanipulator X-4 rotating block 3D manipulation of the suction electrode
Micromanipulator GJ-8 magnetic stand 3D manipulation of the suction electrode
LightSource Euromex Microscopes Holland EK-1 Optimal visualization for the dissection of the afferent nerve
CED 1401 Recording Apparatus Recording of afferent nerve activity
Humbug 50/60Hz Noise Eliminator Quest Scientific Instruments Elimination of background noise
Infusion Pump Gibson Minipuls 2 Infusion of the organ chamber in which the segment is mounted
Microelectrode Holder Half Cells 1.5 mm World Precision Instrument MEH2SW Suction electrode for isolation of the afferent fiber
Borosilicate Glass Capillaries, 300 pc; 1.5/0.84 OD/ID World Precision Instrument 1B150-4 Capillary for the isolation of the afferent nerve

Riferimenti

  1. Donovan, J., Grundy, D. Endocannabinoid modulation of jejunal afferent responses to LPS. Neurogastroenterol Motil. 24 (10), 956-e465 (2012).
  2. Gregersen, H., Jiang, W., Liao, D., Grundy, D. Evidence for stress-dependent mechanoreceptors linking intestinal biomechanics and sensory signal transduction. Exp Physiol. 98 (1), 123-133 (2013).
  3. Keating, C., et al. Afferent hypersensitivity in a mouse model of post-inflammatory gut dysfunction: role of altered serotonin metabolism. J Physiol. 586 (18), 4517-4530 (2008).
  4. Liu, C. Y., Jiang, W., Muller, M. H., Grundy, D., Kreis, M. E. Sensitization of mesenteric afferents to chemical and mechanical stimuli following systemic bacterial lipopolysaccharide. Neurogastroenterol Motil. 17 (1), 89-101 (2005).
  5. Deiteren, A., et al. Mechanisms contributing to visceral hypersensitivity: focus on splanchnic afferent nerve signaling. Neurogastroenterol Motil. 27 (12), 1709-1720 (2015).
  6. Nullens, S., et al. The effect of prolonged CLP-induced sepsis on mesenteric afferent nerve activity in mice. Neurogastroenterol Motil. 27 (Suppl 2), 22 (2015).
  7. Brierley, S. M., Jones, R. C., Gebhart, G. F., Blackshaw, L. A. Splanchnic and pelvic mechanosensory afferents signal different qualities of colonic stimuli in mice. Gastroenterology. 127 (1), 166-178 (2004).
  8. Feng, B., Gebhart, G. F. In vitro functional characterization of mouse colorectal afferent endings. J Vis Exp. (95), e52310 (2015).
  9. Travis, L., Spencer, N. J. Imaging stretch-activated firing of spinal afferent nerve endings in mouse colon. Front Neurosci. 7, 179 (2013).
  10. De Schepper, H. U., et al. TRPV1 receptor signaling mediates afferent nerve sensitization during colitis-induced motility disorders in rats. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 294 (1), G245-G253 (2008).
  11. Sengupta, J. N., Gebhart, G. F. Characterization of mechanosensitive pelvic nerve afferent fibers innervating the colon of the rat. J Neurophysiol. 71 (6), 2046-2060 (1994).
  12. Jiang, W., et al. First-in-man’: characterising the mechanosensitivity of human colonic afferents. Gut. 60 (2), 281-282 (2011).
  13. Peiris, M., et al. Human visceral afferent recordings: preliminary report. Gut. 60 (2), 204-208 (2011).
  14. Brookes, S. J., Spencer, N. J., Costa, M., Zagorodnyuk, V. P. Extrinsic primary afferent signalling in the gut. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 10 (5), 286-296 (2013).
  15. Bulmer, D. C., Grundy, D. Achieving translation in models of visceral pain. Curr Opin Pharmacol. 11 (6), 575-581 (2011).
  16. De Winter, B. Y., De Man, J. G. Interplay between inflammation, immune system and neuronal pathways: effect on gastrointestinal motility. World J Gastroenterol. 16 (44), 5523-5535 (2010).
  17. Akbar, A., Yiangou, Y., Facer, P., Walters, J. R., Anand, P., Ghosh, S. Increased capsaicin receptor TRPV1-expressing sensory fibres in irritable bowel syndrome and their correlation with abdominal pain. Gut. 57 (7), 923-929 (2008).
  18. De Schepper, H. U., et al. TRPV1 receptors on unmyelinated C-fibres mediate colitis-induced sensitization of pelvic afferent nerve fibres in rats. J Physiol. 586 (21), 5247-5258 (2008).
  19. Vermeulen, W., et al. Role of TRPV1 and TRPA1 in visceral hypersensitivity to colorectal distension during experimental colitis in rats. Eur J Pharmacol. 698 (1-3), 404-412 (2013).
  20. Booth, C. E., Shaw, J., Hicks, G. A., Kirkup, A. J., Winchester, W., Grundy, D. Influence of the pattern of jejunal distension on mesenteric afferent sensitivity in the anaesthetized rat. Neurogastroenterol Motil. 20 (2), 149-158 (2008).
  21. Hughes, P. A., et al. Sensory neuro-immune interactions differ between irritable bowel syndrome subtypes. Gut. 62 (10), 1456-1465 (2013).
  22. Hughes, P. A., et al. Immune derived opioidergic inhibition of viscerosensory afferents is decreased in Irritable Bowel Syndrome patients. Brain Behav Immun. 42, 191-203 (2014).
  23. Buhner, S., et al. Neuronal activation by mucosal biopsy supernatants from irritable bowel syndrome patients is linked to visceral sensitivity. Exp Physiol. 99 (10), 1299-1311 (2014).
  24. Wouters, M. M., et al. Histamine Receptor H1-mediated Sensitization of TRPV1 Mediates Visceral Hypersensitivity and Symptoms in Patients With Irritable Bowel Syndrome. Gastroenterology. , (2016).
  25. Brenn, D., Richter, F., Schaible, H. G. Sensitization of unmyelinated sensory fibers of the joint nerve to mechanical stimuli by interleukin-6 in the rat: an inflammatory mechanism of joint pain. Arthritis Rheum. 56 (1), 351-359 (2007).
  26. Christianson, J. A., Liang, R., Ustinova, E. E., Davis, B. M., Fraser, M. O., Pezzone, M. A. Convergence of bladder and colon sensory innervation occurs at the primary afferent level. Pain. 128 (3), 235-243 (2007).
  27. Daly, D. M., Chess-Williams, R., Chapple, C., Grundy, D. The inhibitory role of acetylcholine and muscarinic receptors in bladder afferent activity. Eur Urol. 58 (1), 22-28 (2010).
  28. Minagawa, T., Wyndaele, M., Aizawa, N., Igawa, Y., Wyndaele, J. J. Mechanisms of pelvic organ cross-talk: 2. Impact of colorectal distention on afferent nerve activity of the rat bladder. J Urol. 190 (3), 1123-1130 (2013).
  29. Wyndaele, M., et al. Mechanisms of pelvic organ crosstalk: 1. Peripheral modulation of bladder inhibition by colorectal distention in rats. J Urol. 190 (2), 765-771 (2013).
  30. Keating, C., Nocchi, L., Yu, Y., Donovan, J., Grundy, D. Ageing and gastrointestinal sensory function: Altered colonic mechanosensory and chemosensory function in the aged mouse. J Physiol. , (2015).
  31. Valdez-Morales, E. E., et al. Sensitization of Peripheral Sensory Nerves by Mediators From Colonic Biopsies of Diarrhea-Predominant Irritable Bowel Syndrome Patients: A Role for PAR2. Am J Gastroenterol. 108 (10), 1634-1643 (2013).
check_url/it/54576?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Nullens, S., Deiteren, A., Jiang, W., Keating, C., Ceuleers, H., Francque, S., Grundy, D., De Man, J. G., De Winter, B. Y. In Vitro Recording of Mesenteric Afferent Nerve Activity in Mouse Jejunal and Colonic Segments. J. Vis. Exp. (116), e54576, doi:10.3791/54576 (2016).

View Video