Muscolari neuroni sensoriali sono coinvolti nella segnalazione propriocettiva e anche la relazione su eventi di stato e di pregiudizio legate metaboliche. Descriviamo un topo adulto in vitro preparazione muscolare-nervosa per gli studi sulla afferenze muscolari tratto attivato.
Muscle neuroni sensoriali che innervano fusi neuromuscolari e organi tendinei del Golgi codificano lunghezza e forza modifiche essenziali alla propriocezione. Ulteriori fibre afferenti monitorare altre caratteristiche dell'ambiente muscolare, tra cui metabolita accumulo, temperatura, e stimoli nocicettivi. Nel complesso, l'attivazione anormale dei neuroni sensoriali può portare a disturbi del movimento o sindromi da dolore cronico. Descriviamo l'isolamento della estensore lungo delle dita (EDL), muscoli e nervi per lo studio in vitro delle risposte afferenti tratto evocati nel topo adulto. L'attività sensoriale viene registrata dal nervo con un elettrodo di aspirazione e singole afferenze può essere analizzato utilizzando spike software di ordinamento. Preparati in vitro consentono di studi ben controllati sulle afferenze sensoriali, senza i potenziali confonde di anestesia o di perfusione muscolare alterato. Qui si descrive un protocollo per individuare e testare la risposta delle afferenze dei fusi muscolari per allungare. È importante sottolineare che,questa preparazione supporta anche lo studio di altri sottotipi di afferenze muscolari, proprietà di risposta in seguito all'applicazione di droga e l'integrazione di approcci genetici potenti e modelli di malattia nei topi.
I muscoli scheletrici sono innervati dai neuroni sensoriali che forniscono il sistema nervoso centrale con importanti informazioni circa l'ambiente muscolo. Fusi muscolari sono altamente specializzati strutture incapsulate composte di fibre muscolari intrafusali che si trovano in parallelo con le fibre muscolari extrafusali. Mandrini sono innervati dal Gruppo Ia e II afferenze che codificano variazioni di lunghezza e il tono muscolare fibra intrafusali è regolata dinamicamente da innervano gamma motoneuroni 1. GRUPPO IB afferenze sono posizionati tra le fibre muscolari e le loro inserzioni tendinee e sono sensibili alle variazioni di forza muscolare, per esempio durante la contrazione muscolare 2. Il Gruppo Ia, Ib e II afferenze fornire un feedback propriocettivo che aiuta nel controllo motorio adeguato. Ulteriori popolazioni di afferenze muscolari situate in tutto il muscolo (gruppo III e IV) servono per segnalare metabolita accumulo, la presenza di stimoli nocicettivi, e la temperatura del muscolo <sup> 3. Questa informazione sensoriale muscolare è fondamentale per mantenere l'omeostasi, prevenendo danni muscolari e modulante movimento. Afferenze muscolari possono modificare i loro modelli di cottura sulla base di precedenti esperienze 4. L'attivazione dei nocicettori può portare alla induzione di stati di dolore cronico 5 e segnalazione aberrante dai propriocettori del muscolo può portare a problemi di equilibrio o di movimento 6. Usiamo un caso isolato muscolo-nervo di preparazione vitro per studiare la risposta dei recettori muscolari terminazioni dei neuroni sensoriali da topi adulti di entrambi i sessi (mostrati sono risposte di 2-4 mesi C57Bl / 6 topi). Il mouse è la specie modello per gli studi di genetica nei mammiferi. Questa preparazione richiede l'isolamento del ramo profondo peroneale del nervo sciatico e il muscolo estensore lungo delle dita (EDL), una contrazione muscolare rapida del gruppo peroneo trova nella parte laterale della gamba. L'EDL è spesso usato per studiare le proprietà contrattili del muscolo 7-9, ha tendons che sono facili da isolare ed è abbastanza piccolo da consentire un adeguato apporto di ossigeno diffusivo a riposo e con cicli di contrazione ragionevoli 10. Altri muscoli in questo settore (per esempio, soleo e tibiale anteriore) sono di dimensioni simili e questa preparazione possono essere facilmente modificati per registrare da afferenze di questi muscoli. Un elettrodo di aspirazione è posizionato sull'estremità taglio del nervo per registrare muscolo sensoriale afferente cottura. Neuroni individuali possono essere identificati e analizzati in base alla loro forma spike spike utilizzando il software di ordinamento. Stimolare elettrodi nel bagno o sul nervo può essere usato per evocare la contrazione muscolare. Lunghezza del muscolo e la forza possono essere controllati e misurati utilizzando sistemi disponibili in commercio. Simile di preparati in vitro sono stati utilizzati nei roditori per lo studio di gruppo III e IV afferenze muscolari nel ratto EDL 11, GRUPPO IA e II afferenze mandrino nel quarto muscolo punta lumbrical ratto 12 e gruppo III e IV afferenze muscolari in tegli topo plantare muscolo 13.
Un sistema in vitro ha i vantaggi di accessibilità farmacologico e controllo diretto delle variabili perfusato e fisiochimiche come temperatura e pH. Un approccio in vitro elimina il potenziale in vivo confonde di anestesia e lo stato di perfusione del muscolo. Mentre la preparazione muscolo-nervo consente lo studio della risposta diretta di una perturbazione sulle afferenze, la capacità di studiare gamma modulazione efferente di sensibilità mandrino ed altre risposte integrate che è possibile con 14 in vivo o ex vivo 3 preparazioni è sacrificato come non ci sono corpi cellulari neuronali in questa preparazione.
Questa preparazione è stato precedentemente utilizzato per caratterizzare la risposta di afferenze dei fusi muscolari mouse per una batteria di rampa e tenere tratti e vibrazioni ed è stato determinato che il mouse mandrino respons afferenties erano simili a quelli riportati in altre specie, come i ratti, gatti, e gli esseri umani. Risposte mandrino afferenti mouse sono risultati simili sia a 24 ° C e 34 ° C la temperatura del bagno, anche se a 34 ° C tassi di cottura assoluto sono stati più veloci e le afferenze erano più in grado di rispondere più velocemente cambia di lunghezza 15. Descriviamo di seguito come questo preparato può essere utilizzato per identificare e studiare le afferenze dei fusi muscolari. Inoltre, questa preparazione può essere facilmente modificato per studiare la risposta di altri sottotipi afferenti muscolare 13 di confrontare le proprietà di afferenze sensoriali in risposta ad uno stato di farmaco o malattia o assortiti altre variabili (ad esempio età, sesso, gene bloccato).
L'obiettivo di questo articolo è quello di descrivere un metodo per la registrazione da afferenze dei fusi muscolari in un isolato preparazione del mouse muscolo-nervo. Abbiamo scoperto che le afferenze del mouse mandrino rispondono in modo simile a come allungare quelli di ratti, gatti e gli esseri umani 15, ed altri laboratori hanno utilizzato topi come organismi modello per studiare i neuroni sensoriali sia nel muscolo e la pelle in vitro (ad esempio 3,13) .
Muscle afferenze sensoriali possono essere registrate per almeno 6-8 ore sia a 24 ° C e 34 ° C. Per ridurre al minimo la manipolazione del EDL e nervo, utilizzare la parte rimanente del FHL per gestire il tessuto quando possibile. Dopo la dissezione, attendere almeno 1 ora di iniziare la raccolta dei dati per consentire al tessuto raggiunga la temperatura del bagno e per il normale trasmissione sinaptica per recuperare. In precedenza, la salute dei muscoli è stata verificata su un sottoinsieme di muscoli utilizzati in questa preparazione determinando che la massima tetanica contractile forza generata dai muscoli è simile a quella riportata da altri all'inizio e alla fine dell'esperimento 15.
Muscle afferenti mandrino stati identificati funzionalmente in questa preparazione, cercando per una pausa caratteristica cottura in risposta alla contrazione contrazione (figura 2), nonché gli attesi frequenza aumenta istantanei in risposta alle variazioni di lunghezza (Figura 3). Nella nostra esperienza, la maggior parte delle afferenze che un incendio in condizioni di controllo sono afferenze dei fusi muscolari. La lunghezza del nervo mantenuto in questa preparazione (~ 7 mm massimo) non è sufficientemente lungo da usare afferenti differenze di velocità di conduzione per identificare sottotipi afferenti muscolare 13. Inoltre, a differenza di gatti e gli esseri umani, le misure di sensibilità dinamica non erano in grado di distinguere chiaramente Gruppo Ia e II afferenze nei topi (per ulteriori approfondimenti vedi Wilkinson et al. 15). Altri sottotipi di afferenze (vale a dire., Gruppo III e IV) può essere identificato tramite ulteriori test funzionali in questa preparazione, per esempio con l'aggiunta di sostanze come la capsaicina, ATP, o bradichinina, diminuendo bagno pH, esponendo il muscolo di ischemia, ecc 3,13,21-23 Utilizzando elettrodi di aspirazione permette l'attività da più neuroni sensoriali da registrare in una sola volta, che aumenta la quantità di dati che possono essere raccolti da un singolo muscolo. Questa preparazione può essere utilizzata per misurare l'effetto complessivo di una perturbazione sulle risposte popolazione di neuroni sensoriali o le risposte dei afferenti identificati. Se le forme picco sono abbastanza unici, fino a 4 neuroni sensoriali possono essere discriminati dal software (sia Spike2 (Cambridge Electronic Design) e LabChart Pro (Strumenti AD) si sono esibiti in modo simile). Nei casi in cui i neuroni non possono essere discriminati, cambiamenti nel posizionamento degli elettrodi o punta di diametro possono essere facilmente implementati.
In sintesi, il topo muscolo-nervo prepar vitrozione è un semplice approccio sperimentale che può essere utilizzata per studiare le proprietà di risposta dei muscoli afferenze sensoriali per vari modelli di perturbazioni, lesioni e malattie fisico-chimiche. Inoltre, questa preparazione è ideale per sfruttare i potenti strumenti genetici disponibili nei topi, compresi gli animali transgenici e strumenti optogenetic.
The authors have nothing to disclose.
This work was supported by a California State University Program for Education and Research in Biotechnology (CSUPERB) New Investigator Grant (KAW), a grant from Pfizer (WS753098, SH), and an NIH MARC fellowship (#2T34GM008253-21, JAF). The authors would like to thank Michael Sawchuk, Anusha Allawala, Nina Bubalo, Remie Mandawe and Peter Nguyen for their technical support.
Force and Length Controller & Tissue Bath | Aurora Scientific, Inc. | 300C-LR & 809B-IV | |
Masterflex L/S Digital Drive Perfusion Pump & Easy Load II Pump Head | Cole Parmer | EW-07523-80 & EW-77200-60 | |
2 Channel Microelectrode AC Differential Amplifier & Headstage Amplifier | A-M Systems | Model 1800; 700000 & 700500 | |
Simulator | Grass OR Aurora Scientific, Inc. |
S88 OR 701 C |
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Dissecting Microscope | Swift | 892070 | |
Fiber Optic Light Source | Fiberlite | Model 190 | |
Analog to Digital Board | AD Instruments | PL3508/P (PowerLab 8/35) | |
Data Acquisition & Analysis Software | AD Instruments | LabChart Pro 7 | |
Electrode Holder | A-M Systems | 672445 | |
Electrode Glass | Dagan | SA16 | |
Electrode Puller | Sutter Instrument Co. | P-80/PC | |
Microforge | Narishige | MF-9 | |
Isoflourane | MWI Veterinary Supply | 18627 | |
Surgical Tools | |||
Large Dissecting Scissors | Fine Science Tools | 14014-17 | |
Large Forceps | Fine Science Tools | 11000-12 | |
Large Spring Scissors | Fine Science Tools | 15006-09 | |
#5 Forceps | Fine Science Tools | 11252-20 | |
#55 Forceps | Fine Science Tools | 11255-20 | |
Sharp Scissors | Fine Science Tools | 14059-11 | |
6-0 Silk Suture | Fine Science Tools | 18020-50 | |
Chemicals for Low Calcium- High Magnesium aCSF and SIF (Low Calcium solution is equilibriated with 95% 02/5% C02 gas and pH of 7.4 ± 0.05; SIF is equilibriated with 100% 02 gas and pH of 7.4 ± 0.05) |
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Sodium Chloride | Sigma | S9888-1KG | |
Magnesium Sulfate Heptahydrate | Sigma | 230391-500G | |
Calcium Chloride Dihydrate | Sigma | 223506-500G | |
Sodium Gluconate | Sigma | S2054-500G | |
Sodium Phosphate Monobasic | Sigma | S8282-500G | |
Glucose | Sigma | G5767-500G | |
Sucrose | Sigma | S5016-500G | |
HEPES | Sigma | H3375-250G | |
Potassium Phosphate Monobasic | Sigma | P0662-500G | |
Potassium Chloride | Sigma | P3911-500G | |
Sodium Bicarbonate | Sigma | S6014-500G |