Chemokine signaling elicits marked alterations of cellular morphology and some important redistributions of intracellular proteins. Here, a rapid and detailed protocol is provided to study these events.
Клетки реагируют на хемокинов стимуляцию теряют круглую форму в процессе, называемом поляризации, а изменения внутриклеточную локализацию многих белков. Классические методы визуализации были использованы для изучения этих явлений. Тем не менее, они требуют ручной приобретение многих клеток с последующим трудоемким количественной оценки морфологии и со-локализации окрашивания десятков клеток. Здесь быстрый и мощный способ описан для изучения этих явлений на образцах, состоящих из нескольких тысяч клеток с использованием потока изображений цитометрии технологии, которая сочетает в себе преимущества микроскопом с результатами цитометром. Использование Т-лимфоциты, стимулированные CCL19 и окрашивания для молекул MHC класса I и фибриллярного актина, стратегия стробирования представлены одновременно измерять степень формы изменения и степень совместной локализации маркеров, которые страдают от CCL19 сигнализации. Кроме того, эта стратегия стробирования позволило нам Observе сегрегация фибриллярного актина (на переднем плане) и фосфорилированного эзрина-Radixin-Moesin (фосфо-ERM) белки (сзади) в поляризованном Т-клеток после CXCL12 стимуляции. Эта методика также полезна для наблюдения за блокирующий эффект на поляризации двух различных элементов: ингибирование полимеризации актина путем фармакологического ингибитора и экспрессии мутантов Par6 / атипичной PKC сигнального пути. Таким образом, доказательства показали, что этот метод полезен для анализа как морфологические изменения и белковые перераспределения.
Хемокины небольшие растворимые белки, которые привлекают клетки специализированных местах 1. Таким образом, они участвуют в правильном расположении клеток в тканях, важнейшие функции в процессе развития и физиологии. Иммунная система не является исключением из этого правила, как это полагается по действию многих различных типов клеток, которые действуют сообща, чтобы обеспечить эффективную иммунную реакцию. Управляя конкретного местоположения одного типа иммунных клеток в данном состоянии, хемокины предварительно требуется до чужеродные антигены могут быть обнаружены и нейтрализованы.
В Т-лимфоцитов, в частности, хемокинов связываются со специфическими рецепторами на поверхности, которые, при соединении, вызывают много внутриклеточные сигналы (рост кальция, ERK фосфорилирования, Rho GTPases активации, увеличение Интегрины близость и цитоскелета изменения), которые способствуют Т-клеток моторику 2,3. На клеточном уровне, можно наблюдать морфологические изменения вызывали на хемокинов стимуляции.Эти изменения в клеточных форм особенно значительным в Т-клеток: покоящиеся Т-клетки имеют борта, как круглый морфологию при движении в потоке крови. Тем не менее, зондирование присутствии хемокинов в местах воспаления или в непосредственной близости от лимфоидных органов собирается изменить форму Т-клеток, в настоящее время принять типичный "ручное зеркало" Морфология, состоящий из биполярного виде: передний край на фронте и заднюю кромку, или Уропод, на задней 4. Кроме того, внутриклеточные компоненты могут разделять в этих двух противоположных областей поляризованного Т-клеток для поддержания миграции. Например, актиновые филаменты полимеризации увеличивается при стимуляции хемокинов 5 и полимеризованного актина накапливается в передней части поляризованного Т-клеток 2. С другой стороны, некоторые белки, такие как фосфорилированы белков Эзрин-Radixin-Moesin (ERM) семьи, которая свяжет плазматическую мембрану кортикальной F-актина цитоскелета, повторно локализовать в уропода поляризованногоТ-клетки 6. Интересно, что мы и другие показали, что этот процесс поляризации требуется для Т миграции клеток. Действительно, любое лечение, что мешает поляризации будет ингибирования клеточной подвижности. Например, ингибирование активности членов атипичной протеинкиназ C (РКС) семьи, PKCζ и PKCι блоки T поляризации клеток и их миграции процесс сканирования дендритных клеток 7. Т-клеток поляризация также регулируется Rho ГТФ. Мы показали, что модуляция активности RhoA по недавно описанного белка Fam65b мешает изменений Т-клеток в морфологии и их способности к миграции в анализе Transwell 6. Как поляризации является необходимым условием для клеточного шаг подвижности, это, таким образом, важно, чтобы иметь возможность количественно оценить его в качестве основного считывания ответов хемокинов. Формы клеток изменения были ранее измеренное вручную 8. Тем не менее, этот вид количественного очень много времени, так что, как правило, лишь немногиедесятки клеток учитываются.
Здесь новый метод представлен быстро количественно степень изменения формы Т-лимфоцитов, подверженных хемокинов стимуляции. Поток изображений цитометрии технологии (см таблицу специфических реагентов / Оборудование) используется, которая сочетает в себе преимущества проточной цитометрии и микроскопа 9 количественно эффективно количество поляризованных клетках в различных условиях хемокинов стимуляции. В дополнение к количественной оценки морфологических изменений, которые можно измерить энергично с этой технологией, можно также оценить изменения в субклеточном локализации некоторых белков при хемокинов сигнализации.
Использование недавно созданной технологии потока изображений цитометрии, быстрый и информативный стратегия стробирования для анализа клеточных и молекулярных событий, вызванных хемокинов стимуляции представлена. Из одном эксперименте, можно получить два основных типа информации:…
The authors have nothing to disclose.
Авторы значительно признать Пьера Bourdoncle, Томас Гилберт и Луиза Rimbault в Кочин изображениями фонда. Эта работа была поддержана Inserm, CNRS и Ligue Nationale контр ле Рак (Equipe labellisée).
Name of the material/Equipment | Company | Catalog number | Comments/Description (optional) |
RPMI | Gibco | 61870-010 | |
Human serum AB | PAA | C11-021 | Pre-heat to inactivate the complement. |
Fetal calf serum | PAN Biotech | P30-3300 | Pre-heat to inactivate the complement. |
Human T cell nucleofactor kit | Lonza | VCA-1002 | |
Murine IL7 | Peprotech | 217-17 | |
HBSS | Gibco | 14025-050 | Warm in 37 °C water bath before use. |
Hepes | Gibco | 15630-056 | |
Murine CCL19 | Peprotech | 250-27B | Aliquots are thawed on ice before adding the chemokine to the cells. |
Human CCL19 | Peprotech | 300-29B | Aliquots are thawed on ice before adding the chemokine to the cells. |
Human CXCL12 | Peprotech | 300-28A | Aliquots are thawed on ice before adding the chemokine to the cells. This chemokine can also be used on mouse T cells. |
PFA | Electron Microscopy Sciences | 157-8-100 | This is a 8 % PFA solution in water. Mix volume to volume with 2X PBS to obtain a 4 % PFA solution in PBS. |
BSA | Sigma | A3059 | |
Saponin | Fluka | 84510 | |
Alexa Fluor 594 phalloidin | Invitrogen | A12381 | |
FITC-anti-HLA-ABC antibody | Beckman Coulter | IM1838 | clone B9.12.1 |
Anti-P-ERM antibody | Cell Signaling Technology | 3149P | |
ImageStreamx Mark II | Amnis |