프로토콜은 알긴산과 같은 세포 외 중합체 (ALE)를 추출하기 위해 호기성 입상 슬러지를 가용화하는 방법을 제공한다.
To evaluate and develop methodologies for the extraction of gel-forming extracellular polymeric substances (EPS), EPS from aerobic granular sludge (AGS) was extracted using six different methods (centrifugation, sonication, ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA), formamide with sodium hydroxide (NaOH), formaldehyde with NaOH and sodium carbonate (Na2CO3) with heat and constant mixing). AGS was collected from a pilot wastewater treatment reactor. The ionic gel-forming property of the extracted EPS of the six different extraction methods was tested with calcium ions (Ca2+). From the six extraction methods used, only the Na2CO3 extraction could solubilize the hydrogel matrix of AGS. The alginate-like extracellular polymers (ALE) recovered with this method formed ionic gel beads with Ca2+. The Ca2+-ALE beads were stable in EDTA, formamide with NaOH and formaldehyde with NaOH, indicating that ALE are one part of the structural polymers in EPS. It is recommended to use an extraction method that combines physical and chemical treatment to solubilize AGS and extract structural EPS.
최근에는 호기성 입상 슬러지 (AGS) 프로세스가 성공적으로 여러 본격적인 폐수 처리장 1인가 인기 생물학적 폐수 처리 공정이되고있다. 종래의 활성 슬러지 공정 달리, AGS이 과정에서 미생물 대신 플록 (2)의 과립을 형성한다. 이 과립, 더 나은 침강성이 높은 유기 로딩 속도를 견딜 수 및 활성 슬러지 플록 3보다 독성이 더 높은 내성을 가질 수 있습니다.
생물막 달리 AGS 자발적으로 어떤 담체 물질 (4)의 개입없이 형성된다. 6 – AGS에서 생물막 같은 미생물들은 자기 고정화 4 된 하이드로 겔 매트릭스를 형성하기 위해 고도로 수화 세포 외 폴리머 물질의 상당량 (EPS) (5)를 생성한다. EPS은 다당류, 단백질, 핵산으로 구성된 (phosp 복잡한 혼합물이다호) 지질, 휴믹 물질 및 일부 세포 간 고분자 5,7,8. 이러한 고분자 물질은 치밀하고 조밀 급 네트워크 구조를 형성하는 등의 오 정전기력, 수소 결합, 이온 매력적인 힘 및 / 또는 생화학 적 반응을 통해 서로 상호 작용한다. 하이드로 -4,9- 형성하고 급 네트워크 구조의 형성에 기여할 수있는 EPS의 중합체 구조 EPS 총 EPS의 부분 집합으로 간주이 점에있다.
EPS 화학 구조 및 입자 (5)의 물리적 특성에 대한 책임이있다. 각 EPS 화합물의 기능을 이해하는 것이 중요하다. (15) – 다양한 접근 방법은 EPS (10)를 추출하기 위해 적용됩니다. 그러나, 극도의 복잡성, 하나의 방법에 의해 모든 EPS 성분을 추출하는 것은 거의 불가능하다. 지금까지, 아니 EPS 추출을위한 방법 "하나의 크기는 모두 맞는 없습니다"가. 20 – 추출 방법의 선택은 전체 량뿐만 아니라, 회수 폴리머 13, 16의 조성물뿐만 아니라 영향을 미친다. 슬러지의 형태이자 다양한 방법의 EPS에 의존하는 것이 요구된다.
겔 형성 폴리머를 추출 속성을 특성화하고 서로 비 겔 형성 EPS와의 상호 작용을 조사하는 것은 호기성 입상 슬러지 형성 EPS의 역할을 공개하는 데 도움이 될 것입니다. 또한, 겔 형성 중합체는 산업 분야에서 유용한 생체 고분자도이다. 한가지 가능한 애플리케이션은 이미 용지 (21)의 내수성을 증가시키기 위해 도료로 AGS에서 겔 형성 폴리머를 사용하여 도시 하였다.
따라서, 겔 형성 EPS 특정 추출 방법이 필요하다. 본 연구의 목적은 AGS에서 겔 형성 EPS를 추출하는 방법을 개발하는 것이다. 여섯 추출 방법 1 – 10자주 문학에 사용되는 5,22은, AGS에서 EPS를 추출하기 위해 선정되었다. 총량 추출 EPS의 겔 형성 특성은 각 방법에 대해 비교 하였다.
프로토콜 섹션에 대한 설명
EPS / ALE의 추출 50 ml의 부피 및 과립 3g에 대해 설명한다. 이 값은 가이드 라인으로 구성된다. 높은 과립 농도와 추출은 추출 된 EPS의 수율을 감소시킬 수있다. ALE의 추출 동안 온도를 30 분 동안 80 ℃에서 일정하게 유지되어야한다. 데워 혼합물에 필요한 시간 (약 5 분)이 프로토콜에 포함된다. 또한, 추출 효율을 플라스크 바닥의 직경과 동일한 크기의 마그네틱 교반 막대를 사용하여 강화된다. 이 EPS의 추출을 촉진, 좋은 믹싱 특성과 밀링 효과가 발생합니다.
나중에 프로토콜 섹션에서 (단계 1.1-1.6에서 수집 한 상층 액) 모든 추출의 TS 및 VS 수익률이 결정된다. 투석 추출에 사용되는 화학 물질의 존재로 인해 잠재적 인 오류를 감소시키기 전에 TS 및 VS 측정을 수행 할 필요가있다. 에이3500 다의 MWCO는 투석 부대 내에서 EPS의 거대 분자를 유지하면서 이러한 화학 물질을 제거하는 것이 좋습니다. 투석 가방 추출물의 양보다 더 큰 볼륨이 있어야합니다. 추출물의 부피는 (최대 40 % 양 증가 EDTA 추출을 위해, 예) 투석 동안 증가하기 때문에 필요하다. 투석에 의한 화학 물질 제거의 정도는 종래 투석 후 시료의 pH를 측정하여 결정될 수있다. 대안 적으로, 투석 물의 전도도를 측정 이온 제거의 정도를 나타낸다.
총 추출 된 EPS에서 ALE를 획득 (1.6 단계, 2) 투석 단계는 선택 사항입니다합니다. 그럼에도 불구하고, 투석 세 가지 장점을 갖는다 : 그것은 침전 필요한 염산의 양이,이 추출물의 산성 물질 전달을 향상시키고, 얻어진 ALE의 회분 함량을 감소 줄인다. ALE의 침전을 위해 extrac보다 훨씬 더 큰 볼륨과 유리 비커를 사용하는 것이 좋습니다티. 나 2 CO 3은 일반적으로 과용 추출된다. 샘플에 발포 이전 투석되지 않은 경우 먼저 나 2 CO 3와 반응 첨가 HCl을 이산화탄소의 형성의 결과로, 좌측 및 추출물. HCl을 첨가하는 동안, 추출액을 비이커의 바닥과 같은 크기의 마그네틱 교반 막대를 천천히 교반한다. 이 크기 천천히 교반의 교반 막대 심지어 침전물의 구조를 파괴하지 않고 혼합 발생합니다. 산성 겔 덩어리가 추출 형성하는 경우 비이커 손으로 약간 소용돌이한다. 침전은 여전히 샘플에서의 산의 균질 한 분포를 가지면서도 추출물의 대량 증가를 피하기 위해 1 M의 산 농도를 행한다. 높은 산 농도는 지역의 pH 감소 및 산성 젤 덩어리 형성 될 수 있습니다. 2.0보다 낮은 pH는 아마도 구조적 변화를 복구 할 수 ALE의 양을 감소낮은 pH에서의 중합체. 2.20 ± 0.05에서 최종 pH를 유지하는 것이 중요하다.
제한
에일 맥주 추출 방법은 일반적으로 AGS 또는 생물막에서 EPS의 구조 세포 외 고분자를 추출하는 것을 목표로하고 모든 존재 EPS를 추출하기위한 것이 아닙니다. 모든 EPS를 추출하는 하나 이상의 추출 방법의 조합이 필요하다. 배와 배 추출을 적용하여 VS EPS 생산량의 증가와 같이 또한, 하나의 추출은 모든 구조 EPS를 추출하지 않습니다. ALE 추출 열 및 알칼리성 조건으로 일정한 혼합 결합 가혹한 EPS 추출법이다. 이러한 이유로 일부 세포 내 물질이 EPS와 함께 추출되는 것이 가능하다. 세포 용해는 물리적, 화학적 추출 기술 (초음파 31, 32, 31, 32 수산화 나트륨, EDTA 11,32, CER (32), 열 (32)과 높은 전단 속도 m에 의해 발생 될 수 있지만) 19 ixing 회수 EPS 세포 내 물질의 존재는 여전히 검증 할 필요가있다. 복구 된 EPS는 세포 내 물질이 분석되지 않은 포함되어 있는지 여부를 추출 EPS의 이온 겔 형성 특성은 본 연구의 주요 초점이다. 앞으로의 연구는 추출 된 EPS에서 세포 물질들을 식별에 초점을 맞출 것이다.
AGS의 하이드로 겔 매트릭스를 용해하는 구조 EPS를 추출하는 데 매우 중요하다
EPS 폼 AGS의 조밀 한 소형 하이드로 겔 매트릭스. EPS는 모두하지 다당류, 단백질, 핵산, (포스) 지질, 휴믹 물질 및 일부 세포 간 고분자 7,5,8, 등의 유기 고분자의 다양한 클래스가 포함되어 있지만 겔을 형성한다. 만 겔 형성 폴리머가 여기에 EPS의 구조 폴리머로 간주됩니다.
EPS의 추출의 목표는 제 EPS를 가용화하고 가용화 EPS를 수집하는 것이다. 구조 EPS (즉, t 경우그는) 하이드로 겔을 형성하는 EPS 추출의 대상이며, AGS의 겔 매트릭스 먼저 가용화한다. 겔 매트릭스를 용해시킬 수있는 유일한 방법은 EPS 구조를 추출 할 수있다. 15, 초음파 10,14,15, EDTA – 10 – 12,14,15, 포름 알데히드 + NaOH를 10 – 수산화 나트륨 (13)가 효율적으로 구조를 분리 할 수 없습니다 + (15)과 포름 아미드 본 연구에서는 몇 가지 자주 원심 분리 10 EPS 추출 방법을 사용 EPS. 이 호기성 과립의 하이드로 겔 매트릭스는 다음의 방법에 의해 용해되지 때문이다. 이러한 이유로, 섹션 4의 안정성 시험은 EDTA, 포름 아미드 + 수산화 나트륨의 현상과 포름 알데히드 + NaOH를 추출하여 수행 하였다. 이 세 가지 추출 구조적 EPS를 분리 할 수 없었다, 여전히 나 2 CO 3 추출 외에 최고 VS EPS 수율을 얻을. 약관 오F 오세영 2 CO 3 추출 명확 AGS 행렬을 가용화이 추출 방법으로 적용되지 않았다. 따라서 안정성 시험시 적용 조건이 대표로 간주되었다.
CER와 EPS 추출에 대한 이전의 연구는 현재 사용되는 화학 추출보다 더 나은 결과를 산출하지 않았다로서 양이온 교환 수지 (CER) 또 다른 자주 사용되는 EPS 추출 방법으로 추출하고,이 비교를 고려하지 않았다.
AGS에 EPS를 젤 형성
젤 형성 EPS는 AGS의 하이드로 겔 매트릭스 구조 EPS로 간주됩니다. 이는 이온 성 겔, 온도 – 유발 겔 pH를 유발 겔 등의 하이드로 겔의 여러 가지가 있다고 지적 가치가있다. 이 연구는 이온 젤을 형성 EPS에 초점을 맞추고 있습니다. 추출 구조 겔 물질의 많은 부분에 관해서는,이 지배적 구조 EPS가 될 가능성이있다. 가능성은 확실히있다 그 EPS 다른 종류의열린 하이드로 겔의 다른 종류 (예를 들면, pH를 유발 겔 28) 호기성 과립은 동일하거나 다른 형태에 존재한다. 그럼에도 불구하고, 아무리 하이드로 겔의 종류는 EPS 겔 매트릭스 겔 형성 EPS를 추출하는 가장 중요한 단계입니다 가용화, 대상이되지 않습니다.
현재 연구는 거의 입상 슬러지의 구조 EPS에 완료되었습니다. 이 프로토콜에서 설명 ALE 추출 AGS에서 겔 형성 EPS를 추출 할 수있는 구조적 특징을 EPS 향후 연구에 사용한다. 더 많은 연구가 더 과립과 EPS의 과정과 기능을 이해하는 AGS, 구조 EPS 및 비 구조적 EPS에 수행해야합니다. 미생물 EPS의 정확한 조성물 및 방법 EPS들의 조성은 환경 변화에 따라 변경된다 무엇 EPS 같은 대량 생산 이유 : 특히 다음의 세 가지 점을 검토 할 필요가있다. 검출 관련된 모든 화합물 및 이의 interacti 분석기능은 생물막 어떻게 우리의 장점을 사용하는 방법을 이해하는 데 도움이 될 것입니다.
The authors have nothing to disclose.
This research was financially supported by the SIAM Gravitation Grant 024.002.002, the Netherlands Organization for Scientific Research and by the Dutch Technology Foundation (STW – Simon Stevin Meester 2013). The authors want to thank Mario Pronk for providing the granular sludge samples.
250 ml baffled flask | Kimble | 25630-250 | |
1000 ml glass beaker | VWR | 213-1128 | |
RCT basic, magnetic stirrer with thermometer | IKA | 3810000 | |
sodium carbonate decahydrate | Merck KGaA | 1063911000 | |
50 ml centrifugation tubes | greiner bio-one | 227261 | |
Multifuge 1 S-R, centrifuge | Heraeus/Thermo Scientific | – | |
hydrochloric acid, 37 % | Sigma-Aldrich | 30721-1L-GL-D | |
250 ml glass beaker | VWR | 213-1124 | |
calcium chloride dihydrate | Merck KGaA | 1023821000 | |
1 ml Pasteur Pipette | Copan | 201C |